PRELIMINARY CHARACTERIZATION OF THE rdna ITS-1 INTERNAL TRANSCRIBED SPACER-1 IN THE DROSOPHILA BUZZATII CLUSTER SPECIES (DIPTERA: DROSOPHILIDAE)

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CARACTERIZAÇÃO PRELIMINAR DO ESPAÇADOR INTERNO TRANSCRITO-1 ITS-1 DO DNA RIBOSSÔMICO NAS ESPÉCIES DO CLUSTER BUZZATII DE DROSOPHILA (DIPTERA: DROSOPHILIDAE) PRELIMINARY CHARACTERIZATION OF THE rdna ITS-1 INTERNAL TRANSCRIBED SPACER-1 IN THE DROSOPHILA BUZZATII CLUSTER SPECIES (DIPTERA: DROSOPHILIDAE) RESUMO Rogério Pincela Mateus 1 Carlos Roberto Ceron 2 Luciana Paes de Barros Machado 1 Fábio de Melo Sene 3 O DNA ribossômico (DNAr) possui seqüências intercalares, que variam intra e interpopulacionalmente, e seqüências codificadoras altamente conservadas e que servem como marcadores para comparação entre táxons divergentes e até mesmo entre diferentes reinos. O cluster buzzatii do grupo repleta é considerado monofilético e a morfologia da genitália é a principal característica diagnóstica para separar as espécies. Neste trabalho, foi realizado um estudo preliminar sobre o espaçador interno transcrito-1 ITS-1 do DNA ribossômico das espécies deste cluster, com o objetivo de verificar o nível de diferenciação interespecífica na estrutura da região deste espaçador, através da análise do tamanho dessa seqüência em seis diferentes espécies. Não foi encontrada diferenciação no tamanho do espaçador ITS-1 entre as seis espécies do cluster buzzati estudadas, o que reforça o monofiletismo sugerido para este cluster e indica que futuros estudos filogenéticos deverão ser realizados através do sequenciamento desta região do DNA ribossômico. Palavras-chave: DNAr; espaçador ITS-1; cluster buzzatii; espécies crípticas 1 UNICENTRO-Universidade Estadual do Centro-Oeste, CEDETEG-Centro de Desenvolvimento Educacional e Tecnológico de Guarapuava, Laboratório de Genética e Evolução do Departamento de Ciências Biológicas, Guarapuava, PR, Brasil. 2 UNESP-Universidade Estadual Paulista, Instituto de Biociências, Letras e Ciências Exatas, Departamento de Química e Ciências Ambientais, São José do Rio Preto, SP, Brasil. 3 USP-Universidade de São Paulo, FMRP-Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Laboratório de Genética Evolutiva do Departamento de Genética, Ribeirão Preto, SP, Brasil. Recebido para publicação em 01/02/2006 e aceito em 10/05/2006 Ambiência Guarapuava, PR v.2 n.1 p. 89-96 jan./jun. 2006 ISSN 1808-0251

Ambiência - Revista do Centro de Ciências Agrárias e Ambientais V. 2 N o 1 Jan/Jun. 2006 ABSTRACT The ribosomic DNA (rdna) have intergenic sequences which vary within and among populations, and highly conserved coding sequences that can be used as genetic marker for comparisons among taxa, even among kingdons. The Drosophila buzzatii cluster species of the Drosophila repleta group is considered monophiletic, and aedeagus morphology has been applied to diagnostify species. In this work, we performed a preliminary study using rdna ITS-1 internal transcribed spacer-1 in Drosophila buzzati cluster species in order to evaluated possible length polymorphism among six different species. No differentiation was found in the size of the ITS-1 spacer in the six species analyzed, reinforcing the monophyletic status of this group. The preliminary characterization of ITS-1 intergenic spacer demonstrated to be important for future phylogenetic studies, which should be realized through the sequencing of this rdna region. Key-words: rdna; ITS-1 spacer; Drosophila buzzatii cluster species; cryptic species INTRODUÇÃO O genoma nuclear possui vasta complexidade e muitos genes têm se mostrado úteis para inferir relações filogenéticas (Friedlander et al., 1992). O melhor exemplo de ampla utilização de genes nucleares em estudos filogenéticos é a unidade de repetição do DNA ribossômico (DNAr), a qual tem seqüências intercalares que variam dentro e entre populações e seqüências codificadoras que são altamente conservadas e que servem como marcadores para comparação entre táxons divergentes (Mindell e Honeycutt, 1990; Hillis e Dixon, 1991), até mesmo entre reinos diferentes (Pace et al., 1986). Em eucariotos, o DNAr é uma família multigênica organizada em unidades repetidas ou em tandem dentro da região organizadora nucleolar. Cada unidade repetida consiste de regiões altamente conservadas que codificam os genes para os RNAs 18S, 5,8S e 28S, intercaladas por regiões mais variáveis de espaçadores não-codificantes. Na maioria dos animais, existem de 100 a 500 cópias do gene DNAr no genoma nuclear. Cada unidade de transcrição, é composta de uma região promotora líder (ETS External Transcribed Spacer), uma região codificadora do RNAr 18S, um espaçador não-codificante interno (ITS-1), uma região codificadora de RNAr 5,8S, um outro espaçador não-codificante interno (ITS-2), uma região codificadora de RNAr 28S e, finalmente, um segmento intergênico espaçador não-transcrito, IGS (Hillis e Dixon, 1991; Polanco et al., 1998). A partir do momento em que seqüências do genoma nuclear possam ser eficientemente acessadas, elas passam a fornecer um estoque infindável de marcadores 90

MATEUS, R. P. et al para estudos genéticos e evolutivos. A grande vantagem de trabalhar com seqüências de loci conhecidos é que estes apresentam um potencial maior de verificação de sua variação em outras espécies e, assim, ser beneficiado pela sinergia entre estudos de evolução e sistemática molecular. A heterogeneidade na estrutura do DNAr pode ser devido a polimorfismos de tamanho e/ou mutações pontuais na sequência do espaçador intergênico (Bowen e Dover, 1995; Ganley e Scott, 1998) e, em alguns casos, à presença de elementos transponíveis, tais como descrito para o elemento R1 encontrado em Drosophila arizonae (Tovar et al., 2000) e para os elementos R1 e R2 encontrados em D. simulans (Perez- Gonzalez e Eickbush, 2001). Regiões não-codificadoras variáveis do DNAr são úteis na identificação de linhagens de Leishmania donovani (Tian et al., 2004), de espécies crípticas de diatomáceas (Beszteri et al., 2005) e de espécies de muitos insetos (Scott et al., 1993; Gao et al., 2004; Tartarotti e Ceron, 2005). Dentre estas regiões, o espaçador ITS-1 geralmente tem sido bem informativo (Baffi e Ceron, 2002). O cluster buzzatii do grupo repleta é formado atualmente por 7 espécies crípticas: Drosophila buzzatii, D. serido, D. borborema, D. koepferae, D. seriema, D. gouveai e D. antonietae. A distribuição geográfica de algumas destas espécies na América do Sul está esquematizada na Figura 1. Dentre os diversos marcadores estudados nestas espécies, o complexo arranjo de inversões cromossômicas define este cluster como sendo monofilético e a morfologia da genitália é considerada como a principal característica diagnóstica para separar as diversas espécies (Vilela, 1983; Silva e Sene, 1991, Tidon- Sklorz e Sene, 1995). Assim, o objetivo deste trabalho foi realizar um estudo preliminar sobre o espaçador intergênico ITS-1 do DNA ribossômico destas espécies para verificar o nível de diferenciação interespecífica na estrutura com relação ao tamanho da região deste espaçador. MATERIAL E MÉTODOS A análise de polimorfismo de tamanho para o espaçador interno transcrito-1 ITS-1 do gene DNAr foi realizada com indivíduos obtidos a partir de linhagens de seis espécies do cluster buzzatii: Drosophila buzzatii (Bahia, Brasil), D. serido (Cafarnaum, BA), D. gouveai (Pirenópolis, GO), D. seriema (Morro do Chapéu, BA), D. antonietae (Serrana, SP) e D. koepferae (Famatina, Argentina). As espécies Drosophila melanogaster, D. arizonae e D. mulleri, as quais já tiveram o tamanho do espaçador ITS-1 caracterizado (Tautz et al., 1988; Baffi e Ceron, 2002), foram utilizadas como controle. O DNA genômico foi extraído macerando moscas de cada espécie individualmente em tubos contendo 50 ml de solução de proteinase K (200 mg/ml em Squishing Buffer 1x), incubando-as a 37 o C por 30 minutos e depois a 95 o C por 3 91

Ambiência - Revista do Centro de Ciências Agrárias e Ambientais V. 2 N o 1 Jan/Jun. 2006 minutos. A amplificação da região completa do ITS-1 foi realizada através da reação em cadeia da polimerase (PCR), utilizando primers com homologia a extremidade 3 do gene 18S do DNAr, e à extremidade 5 do gene 5,8S do DNAr, de acordo com o método descrito por Baffi e Ceron (2002). FIGURA 1. Mapa de vegetação e distribuição das espécies de Drosophila do cluster buzzatii utilizadas neste trabalho. Modificado de Machado et al. (2006). Os fragmentos de DNA amplificados por PCR foram analisados em gel de agarose a 1,5% em Tampão TAE 1X ph 8,0, contendo 5 ml de solução 10 mg/ml de brometo de etídio. A separação dos fragmentos no gel foi realizada através de eletroforese a 50 V constantes na fonte durante 4 horas e a visualização das bandas foi feita através de luz ultravioleta. 92

MATEUS, R. P. et al RESULTADOS E DISCUSSÃO A Figura 2 representa o resultado da amplificação do espaçador internoo ITS-1 em Drosophila melanogaster, D. mulleri e D. arizonae e nas seis espécies de Drosophila do cluster buzzatii. Drosophila melanogaster apresentou o maior fragmento amplificado, seguido por D. mulleri e as seis espécies do cluster buzzatii e, finalmente, por D. arizonae. Nenhuma diferenciação no tamanho do espaçador ITS-1 foi encontrada entre as espécies do cluster buzzatii. FIGURA 2. Fragmentos do espaçador interno transcrito-1 ITS-1 do DNAr visualizados em gel de agarose a 1,5% corado com brometo de etídeo e luz ultraviloleta. M. Marcador de peso molecular em pares de base (pb) 100 base pair ladder (Pharmacia); 1. Drosophila melanogaster (726 pb); 2. D. mulleri; 3. D. arizonae; 4 e 5. D. serido; 6 e 7. D. gouveai; 8 e 9. D. seriema; 10 e 11. D. antonietae; 12 e 13. D. koepferae; 14. D. buzzatii. 93

Ambiência - Revista do Centro de Ciências Agrárias e Ambientais V. 2 N o 1 Jan/Jun. 2006 Tautz et al. (1988) realizaram um estudo detalhado dos genes para RNA ribossômico em Drosophila melanogaster. Segundo estes autores, a região do espaçador intergênico ITS-1, nesta espécie, apresenta 726 pares de bases (pb) de comprimento (entre as posições 1996-2721). Baffi e Ceron (2002) determinaram, em Drosophila mulleri e D. arizonae, que o espaçador ITS-1 apresenta 600 pb e 500 pb, respectivamente. Para as espécies do cluster buzzatii, analisadas no presente trabalho, esta região apresentou tamanho semelhante ao de D. mulleri, aproximadamente 600 pb. Segundo Tidon-Sklorz e Sene (1995) e Monteiro (1997), a morfologia do edeago da espécie Drosophila buzzatii a difere das demais espécies do cluster, mostrando que D. serido, D. gouveai, D. seriema, D.antonietae, D. koepfarae e D. borborema possuem uma grande semelhança morfológica entre si, o que sugere ancestralidade comum. Deste modo, estas seis espécies foram agrupadas por Ruiz et al. (2000), formando o subcluster serido. Nossos dados não separaram Drosophila buzzati das demais espécies do cluster, como a morfologia do edeago, indicando que para a detecção da variabilidade nessa região de DNAr é necessário a realização de sequenciamento, que será o próximo passo desta pesquisa. AGRADECIMENTOS À USP-Ribeirão Preto, UNESP-São José do Rio Preto e UNICENTRO pelos auxílios indiretos, e a Taylor Maxwell pela revisão do Summary. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS Baffi, M. A., Ceron, C. R. Molecular analysis of the rdna ITS-1 intergenic spacer in Drosophila mulleri, D. arizonae, and their hybrids. Biochem. Genet., v.40, p.411-421, 2002. Beszteri, B., Acs, E., Medlin, L. K. Ribosomal DNA sequence variation among sympatric strains of the Cyclotella meneghiniana complex (Bacillariophyceae) reveals cryptic diversity. Protist, v.156, p.317-333, 2005. Bowen T., Dover G. A. PCR amplification of intergenic spacers in the ribosomal DNA of Drosophila melanogaster reveals high levels of turnover in length and copy-number of spacers in geographically separated populations. Mol Ecol., v.4, p.419-427, 1995. Friedlander, T. P., Regier, J. C., Mitter, C. Nuclear gene sequences for higher level phylogenetic analysis: 14 promising candidates. Syst. Biol., v.41, p.483-490, 1992. Ganley A. R., Scott B. Extraordinary ribosomal spacer length heterogeneity in a Neotyphodium endophyte hybrid: implications for concerted evolution. Genetics, v.150, p.1625-1637, 1998. 94

MATEUS, R. P. et al Gao, Q., Zhou, H. Y., Li, J. L., Li, F. H., Choe, T. G., Yom, S. C., Zhu, G. D., Cao, J. Analysis of the sequences of the ribosomal DNA ITS-2 region for differentiating anopheline mosquitoes within hyrcanus group. Chin. J. Parasitol. Parasitic Diseases, v.22, p.277-279, 2004. Hillis, D. M., Dixon, M. T. Ribosomal DNA: Molecular evolution and phylogenetic inference. Quart. Rev. Biol., v.66, p.411-453, 1991. Machado, L. P. B., Madi-Ravazzi, L., Tadei, W. J. Reproductive relationships and degree of synapsis in the polytene chromosomes of Drosophila buzzatii species cluster. Braz. J. Biol., v.66, p. 279-293, 2006. Mindell, D. P., Honeycutt, R. L. Ribosomal RNA in vertebrates: Evolution and phylogenetic implications. Annu. Rev. Ecol. Syst., v.21, p.541-566, 1990. Monteiro, S. G. Morfometria multivariada de populações naturais de Drosophila serido. Tese de Doutorado, Departamento de Genética, Faculdade de Medicina, USP, Ribeirão Preto, São Paulo, 1997. Pace, N. R., Olsen, G. J., Woese, C. R. Ribosomal RNA phylogeny and the primary lines of evolutionary descent. Cell,, v.45, p.325-326, 1986. Perez-Gonzalez, C. E., Eickbush, T. H. Dynamics of R1 and R2 elements in the rdna locus of Drosophila simulans. Genetics, v.158, p.1557-1567, 2001. Polanco C., Gonzalez, A. I., de la Fuente, A., Dover, G. A. Multigene family of ribosomal DNA in Drosophila melanogaster reveals contrasting patterns of homogenization for IGS and ITS spacer regions. A possible mechanism to resolve this paradox. Genetics, v.149, p.243-256, 1998. Ruiz, A., Cansian, A. M., Kuhn, G. C. S., Alves, M. A. R., Sene, F. M. The Drosophila serido speciation puzzle: putting new pieces together. Genetica, v.108, p.217-227, 2000. Scott, J. A., Brogdon, W. G., Collins, F. H. Identification of a single specimens of the Anopheles gambiae complex by the polymerase chain reaction. Am J Trop Med Hyg, v.49, p.520-529, 1993. Silva, A. F. G., Sene, F. M. Morphological geografic variability in Drosophila serido (Diptera, Drosophilidae). Rev. Bras. Entomol,. v.35, p.455-468, 1991. Tartarotti, E., Ceron, C.R. Ribosomal DNA ITS-1 intergenic spacer polymorphism in triatomines (Triatominae, Heteroptera). Biochem. Genet., v.43, p.365-373, 2005 Tautz, D., Hancock, J. M., Webb, D. A., Tautz, C., Dover, G. A. Complete sequences of the rrna genes of Drosophila melanogaster. Mol. Biol. Evol, v.5, p.366-376, 1988. Tian, Y., Chen, J. P., Hu, X. S. Cloning and sequence analysis of the ribosomal DNA ITS gene of Leishmania donovani isolates from hill foci of China. Chin. J. Parasitol. Parasitic Diseases, v.22, p.294-296, 2004. 95

Ambiência - Revista do Centro de Ciências Agrárias e Ambientais V. 2 N o 1 Jan/Jun. 2006 Tidon-Sklorz, R., Sene, F. M. Evolution of the buzzatii cluster (Drosophila repleta group) in the Northeastern South America. Evolución Biológica, v.8/9, p.71-85, 1995. Tovar, F. J., Silva, L. A. F., Rodarte, R. S., Leoncini, O. Characterization of ribosomal DNA (rdna) in Drosophila arizonae. Genet. Mol. Biol., v.23, p.231-233, 2000. Vilela, C. R. A revision of the Drosophila repleta species group (Diptera, Drosophilidae). Rev. Bras. Entomol., v.27, 114p., 1983. 96