PLANEJAMENTO DE CURSOS 2016/01

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1 PLANEJAMENTO DE CURSOS 2016/01 OBJETIVOS DOS CURSOS Os cursos do LAMEB visam capacitar os usuários interessados na utilização de suas dependências e na utilização básica de seus equipamentos, incluindo-se noções de cuidados, uso, calibração e/ou manutenção básica. Esta sistemática visa dar independência aos usuários no desenvolvimento de seus experimentos e maximizar o uso compartilhado dos equipamentos. São definidos como usuários os Servidores Docentes e Técnico-Administrativos, os Alunos de Pós-Graduação (Mestrado, Doutorado e Pós-Doutorado) e Alunos de Graduação (Iniciação Científica) da UFSC. SISTEMÁTICA GERAL DOS CURSOS No início de cada curso, será feita a apresentação das Normas Gerais de uso do LAMEB e as Normas de Uso do equipamento ao qual o curso se refere. Além disso, será apresentada uma visão geral do site do LAMEB e dos procedimentos de reservas de uso de equipamentos através do site Quartzy. Os cursos de Noções Básicas de Uso de cada equipamento serão necessários para a certificação dos usuários, para posterior uso independente dos respectivos equipamentos. Após os cursos de Noções Básicas de Uso os usuários passarão por um período de acompanhamento pelos servidores do LAMEB (número definido de usos para cada equipamento). Somente após finalizar o período de acompanhamento e obter a certificação do corpo técnico do LAMEB os usuários passarão a serem denominados Usuários Credenciados e estarão habilitados a utilizar os equipamentos de forma independente, sendo seus crachás autorizados no sistema de acesso. Os cursos terão validade de 12 meses a contar da data de credenciamento, quando os usuários terão de realizá-los novamente para garantir o seu acesso ao LAMEB. No caso destes cursos de reciclagem, não há necessidade de realização de novo período de acompanhamento. A não realização dos cursos de reciclagem implica no cancelamento do acesso do usuário ao LAMEB. Os usuários pontuais de equipamentos do LAMEB, definidos como usuários que necessitam eventualmente utilizar um equipamento do laboratório, serão denominados Usuários Eventuais e não necessitam realizar os cursos de treinamento. Os Usuários Eventuais devem obrigatoriamente ser acompanhados pelo corpo técnico do LAMEB e não terão acesso irrestrito ao mesmo como os Usuários Credenciados. REQUERIMENTOS PARA REALIZAÇÃO DOS CURSOS Os cursos serão ofertados aos usuários que demonstrem necessidade de uso continuado de equipamentos do LAMEB, através do preenchimento da ficha de cadastro ( e da solicitação formal do professor orientador apontando a necessidade de uso do(s) equipamento(s). DATAS PROPOSTAS Para os usuários correntes: 08/01 a 25/01 - Levantamento da demanda de usuários que precisam ser capacitados para cada equipamento. 1

2 25/01 a 28/01 Análise dos formulários e contato com os usuários para definir as datas 01/02 - Início dos cursos. Para os novos usuários: 14/03 a 25/03 - Levantamento da demanda de usuários que precisam ser capacitados para cada equipamento. 28/03 a 01/04 Análise dos formulários e contato com os usuários para definir as datas 04/04 - Início dos cursos. Após o atendimento e treinamento dos usuários correntes, no início de cada semestre letivo será realizado um planejamento e os cursos serão ofertados conforme a demanda. CURSOS OFERECIDOS (1) Noções Básicas de Uso da Multileitora Infinite M200 Tecan Equipamento: A Multileitora Infinite M200 Tecan é um equipamento multifuncional que utiliza um monocromador para realizar leituras de absorbância (de 230 a 1000 nm), fluorescência (de 230 a 850 nm) e luminescência. A multileitora possui controle de temperatura, sistema de agitação de placas e sistema de injeção de soluções. A leitura de amostras pode ser realizada em cubetas ou microplacas de 6 a 384 cavidades. principais para o uso e correto funcionamento da Multileitora. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como definir os parâmetros de leitura, como salvar os dados, etc. (2) Noções Básicas de Uso da Multileitora SpectraMax Paradigm Molecular Devices Equipamento: A Multileitora SpectraMax Paradigm Molecular Devices é um equipamento multifuncional que utiliza um monocromador para realizar leituras de absorbância (de 230 a 1000 nm), fluorescência (de 360 a 850 nm) e luminescência (total ou 400 a 850 nm). A multileitora possui controle de temperatura e sistema de agitação de placas. A leitura de amostras pode ser realizada em microplacas de 6 a 1536 cavidades. 2

3 principais para o uso e correto funcionamento da Multileitora. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como definir os parâmetros de leitura, como salvar os dados, etc. (3) Noções Básicas de Uso da Multileitora EnSpire Perkin Elmer Equipamento: A Multileitora EnSpire Perkin Elmer é um equipamento multifuncional que permite realizar leituras através do Sistema Alpha Screen, além de leituras de luminescência. Esse equipamento possui sistema de agitação e a leitura de amostras pode ser realizada em microplacas de 6 a 384 cavidades. principais para o uso e correto funcionamento da Multileitora. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como definir os parâmetros de leitura, como salvar os dados, etc. (4) Noções Básicas de Uso do PCR em Tempo Real HT7900 Applied Biosystems Equipamento: O PCR Tempo Real HT 7900 Applied Biosystems permite o uso de microplacas de 96 e 384 cavidades na modalidade Standard e microplacas de 384 cavidades na modalidade Fast. Para a leitura das amostras, o equipamento utiliza um laser de argônio (488nm) como fonte de excitação, o que confere uma alta sensibilidade ao equipamento, e possibilita a realização de ensaios com sondas fluorescentes e com intercalantes de DNA. principais para o uso e correto funcionamento da PCR em Tempo Real. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como definir os parâmetros de leitura, como salvar os dados, etc. 3

4 (5) Noções Básicas de Uso do Fotodocumentador Chemidoc MP Equipamento: O ChemiDoc MP Bio-Rad é um sistema de fotodocumentação de géis e membranas, capaz de detectar e quantificar reações colorimétricas, fluorescentes e quimioluminescentes. principais para o uso e correto funcionamento do Fotodocumentador. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como definir os parâmetros de captura de imagens, como salvar os dados, como realizar a limpeza do equipamento, etc. (6) Noções Básicas de Uso do Processador de amostras Leica TP1020 e do Emblocador de amostras Leica EG1150H Equipamentos: O processador de amostras Leica TP1020 realiza os procedimentos de desidratação, diafanização e inclusão de amostras biológicas para análises em microscopia de luz. Esse equipamento possui cesto com capacidade para até 40 cassetes de lâminas. O emblocador Leica EG1150H é um equipamento preparado para incluir amostras previamente processadas em parafina (fixadas, desidratadas e impregnadas). Duração: 4 horas 30 minutos principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Processador e do Emblocador de amostras. (7) Noções Básicas de Uso do Corador de lâminas Leica AutoStainer XL e do Aplicador de lamínulas Leica CV5030 Equipamentos: O Leica AutoStainer XL é um equipamento para coloração de lâminas com capacidade para armazenar e executar até 15 diferentes protocolos de coloração. Cada protocolo pode conter até 25 passos com sequências de tempo de incubação e agitação flexíveis. O Leica CV5030 é um aplicador automatizado de lamínulas sobre lâminas com cortes histológicos. O equipamento tem capacidade de aplicar até 400 lamínulas por hora. e 30 minutos 4

5 principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Corador de amostras e do Aplicador de lamínulas. (8) Noções Básicas de Uso dos Criostatos Leica CM 1850 e Leica CM 1850 UV Equipamentos: Os Criostatos Leica CM 1850 e CM 1850 UV são utilizados para realização de cortes histológicos em congelamento (até -35ºC). Esses equipamentos possuem suporte de navalhas descartáveis e são ideais para trabalhos com imunohistoquímica e imunofluorescência. e 30 minutos (das 8h30min às 12h) principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Criostato. (9) Noções Básicas de Uso do Micrótomo Leica RM2255 Equipamento: O Micrótomo Leica RM2255 é utilizado para realizar cortes de amostras emblocadas em parafina, historesina e resina spurr. É um equipamento totalmente automatizado, com painel para controle do número de cortes e que realiza cortes ultrafinos (espessuras de até 0.5mm). e 30 minutos principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Micrótomo. (10) Noções Básicas de Uso do Microscópio Olympus Bx 41 Equipamento: O Microscópio Olympus Bx 41 possui sistema de epifluorescência com os filtros azul (Excitação de 330 a 385 nm e Emissão 420nm), verde (Excitação de 460 a 490 nm e Emissão de 520nm), vermelho (Excitação de 510 a 550 nm e Emissão de 590nm) e triplo. Através da iluminação diascópica (transmitida) é possível fazer análises de campo claro, campo escuro e de contraste de fase. e 30 minutos 5

6 principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Microscópio. Dentre os tópicos abordados estarão como usar o programa de captura e o sistema de fluorescência do equipamento. (11) Noções Básicas de Uso do Citômetro de Fluxo BD FACS Canto II Equipamento: O Citômetro de Fluxo BD FACSCanto II está equipado com três lasers (azul, vermelho e violeta) o que possibilita a análise de até oito cores ao mesmo tempo, além dos parâmetros de tamanho e complexidade. principais para o uso e correto funcionamento do Citômetro de Fluxo Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como realizar a aquisição das amostras, como salvar os dados, como realizar a limpeza do equipamento, etc. (12) Noções Básicas de Uso da Centrífuga Avanti J30I Equipamento: A Avanti J30I é uma centrífuga refrigerada que gera forças requeridas para uma grande variedade de aplicações. Os rotores que estão disponíveis no LAMEB são: JA-14 (250mL), JA-20 (50mL) e JA-20.1 (15mL), todos de ângulo fixo, que permitem centrifugações com forças de até 51000g e atingir velocidades de até rpm. Duração: 1 hora N de Vagas: 5 principais para o uso e correto funcionamento da centrífuga. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como trocar os rotores, como definir os parâmetros de centrifugação, como realizar a limpeza do equipamento, etc. (13) Noções Básicas de Uso da Ultracentrífuga Optima XE-100 6

7 Equipamento: A Ultracentrífuga Optima XE-100 é refrigerada e gera forças de centrifugação requeridas para uma grande variedade de aplicações. No LAMEB estão disponíveis os rotores SW 41 Ti que é do tipo swinging-bucket e 70.1 Ti que é de ângulo fixo. Esses rotores permitem centrifugações com forças de até g e atingir velocidades de até rpm. Duração: 1 hora N de Vagas: 5 principais para o uso e correto funcionamento da ultracentrífuga. Dentre os tópicos abordados estarão como ligar/desligar o equipamento, como trocar os rotores, como definir os parâmetros de centrifugação, como realizar a limpeza do equipamento, etc. (14) Noções Básicas de Uso do Microscópio Estereoscópico Olympus SZX2ZB16 SZX16 Equipamento: O Microscópio Estereoscópico Olympus SZX2ZB16 SZX16 possibilita análises de fluorescência e luz transmitida. e 30 minutos principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Microscópio. Dentre os tópicos abordados estarão como usar o programa de captura e o sistema de fluorescência do equipamento. (15) Noções Básicas de Uso do Microscópio Estereoscópico Olympus SZX16A Equipamento: O Microscópio Estereoscópico Olympus SZX16A com controle de foco automatizado e câmera de captura de imagens. e 30 minutos principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Microscópio. Dentre os tópicos abordados estarão como usar o programa de captura e o sistema de fluorescência do equipamento. 7

8 (16) Noções Básicas de Uso do Microscópio Invertido Olympus IX83 Equipamento: Com o Microscópio Invertido Olympus IX83 podem ser feitas análises de luz transmitida e fluorescência automatizada. O equipamento possui adaptador para a câmera de captura. e 30 minutos principais para o uso, as funcionalidades e os cuidados gerais do Microscópio. Dentre os tópicos abordados estarão como usar o programa de captura e o sistema de fluorescência do equipamento. (17) Análise de Dados através do Software ImageLab/Chemidoc MP Duração: 4 horas N de Vagas: 10 Tópicos que serão abordados: O curso será teórico-prático e nele serão apresentadas as principais ferramentas do Software ImageLab para a análise das imagens capturadas no Chemidoc MP. (18) Análise de Dados de Citometria de Fluxo através do Software Flowing Duração: 12 horas N de Vagas: 15 Tópicos que serão abordados: O curso será teórico-prático e nele serão apresentadas as principais ferramentas do Software Flowing. As análises dos dados de citometria de fluxo serão realizadas em conjunto, passo-a-passo. (19) Princípios de Citometria de Fluxo e Aquisição de Dados com o Software BD FACS Diva Duração: 12 horas N de Vagas: 14 Tópicos que serão abordados: O curso será teórico-prático e nele serão abordados os princípios da citometria de fluxo e apresentadas as principais ferramentas para aquisição de dados pelo Software BD FACS Diva. 8

9 (20) Quantificação de Proteínas por CBA e Análise dos Dados pelo Software FCAP Array Duração: 8 horas N de Vagas: 10 Tópicos que serão abordados: O curso será teórico-prático e nele serão abordados os princípios de quantificação de proteínas por CBA (Cytometry Beads Array) e as principais ferramentas do Software FCAP Array para análise dos dados. As análises dos dados de citometria de fluxo serão realizadas em conjunto, passo-a-passo. 9