Baixar o FORMULÁRIO nas páginas do Departamento de Anatomia (www.anatomia.uerj.br), do BHEx (www.bhex.uerj.br), ou da FisioCirurgia



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Transcrição:

O laboratório de microscopia confocal/fluorescência tem a finalidade de prestar serviços de microscopia por fluorescência utilizando módulo confocal de varredura à laser para docentes dos Programas de Pós--Graduação em Biologia Humana e Experimental Pós e em Fisiocirurgia da UERJ. O equipamento e acessórios foram obtidos em Projeto da FAPERJ (Processo Nº EE-26/190.311/ 2012),, estando assim disponíveis desde que 2012) observadas as regras específicas de utilização.

Coordenadores: Prof Carlos A. Mandarim Mandarim--de de--lacerda e Prof Francisco J. B. Sampaio, Sampaio, Profª Responsável Drª Tatiane Silva Faria 3. Técnico responsável: responsável: Bióloga Thatiany Marinho 5. Solicitação de Serviço: Serviço: somente por E-Mail para agendaconfocal@gmail.com (para onde deve ser enviado o formulário preenchido). Baixar o FORMULÁRIO nas páginas do Departamento de Anatomia (www.anatomia.uerj.br), do BHEx (www.bhex.uerj.br), ou da FisioCirurgia (www.fisiocirurgia.uerj.br); 6. Localização do laboratório: laboratório: Departamento de Anatomia 7. Usuários: Docentes dos Programas de Pós Graduação em Biologia Usuários: Humana e Experimental, e Fisiocirurgia Fisiocirurgia.. 4.

Funcionalidades: Microscopia confocal se destina ao estudo de amostras biológicas (in vivo e fixadas) fluorescentes (autofluorescentes ou marcadas). Ferramenta fundamental para estudos em Biologia Celular, permite estudar células/tecidos localizando proteínas no interior das células/tecidos e a interação entre proteínas. As amostras são identificadas com marcação por imunofluorescência com diferentes fluorocromos. As técnicas devem ser adequadas ao tipo de amostra e procedimento. 3. O microscópio Confocal é útil para a formação de imagens em 2D (2 dimensões), 3D (3 dimensões).

Características do Equipamento: Sistema de Microscópio Confocal de Varredura a Laser da marca Nikon, modelo C Unidade de laser: módulo de 3-laser (AOM ou modulação manual). Detector padrão: detector fluorescente até 4 canais com 3 PMT, detector diascópico: 1 canal PMT. Módulo laser: Laser de estado sólido dispondo de uma ampla faixa de lasers visíveis para atender à maioria das aplicações padrão de fluorescência, incluindo: 405nm, 488nm e 640nm. Possibilitando a excitação da amostra nos seguintes comprimentos de onda: 358nm, 495nm e 556nm e a emissão em 461nm, 519nm e 573nm. 3. Módulo eletrônico e Software NIS-Elements C: Visualização e renderização de 3D volume/ortogonal, costura de imagem grande, tempo transcorrido de ponto múltiplo, separação espectral, DAQ e controle I O, análise de tempo transcorrido, deconvolução, análise de proporção; segmentação morfológica, saída de arquivo AVI e MOV.

Protocolo para Imunofluorescência (Tecidos Congelados) Material: Tecidos cortes de 5 μm de espessura em lâminas silanizadas Alvo: proteínas de matriz extracelular, intracelulares ou de superfície celular Revelação: fluoróforos Alexa a) Fixar com acetona a -20 C... 15 b) PBS 1X... 3 x 5 c) Triton X-100 0,5% (somente para proteínas intracelulares)... 15 d) PBS 1X... 3 x 5 e) PBS/BSA 1%... 3 x 5 f) PBS/BSA 5%... 1h g) Anticorpo primário temperatura ambiente (diluir em PBS/BSA 1%)... 2h h) PBS/BSA 5%... 20 i) PBS/BSA 1%... 3 x 5 j) Anticorpo 2 conjugado com fluoróforo Alexa..... 1h k) PBS 1X... 5 x 5 l) Água destilada ou bidestilada...3 x 2 m) DAPI 1:1000...5 n) Montar lâminas com N-propil-galato ou SlowFade (Invitrogen): * Adicionar 1 gota componente C (tampão) do kit SlowFade (Invitrogen)...5 * Montar lâminas com SlowFade - 1 gota componente A (Invitrogen) o) Selar lamínulas com esmalte no dia seguinte Obs: Não esquecer do controle negativo (sem anticorpo primário, somente anticorpo secundário) e de montar uma lâmina sem qualquer anticorpo.

Protocolo para Imunofluorescência (Inclusão em Parafina/Paraplast) Material: Tecidos cortes de 5 μm de espessura em lâminas silanizadas (para proteínas intracelulares) Revelação: fluoróforos Alexa a) Estufa 58 C...20 b) Xilol 1......10 c) Xilol 2........10 d) Álcool 100%... 5 e) Álcool 90%.... 3 f) Álcool 70%... 3 g) H2O destilada... 3 h) Tampão Citrato 60 C ph 6,0...... 20 i) Ambientalizar...30 j) PBS 1X... 3 x 5 k) Triton X-100 0,5% (somente para proteínas intracelulares)...... 15 l) PBS 1X... 3 x 5 m) Bloqueio com Cloreto de Amônio... 30 n) Bloqueio com Glicina 2%... 30 o) PBS/BSA 5%... 1h p) Anticorpo primário temperatura ambiente (diluir em PBS/BSA 1%)... overnight q) PBS/BSA 5%... 20 r) PBS 1X... 5 x 5 A partir deste momento NÃO expor a luz Anticorpo 2 conjugado com fluoróforo Alexa..... 1h t) PBS 1X... 5 x 5 u) DAPI...5 v) Lavagem H2O destilada... 1 X w) Montar lâminas com N-propil-galato ou SlowFade (Invitrogen): * Adicionar 1 gota componente C (tampão) do kit SlowFade (Invitrogen)...5 * Montar lâminas com SlowFade - 1 gota componente A (Invitrogen) x) Selar lamínulas com esmalte no dia seguinte Obs: Não esquecer do controle negativo (sem anticorpo primário, somente anticorpo secundário) e de montar uma lâmina sem qualquer anticorpo (para verificar a autofluorescência) s)

Opções de recuperação antigênica (para tecidos fixados, se necessário): Alta temperatura: 3. 4. Banho-Maria - citrato 10mM ph 6.0 por 20 min, 30 min à temperatura ambiente. Panela de pressão (pp) - citrato 10mM ph 6.0 por 4 min contados a partir da pressurização total. Esfriar por 20 min sob água corrente. Panela à vapor (Steamer- pv): citrato 10mM ph 6.0 por 30-60 min. Esfriar por 20 min à temperatura ambiente. EDTA 1mM (Sigma E-5134) ph 8 por 30 min em Banho-Maria (pv). Esfriar por 30 min à temperatura ambiente. Digestão enzimática: Tripsina/Pepsina (Digest-All kit, Invitrogen 003006) a 37ºC; Proteinase-K (Gibco cat.25530-015) por 20 min a 37ºC

1) 2) O FORMULÁRIO requisitando os serviços deve ser preenchido, assinado e enviado por email para: agendaconfocal@gmail.com; Baixar o FORMULÁRIO nas páginas do Departamento de Anatomia (www.anatomia.uerj.br), do BHEx (www.bhex.uerj.br), ou da FisioCirurgia (www.fisiocirurgia.uerj.br); Observações importantes: a. Amostras com muito background ou com marcação fraca não ficarão melhores no confocal. b. Limite o número de imagens ao mínimo necessário. c. Os arquivos gerados serão de responsabilidade do usuário: cada usuário deverá levar seu CD/ DVD. O microscópio não está conectado à Internet e está proibida a utilização de pen drive drive..

3. Cada sessão terá duração máxima de 3 h. Apenas o técnico responsável operará o equipamento. Haverá turnos da manhã (912h) ou tarde (14-17h). Desistências e atrasos superiores a 15 min devem ser avisados com antecedência. 4. Para melhor atendimento, é estipulado um máximo de 9 h semanais por usuário. 5. O agendamento de sessões será catalogado por usuário, marcandose um horário por vez. O próximo horário somente poderá ser marcado após o uso. 6. As sessões devem ser necessariamente acompanhadas pelo usuário. Não é atribuição do técnico conhecer a amostra ou interpretar os resultados. Ajudará se o usuário trouxer uma imagem (artigo ou arquivo) do que deseja visualizar.