Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento
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- João Vítor Bicalho Borba
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1 ISSN Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Introdução A cultura do milho no Brasil tem apresentado aumento significativo de intensidade de doenças na última década, principalmente em relação a doenças foliares, gerando preocupações sobre o potencial de perdas e danos caso não haja controle efetivo do problema (COSTA et al., 2013). Dentre as estratégias de controle mais utilizadas está o uso de produtos químicos (principalmente fungicidas) e variedades resistentes. Uma das doenças que tem gerado maior preocupação nos produtores de milho no Brasil é a ferrugem-polissora, causada pelo fungo Puccinia polysora Underwood. Ela é bastante agressiva, podendo causar perdas de produtividade superiores a 50%, o que tem sido relatado com frequência nas principais regiões produtoras (JINES et al., 2007; COSTA et al., 2010). Sete Lagoas, MG Dezembro, 2015 Autores Cynthia M. Borges Damasceno 1 Bióloga, Ph.D. em Fitopatologia, Pesq. Embrapa Milho e Sorgo, CP -151, CEP , Sete Lagoas, MG. cynthia. damasceno@embrapa.br Maria Marta Pastina 2 Eng a - Agrôn., D.Sc. em Genética e Melhoramento, Pesquisadora Embrapa Milho e Sorgo, CP-151, CEP , Sete Lagoas, MG. marta.pastina@embrapa.br Paulo Evaristo de O. Guimarães 3 Eng o -Agrôn., Ph.D em Genética e Melhoramento, Pesquisadora Embrapa Milho e Sorgo, CP -151, CEP Sete Lagoas, MG. paulo.guimaraes@embrapa.br Rodrigo Veras da Costa Eng o -Agrôn., D.Sc. em Fitopatologia, Pesq. Embrapa Milho e Sorgo, CP -151, CEP , Sete Lagoas, MG. rodrigo.veras@embrapa.br Luciano Viana Cota 5 Eng o -Agrôn., D.Sc. em Fitopatologia, Pesquisador Embrapa Milho e Sorgo, CP -151, CEP , Sete Lagoas, MG. luciano.cota@embrapa.br Dagma Dionísia da Silva 6 Eng a -Agrôn., D.Sc. em Fitopatologia, Pesq. Embrapa Milho e Sorgo, CP -151, CEP , Sete Lagoas, MG. dagma.silva@embrapa.br A resistência do tipo HR (hipersensibilidade) tem sido identificada em genótipos de milho, a qual é efetiva em reduzir as perdas na produtividade e, essencialmente, reduz a disseminação secundária do inóculo dentro e entre as áreas de cultivo (MELCHING, 1975). Os genes de resistência para controle de P. polysora em milho são raça-específicos e geralmente são dominantes ou dominantes incompletos (STOREY; HOWLAND, 1957; ULLSTRUP, 1965; BREWBAKER et al., 2011). Os genes Rpp1 e Rpp2 conferem resistência às raças EA1 e EA2, respectivamente (STOREY; HOWLAND, 1957). Segundo os autores, esses genes, aparentemente, não estão ligados, mas a sua localização no genoma ainda não foi determinada. O gene Rpp9, que confere resistência à raça PP.9, está fortemente ligado ao gene Rp1 para resistência à ferrugem comum do milho (Puccinia sorghi Schw.), localizado no braço curto do cromossomo 10 (ULLSTRUP 1965). Outros genes de efeito maior para resistência à ferrugem-polissora, também localizados no braço curto do cromossomo 10, têm sido identificados em diferentes germoplasmas de milho. Recentemente, Wu et al. (2015) mapearam e identificaram um novo gene de resistência, RppS, também no braço curto do cromossomo 10 (região 10S), adjacente ao gene Rpp9 (ULLSTRUP, 1965 ), RppQ (CHEN et al., 2004; ZHOU et al., 2007), RppD (ZHANG et al., 2010) e RppP25 (ZHAO et al. 2013), além dos genes de resistência à ferrugem comum, Rp1 (ULLSTRUP, 1965) e Rp5 (HULBERT; BENNETZEN, 1991). Entretanto, como as posições físicas desses genes ainda não foram determinadas, as distâncias exatas entre eles ainda são desconhecidas. Assim, Wu et al. (2015) denominaram essa região 10S como Rpp cluster, devido ao grande número de genes para resistência para ferrugem-polissora.
2 2 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Entretanto, ainda não está claro se constituem formas alélicas de Rpp9., em uma região próxima dos outros genes de resistência já identificados para doença. Apesar da eficácia dos genes de resistência, o uso deles isoladamente em cultivares pode levar à rápida seleção de indivíduos na população do patógeno que, por falta do gene de avirulência correspondente, não são mais identificados pela planta, quebrando a resistência. Assim, além dos genes que conferem resistência do tipo HR, é também importante identificar e utilizar resistência de amplo espectro, notoriamente de característica poligênica e mais duradoura. A identificação de genótipos resistentes tem sido um dos principais gargalos dos programas de melhoramento, sendo seu uso uma importante medida para o manejo da doença. Uma das dificuldades para a seleção de genótipos resistentes à ferrugem-polissora é a inconsistência da ocorrência da doença nos ambientes de seleção (enquanto um ano pode apresentar altíssima severidade, no seguinte pode ocorrer ausência da doença). Outro fator é a alta variabilidade genética do fungo P. polysora, o que permite rápida adaptação aos materiais resistentes disponíveis no mercado. Assim, é imprescindível um trabalho contínuo de identificação de novas fontes de resistência, mais efetivas no controle da doença e de maior durabilidade. O programa de melhoramento da Embrapa Milho e Sorgo tem investido na fenotipagem de um grande número de genótipos para identificação de fontes de resistência e desenvolvimento de populações segregantes para melhor entender a base genética da resistência. Avaliação Fenotípica da Reação à Ferrugem-polissora em Genótipos de Milho A avaliação de genótipos quanto a reação (resistência ou suscetibilidade) à ferrugempolissora para identificação de matérias resistentes foi realizada em casa de vegetação. As inoculações foram feitas nas plantas aos 15 dias após o plantio (DAP), utilizando-se como inóculo os uredósporos do isolado monopustular de P. polysora obtidos em Rio Verde-GO, a uma concentração de 10 4 uredósporos/ml. As plantas inoculadas foram mantidas em câmara úmida sob condição de temperatura entre 25 e 30 o C e umidade relativa de, aproximadamente, 90% durante 12 horas. Após esse período as plantas foram mantidas em casa de vegetação, com temperatura de 25 a 30 o C. As avaliações foram realizadas aos 30 DAP, utilizandose uma escala de classes de resistência ou suscetibilidade (Figura 1). Após as avaliações, as plantas que foram utilizadas para produção de sementes da população seguinte foram transplantadas em campo, na área experimental da Embrapa Milho e Sorgo. Identificação de Fontes de Resistência Em 2012, 490 materiais para resistência à ferrugem-polissora foram fenotipados pela Embrapa Milho e Sorgo para a reação à doença: 91 linhagens elites, 164 híbridos simples entre linhagens de diferentes grupos heteróticos e 235 híbridos entre linhagens do mesmo grupo heterótico. Com base nessas avaliações, foi selecionado um grupo de 10 híbridos simples mais resistentes cujas linhagens progenitoras foram contrastantes
3 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 3 em níveis de resistência para essa doença (Tabela 1). Estes híbridos (F 1 ) foram autofecundados para obtenção da geração F 2, que foi então avaliada em casa de vegetação para resistência à ferrugem-polissora, juntamente com as linhagens parentais e gerações F 1. Para cada população avaliada, foram obtidas estimativas para os seguintes parâmetros: média, variância (fenotípica, genética e residual), desvio padrão, intervalo de confiança para a média (95%), coeficiente de variação, e probabilidades para cada classe de reação à ferrugem-polissora (R0, R1, R2, S-, S, S+), a qual foi convertida em uma escala de números, variando de 1 a 6 para realização do cálculo dos parâmetros avaliados (Tabelas 1 e 2). Figura 1. Escala de avaliação da ferrugem-polissora em folhas de milho.
4 4 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Tabela 1. Estimativas de média, variância (fenotípica, genética e residual), desvio padrão, intervalo de confiança para a média (95%), coeficiente de variação nas linhagens, progênies F 1 e F 2. Linhagem Genitor 1 Genitor 2 Número de Plantas por Classe de Reação Total de Plantas R0 R1 R2 S- S S+ Média Fenotípica Desvio Padrão Coeficientes de Variação (%) Genética Residual Intervalo de Confiança para a Média (95%) L ,33 0,25 0,50 11,54 0,00 0,25 3,95-4, ,60 0,27 0,52 32,27 0,00 0,27 1,23-1, ,64 0,25 0,50 10,71 0,00 0,25 4,36-4, ,42 0,27 0,51 11,66 0,00 0,27 4,09-4, ,10 0,10 0,32 28,75 0,00 0,10 0,87-1, ,80 0,18 0,42 8,78 0,00 0,18 4,50-5, ,91 0,09 0,30 6,14 0,00 0,09 4,71-5, ,55 0,27 0,52 11,49 0,00 0,27 4,19-4, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4, ,67 0,24 0,49 10,55 0,00 0,24 4,35-4, ,92 0,63 0,79 27,19 0,00 0,63 2,41-3, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4,91
5 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 5 Tabela 1. Estimativas de média, variância (fenotípica, genética e residual), desvio padrão, intervalo de confiança para a média (95%), coeficiente de variação nas linhagens, progênies F 1 e F 2. (Continuação) Linhagem Genitor 1 Genitor 2 Número de Plantas por Classe de Reação Total de Plantas R0 R1 R2 S- S S+ Média Fenotípica Desvio Padrão Coeficientes de Variação (%) Genética Residual Intervalo de Confiança para a Média (95%) L ,33 0,25 0,50 11,54 0,00 0,25 3,95-4, ,60 0,27 0,52 32,27 0,00 0,27 1,23-1, ,64 0,25 0,50 10,71 0,00 0,25 4,36-4, ,42 0,27 0,51 11,66 0,00 0,27 4,09-4, ,10 0,10 0,32 28,75 0,00 0,10 0,87-1, ,80 0,18 0,42 8,78 0,00 0,18 4,50-5, ,91 0,09 0,30 6,14 0,00 0,09 4,71-5, ,55 0,27 0,52 11,49 0,00 0,27 4,19-4, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4, ,67 0,24 0,49 10,55 0,00 0,24 4,35-4, ,92 0,63 0,79 27,19 0,00 0,63 2,41-3, ,58 0,27 0,51 11,23 0,00 0,27 4,26-4,91
6 6 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Tabela 1. Estimativas de média, variância (fenotípica, genética e residual), desvio padrão, intervalo de confiança para a média (95%), coeficiente de variação nas linhagens, progênies F1 e F2. (Continuação) F2 Genitor 1 Genitor 2 Número de Plantas por Classe de Reação Total de Plantas R0 R1 R2 S- S S+ Média Fenotípica Desvio Padrão Coeficientes de Variação (%) Genética Residual Intervalo de Confiança para a Média (95%) L ,52 1,15 1,07 42,51 0,92 0,23 2,22-2, ,07 2,28 1,51 49,31 2,06 0,23 2,63-3, ,50 1,68 1,30 51,90 1,45 0,23 2,14-2, ,91 1,95 1,40 47,90 1,72 0,23 2,52-3, ,00 2,09 1,45 36,15 1,86 0,23 3,58-4, ,13 2,29 1,51 48,36 2,06 0,23 2,70-3, ,52 2,84 1,69 47,83 2,61 0,23 3,01-4, ,98 0,02 0,15 2,96-0,21 0,23 4,94-5, ,66 0,31 0,56 11,96 0,08 0,23 4,51-4, ,79 0,17 0,41 8,63-0,06 0,23 4,66-4, ,59 0,54 0,73 15,98 0,31 0,23 4,39-4, ,35 0,45 0,67 15,34 0,22 0,23 4,17-4,54
7 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 7 Tabela 2. Probabilidades para cada classe de reação à ferrugem-polissora (R0, R1, R2, S-, S, S+), nas linhagens, progênies F 1 e F 2. Probabilidades Linhagem Genitor 1 Genitor 2 Resistente Suscetível R0 R1 R2 S- S S+ L ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,67 0,33 0, ,00 0,00 0,40 0,60 0,00 0,00 0,00 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,36 0,64 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,58 0,42 0, ,00 0,00 0,90 0,10 0,00 0,00 0,00 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,20 0,80 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,09 0,91 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,45 0,55 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,42 0,58 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,42 0,58 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,33 0,67 0, ,75 0,25 0,00 0,33 0,42 0,25 0,00 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,42 0,58 0,00
8 8 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Tabela 2. Probabilidades para cada classe de reação à ferrugem-polissora (R0, R1, R2, S-, S, S+), nas linhagens, progênies F 1 e F 2. (Continuação) Probabilidades F1 Genitor 1 Genitor 2 Resistente Suscetível R0 R1 R2 S- S S+ ( x ) L ,00 0,00 0,89 0,11 0,00 0,00 0,00 0,00 ( x ) ,00 0,00 0,38 0,63 0,00 0,00 0,00 0,00 ( x ) ,00 0,00 0,10 0,90 0,00 0,00 0,00 0,00 ( x ) ,00 0,00 0,64 0,36 0,00 0,00 0,00 0,00 ( x ) ,18 0,82 0,00 0,00 0,18 0,82 0,00 0,00 ( x ) ,00 0,00 0,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,00 ( x ) ,25 0,75 0,00 0,00 0,25 0,75 0,00 0,00 ( x ) ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,64 0,36 0,00 ( x ) ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,67 0,33 0,00 ( x ) ( x ) ,67 0,33 0,00 0,00 0,67 0,33 0,00 0,00 ( x ) ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,42 0,58 0,00
9 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 9 Tabela 2. Probabilidades para cada classe de reação à ferrugem-polissora (R0, R1, R2, S-, S, S+), nas linhagens e progênies F 1 e F 2. (Continuação) Probabilidades F2 Genitor 1 Genitor 2 Resistente Suscetível R0 R1 R2 S- S S L ,81 0,19 0,00 0,79 0,02 0,06 0,13 0, ,63 0,37 0,04 0,59 0,00 0,00 0,37 0, ,80 0,20 0,10 0,70 0,00 0,00 0,20 0, ,70 0,30 0,02 0,64 0,04 0,00 0,30 0, ,33 0,67 0,07 0,18 0,09 0,02 0,64 0, ,66 0,34 0,11 0,36 0,19 0,00 0,32 0, ,48 0,52 0,21 0,10 0,17 0,00 0,52 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,02 0,98 0, ,04 0,96 0,00 0,00 0,04 0,26 0,70 0, ,00 1,00 0,00 0,00 0,00 0,21 0,79 0, ,12 0,88 0,00 0,00 0,12 0,18 0,67 0, ,10 0,90 0,00 0,00 0,10 0,44 0,46 0,00
10 10 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Seleção de População Biparental Base para Desenvolvimento de População de Mapeamento para Resistência Para a escolha de uma população F 2 ideal, os seguintes parâmetros foram seguidos: 1) presença de distribuição de classes de reação mais próxima de uma distribuição normal, 2) pais contrastantes e 3) geração F 1 mais resistente. A partir dos resultados obtidos (Tabelas 1 e 2), foram identificadas as quatro populações F 2 que apresentaram menor média para a reação à doença, ou seja, populações que apresentaram maior frequência de indivíduos resistentes à ferrugem-polissora ( , , e ), todas obtidas a partir do cruzamento entre genitores contrastantes, suscetível e resistente (Figura 2). Com base nos dados apresentados, a população ( x ) foi escolhida, sendo então novamente avaliada com um maior número de plantas, confirmando a distribuição de classes mais próxima da distribuição normal, o que condiz com uma resistência de base poligênica (Figura 3). Acredita-se que esse tipo de resistência possa apresentar maior durabilidade para patógenos de alta adaptabilidade, como é o caso da ferrugempolissora. A B C D Figura 2. Frequência (%) das classes de reação à ferrugem-polissora em quatro populações F 2 e seus respectivos genitores e geração F 1 : A) População (L3 x ); B) População ( x ); C) População ( x ); D) População ( x ).
11 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 11 Figura 3. Frequência (%) das classes de reação à ferrugem-polissora na população F ( x ), demonstrando distribuição próxima à normal das classes avaliadas, indicando controle poligênico da resistência. Foram avaliadas 293 plantas F 2. Conclusão Pela dificuldade de obtenção de cultivares resistentes e por tratar-se de um patógeno adaptado às condições brasileiras e extremamente agressivo à cultura do milho, é importante manter-se um trabalho contínuo de identificação e introgressão de novos genes de resistência no germoplasma de milho. Assim, o presente trabalho visou a identificação de fontes de resistência e o desenvolvimento de gerações e populações segregantes adequadas para estudos futuros de herança da resistência à ferrugem-polissora e para mapeamento de QTLs associados à resistência à doença. Uma população F 2, ( x ) foi escolhida para o desenvolvimento do trabalho de mapeamento, por apresentar progênie segregante para resistência, com características de natureza poligênica. Além da população F 2, retrocruzamentos com os parentais (RC 1 e RC 2 ) foram também desenvolvidos a fim de realizar futuramente estudo de herança da base genética para resistência à ferrugempolissora em milho, além do desenvolvimento de progênies F 2:3 para obtenção dos dados fenotípicos a serem utilizados no mapeamento de QTLs. Esses novos estudos permitirão o melhor entendimento do tipo de resistência apresentada no germoplasma disponível no programa de melhoramento da Embrapa, bem como a identificação de QTLs associados à resistência à doença, para que cultivares de milho com níveis mais elevados de resistência à ferrugem-polissora sejam mais facilmente obtidos.
12 12 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento Referências BREWBAKER, J. L.; KIM, S. K.; SO, Y. S.; LOGROÑO, M.; MOON, H. G.; MING, R.; LU, X. W.; JOSUE, A. D. General resistance in maize to southern rust (Puccinia polysora Underw.). Crop Science, Madison, v. 51, p , CHEN, C. X.; WANG, Z. L.; YANG, D. E.; YE, C. J.; ZHAO, Y. B.; JIN, D. M.; WENG, M. L.; WANG, B. Molecular tagging and genetic mapping of the disease resistance gene RppQ to southern corn rust. Theoretical and Applied Genetics, New York, v. 108, p , COSTA, R. V. da; SILVA, D. D. da; COTA, L. V. Efeito protetor de fungicidas no controle da ferrugem Polissora (Puccinia polysora) do milho. Sete Lagoas: Embrapa Milho e Sorgo, p. (Embrapa Milho e Sorgo. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 81). COSTA, R. V. da; COTA, L. V.; SILVA, D. D. da; PARREIRA, D. F.; ROCHA, l. M. P. da; GUIMARAES, L. J. M.; GUIMARAES, P. E.; PARENTONI, S. N.; MACHADO, J. R. de A. Epidemias severas da Ferrugem Polissora do milho na Região Sul do Brasil na safra 2009/2010. Sete Lagoas: Embrapa Milho e Sorgo, p. (Embrapa Milho e Sorgo. Circular Técnica, 138). HULBERT S. H.; BENNETZEN J. L. Recombination at the Rp1 locus of maize. Molecular and General Genetics, New York, v. 226, p , JINES, M. P.; BALINT-KURTI, P.; ROBERTSON- HOYT, L. A.; MOLNAR, T.; HOLLAND, J. B.; GOODMAN, M.M. Mapping resistance to Southern rust in a tropical by temperate maize recombinant inbred topcross population. Theoretical and Applied Genetics, New York, v. 114, p , MELCHING, J. S. Corn rust: types, races, and destructive potential. In: ANNUAL CORN AND SORGHUM RESEARCH CONFERENCE, 30.,1975, Chicago. Proceedings... Washington: ASTA, p (ASTA. Publication, 30). STOREY, H. H.; HOWLAND, A. K. Resistance in maize to the tropical American rust fungus, Puccinia polysora Underw., I. Genes Rpp1 and Rpp2. Heredity, v. Edinburgh, v. 11, p , ULLSTRUP, A. J. Inheritance and linkage of a gene determining resistance in maize to an American race of Puccinia polysora. Phytopathology, Saint Paul, v. 55, p , WU, X.; LI, N.; ZHAO, P.; HE, Y.; WANG, S. Geographic and genetic identification of RppS, a novel locus conferring broad resistance to southern corn rust disease in China. Euphytica, Wageningen, v. 205, n. 1, p , ZHANG, Y.; XU, L.; ZHANG, D.; DAI, J.; WANG, S. Mapping of southern corn rust-resistant genes in the W2D inbred line of maize (Zea mays L.). Molecular Breeding, Dordrecht, v. 25, n. 3, p , ZHAO, P.; ZHANG, G.; WU, X.; LI, N.; SHI, D.; ZHANG, D.; JI, C.; XU, M.; WANG, S. Fine Mapping of RppP25, a Southern Rust Resistance Gene in Maize. Journal of Integrative Plant Biology, v. 55, n. 5, p , ZHOU, C. J.; CHEN, C. X.; CAO, P. X. Characterization and fine mapping of RppQ, a resistance gene to southern corn rust in maize. Molecular Genetics and Genomics, Berlin, v. 278, p , 2007.
13 Identificação de Fontes de Resistência à Ferrugem-polissora em Milho e Desenvolvimento de População de Mapeamento 13 Literatura Recomendada HOLLAND, J. B.; UHR, D. V.; JEFFERS, D.; GOODMAN, M. M. Inheritance of resistance to southern corn rust in tropical-by-corn-belt maize populations. Theoretical and Applied Genetics, New York, v. 96, p , LIU, B. H. Statistical genomics: linkage, mapping and QTL analysis. Boca Raton: CRC Press, p. SCOTT, G. E.; KING, S. B.; ARMOUR, J. W. J. Inheritance of resistance to southern corn rust in maize Zea mays Populations. Crop Science, Madison, v. 24, p , Circular Técnica, 212 Exemplares desta edição podem ser adquiridos na: Embrapa Milho e Sorgo Endereço: Rod. MG 424 km 45 Caixa Postal 151 CEP Sete Lagoas, MG Fone: (31) Fax: (31) a edição Versão Eletrônica (2015) Comitê de publicações Expediente Presidente: Presidente: Sidney Netto Parentoni. Secretário-Executivo: Elena Charlotte Landau. Membros: Antonio Claudio da Silva Barros, Cynthia Maria Borges Damasceno, Maria Lúcia Ferreira Simeone, Monica Matoso Campanha, Roberto dos Santos Trindade e Rosângela Lacerda de Castro. Revisão de texto: Antonio Claudio da Silva Barros. Normalização bibliográfica: Rosângela Lacerda de Castro. Tratamento das ilustrações: Tânia Mara A. Barbosa. Editoração eletrônica: Tânia Mara A. Barbosa. CGPE
Comunicado Técnico. Introdução. Metodologia. Paulo Emílio Pereira de Albuquerque 1
Comunicado Técnico 203 ISSN 1679-0162 Sete Lagoas, MG Dezembro, 2012 Foto: Paulo Emílio Pereira de Albuquerque O Aplicativo Computacional Irrigafácil Implementado Via Web para o Manejo de Irrigação dos
RETROCRUZAMENTOS AUXILIADOS POR MARCADORES MOLECULARES PARA CONVERSÃO DE LINHAGENS NORMAIS EM MILHO DE ALTA QUALIDADE PROTÉICA (QPM)
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