TRISTEZA PARASITÁRIA BOVINA E PREMUNIÇÃO

Transcrição

1 TRISTEZA PARASITÁRIA BOVINA E PREMUNIÇÃO Carlos Luiz Massard 1 Cleber Oliveira Soares 2 José Carlos Pereira de Souza 3 Adivaldo Henrique da Fonseca 4 1 Professor Titular, PhD., Dep. de Parasitologia Animal, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Rod. Rio São Paulo, Km 47, Seropédica-RJ, ; 2 Médico Veterinário, MSc., Doutorando do Curso de Pós-Graduação em Medicina Veterinária - Parasitologia Veterinária, UFRRJ. 3 Médico Veterinário, MSc., Ministério da Agricultura e do Abastecimento; 4 Professor Titular, PhD., Dep. de Epidemiologia e Saúde Pública, Instituto de Veterinária, UFRRJ. INTRODUÇÃO...1 ETIOLOGIA...2 BIOLOGIA...2 EPIZOOTIOLOGIA...4 IMPORTÂNCIA...5 PATOGENIA E SINTOMAS CLÍNICOS...5 IMUNIDADE...7 DIAGNÓSTICO...7 CONTROLE...8 TRATAMENTO...9 PREMUNIÇÃO PARA A TRISTEZA PARASITÁRIA BOVINA...9 PREMUNIÇÃO...10 MÉTODOS DE PREMUNIÇÃO...10 VACINAS...12 IMUNÓGENOS NÃO VIÁVEIS...12 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS...13 INTRODUÇÃO Tristeza Parasitária Bovina (TPB) é a denominação à associação dos agentes da babesiose e anaplasmose dos bovinos. Esta enfermidade é desencadeada pela massiva destruição de eritrócitos, decorrente dos aspectos biológicos dos agentes em realizarem parte do seu ciclo no interior destas células. O complexo TPB é conhecido desde o final dos século XIX onde a enfermidade era considerada como entidade única. Em 1888, BABÉS descreveu um microrganismo intraeritrocítico em bovinos na Romênia, denominando-o Haematococcus bovis, posteriormente classificado como Babesia bovis. No sudoeste dos Estados Unidos da América (EUA), em 1893, SMITH & KILBORNE identificaram o hematozoário Pyrosoma

2 bigeminum, classificado posteriormente como Babesia bigemina, causador de grandes perdas econômicas no rebanho bovino texano, enfermidade então denominada febre do Texas. Neste mesmo trabalho, os autores identificaram o vetor (Boophilus annulatus) e o modo de transmissão. Esta foi uma das mais importantes descobertas na história da Parasitologia, por ter sido a primeira demonstração de que os carrapatos são hábeis transmissores de patógenos. No início do século XX, na África do Sul, foi identificado o terceiro agente etiológico do "complexo TPB", o Anaplasma marginale, descrito como agente do mal da bile (THEILER, 1910). No Brasil, o primeiro registro da febre do Texas foi realizado por FAJARDO (1901), ao examinar animais recém-importados e em fase de aclimatação. A anaplasmose, no Brasil, foi primeiro relatada por CARINI (1910). A distribuição da TPB tem relação estreita com a distribuição dos seus vetores; ocorrendo nos países de clima tropical e sub-tropical do globo. Esta é uma das doenças mais importantes na pecuária bovina, e é considerada fator limitante no desenvolvimento e melhoramento dos rebanhos bovinos (MC COSKER, 1981). ETIOLOGIA A TPB é decorrente, principalmente, da associação de protozooses, determinadas pela B. bigemina e pela B. bovis, associadas a rickettsiose causada pela A. marginale (FONSECA & BRAGA, 1924; MASSARD & FREIRE, 1985). Estes agentes podem apresentarem-se ainda em conjunto com outros hematozoários como a rickettsia Ehrlichia bovis que parasita leucócitos (linfócitos e monócitos) (Fig. 1), levando ao agravamento da TPB (MASSARD & MASSARD, 1982). BIOLOGIA O carrapato, B. microplus, durante o repasto sangüíneo, inocula no hospedeiro os esporozoítos, estas formas penetram nos eritrócitos, se diferenciam em trofozoítos e multiplicam-se dando origem aos merozoítos. Estes rompem as hemácias e invadem novos eritrócitos continuando o processo de divisão do tipo merogônica. Durante o hematofagismo, o carrapato ingere células sangüíneas e com estas os eritrócitos que contém trofozoítos. Na luz intestinal do carrapato ocorre o rompimento dos eritrócitos com liberação dos zoítos que evoluem para corpos raiados ("gametas"). Estes corpos, contendo material genético e sem dimorfismo sexual, se fusionam dois a dois originando os zigotos. Esta fase representa a gametogonia dos babesiideos. Os zigotos darão origem aos cinetos (formas móveis) que penetram em células do epitélio intestinal do carrapato e realizam divisão multípla originando novos cinetos. Estes são liberadas na hemolinfa e invadem células de vários órgãos, fazendo novas divisões até a morte do carrapato. Quando os oócitos são infectados haverá a multiplicação no ovo, no embrião e em diversos órgãos da larva; caracterizando assim, a transmissão transovariana. Quando os cinetos penetram nas células epiteliais das glândulas salivares, esses se transformam em esporontes; os esporontes se rompem e liberam os esporozoítos, formas infectantes para o hospedeiro vertebrado. Esta multiplicação representa a fase de esporogonia (FRIEDHOF, 1982; KAKOMA & MEHLHORN, 1994; MASSARD et al., 1998). 2

3 Babesia bovis: Esta espécie possui dimensões pequenas, atinge no máximo 3µm e apresenta morfologia, predominantemente, arredondada ou lanceolada que apareçem frequentemente aos pares (FONSECA & BRAGA, 1924). Apresenta coloração basofílica, idêntica tanto pelo corante de giemsa, leishman ou outros corantes derivados do romanovski e apresenta pequena massa citoplasmática e abundante massa nuclear. É uma espécie que possui acentuado tropismo pela circulação de órgãos viscerais e centrais e pouco tropismo pela circulação periférica (Fig. 2). O carrapato B. microplus é o vetor deste agente; a infecção é adquirida através das fêmeas em ingurgitamento e, as larvas infectadas, via transovariana, serão o único ínstar de B. microplus a transmitir a B. bovis ao bovinos (MAHONEY & MIRRE, 1979). Babesia bigemina: Este organismo possui tropismo pela circulação periférica e raramente é encontrado no plasma ou superfície eritrocítica. É muito pleomórfico, as formas pequenas possui bordos irregulares, devido à emissão de pseudópodes; as formas piriformes podem aparecer isoladas, mas frequentemente estão bigeminadas com a extremidade disposta em ângulo obtuso ou agudo (Fig. 3) (FONSECA & BRAGA, 1924). Classificada como grande babésia, esta espécie possui dimensões de 3 a 5 µm. As formas arredondadas confundem-se com as formas de B. bovis. As formas amebóides e ovaladas têm sido relacionadas ao ciclo sexuado, o qual se completa no vetor, e as formas piriformes relacionam-se ao ciclo assexuado. Apresenta coloração basofílica pelos corantes derivados do romanovski. Na fase de convalescência do hospedeiro, a morfologia deste babesídeo pode estar alterada, podendo ainda encontrar elementos livres no plasma. As drogas babesicidas também induzem à modificações morfológicas (MASSARD & FREIRE, 1985). Esta espécie também é transmitida pelos carrapatos B. microplus, cuja infecção no carrapato também ocorre no período de ingurgitamento da fêmea; existe a transmissão transovariana, porém, apenas os ínstares de ninfa e adultos transmitem este agente para os bovinos (MASSARD et al., 1998). Os machos de B. microplus, devido à sua mobilidade e longevidade podem transmitir a B. bigemina para diferentes bovinos (RIEK, 1964; FRIEDHOF & SMITH, 1981). Anaplasma marginale: É uma rickettsia caracterizada morfologicamente como um pequeno corpo arredondado ou ovalado, com características tintoriais basofílicas aos corantes derivados do romanovski. Este organismo está localizado no eritrócito, em 80 a 90% das ocorrências, periférica/marginalmente (MOREL, 1989). Mais de um corpo podem estar presentes no eritrócito. Corado pelo giemsa o A. marginale apresenta-se sob forma arredondada, densa e homogênea, com tonalidade purpúrea, e dimensões de 0,3 a 1,0 µm (Fig. 4). Cada corpo pode conter de um a oito subunidades (corpúsculos iniciais) que são as formas infectantes. Os corpúsculos iniciais aderem-se às hemácias e sua entrada se dá por invaginação da membrana citoplasmática, embolsamento do microrganismo e a posterior formação do vacúolo parasitóforo. Logo após a penetração no eritrócito, o corpúsculo inicial se multiplica por divisão binária, sendo discutida a multiplicação por brotamento, e forma o corpo elementar. A transmissão do A. marginale se dá mecanicamente, principalmente por dípteros hematófagos (tabanídeos, culicídeos e muscídeos), os carrapatos são importantes quanto à transmissão transestadial e para o B. microplus o macho tem papel relevante. A utilização de agulhas, instrumentos cirúrgicos e outros objetos perfurantes contaminados são fontes de infecção (RIBEIRO, 1991; MASSARD et al., 1998). São descritas outras espécies da família Anaplasmataceae parasitando bovinos, como o A. centrale THEILER, 1911 e Paranaplasma caudatum KREIER & RISTIC, 1963, a 3

4 segunda espécie ainda não descrita no Brasil. O A. centrale, nome dado pelo fato de 80 a 90% das formas estarem no centro do eritrócito (Fig. 5) (MOREL, 1989) é o agente etiológico da anaplasmose bovina benigna; no entanto, esta rickettsia quando foi diagnosticada pela primeira vez no Brasil, em bovinos da raça holandesa no município do Rio de Janeiro, os animais desenvolveram doença aguda (MASSARD et al., 1980). EPIZOOTIOLOGIA Distribuição Geográfica: A TPB encontra-se amplamente distribuída. As babesioses determinadas pelas espécies B. bigemina e B. bovis ocorrem nas regiões tropicais e sub-tropicais do mundo, entre os paralelos 32 0 N e 32 o S, região onde encontrase o B. microplus (MC COSKER, 1981). E a anaplasmose ocorre tanto em regiões tropicais e sub-tropicais como em zonas temperadas (DALGLIESH et al, 1990; KESSLER et al., 1992). A TPB possui diferentes situações epizootiológicas (MOREL, 1989): Estabilidade enzoótica: Nesta situação existe uma alta probabilidade de infecção primária antes do desaparecimento da proteção passiva adquirida por anticorpos colostrais. Neste estágio, a infecção ocorre em aproximadamente 100% dos bezerros com 3 a 4 meses e idade, embora a doença seja normalmente inaparente. A qualidade da proteção passiva é garantida pelo grau de premunição maternal. Instabilidade enzoótica: O risco da doença clínica nesta situação é muito alto, pois frequentes infecções primárias ocorrem após a perda da proteção passiva, entre a idade de 4 meses a 3 anos. A situação pode vir a ser crítica quando o vetor começa a ficar escasso, principalmente em casos de massivos tratamentos acaricidas, mesmo não erradicando-o. Assim, os casos clínicos são raros, pois a maioria dos bovinos não são infectados e, consequentemente premunidos; a região pode tornar-se livre, o que é desfavorável no momento da introdução e/ou proliferação dos carrapatos, pois os animais estarão desprotegidos. A epizootiologia da TPB está influenciada ainda pela relação hemoparasitohospedeiro, onde o fator primordial é a imunidade, a qual é dependente da especificidade dos anticorpos. Entretanto, não existe uma correlação entre título de anticorpos e o nível de proteção, exceto em animais jovens onde mesmo os baixos títulos asseguram efetiva proteção. Relação hemoparasito-carrapato: Nesta relação está determinada a infecção do carrapato pelo agente (Babesia sp) e a infectividade à geração seguinte. Em altas parasitemias, as fêmeas de B. microplus sofrem severas lesões intestinais pelas sucessivas multiplicações da Babesia nas células do epitélio digestivo. Este processo pode reduzir a oviposição do carrapato, mas as larvas terão uma relativa quantidade de B. bovis, assim como as ninfas e adultos para B. bigemina (RIEK, 1966). Quanto ao A. marginale é sabido que este se multiplica nas células intestinais do carrapato, mas sua transmissão via transovariana ainda é discutível (RIBEIRO, 1991; KESSLER et al., 1992). Relação carrapato-hospedeiro: A variação sazonal, a biologia e a dinâmica populacional determinam os períodos de atividade do vetor no hospedeiro e, consequentemente, o período de infecção ou reinfecção (MOREL, 1989). O 4

5 desenvolvimento da Babesia no vetor depende do ciclo de vida do carrapato e, principalmente, da época quando o carrapato é infectado e da época em que este transmitirá o piroplasmídeo ao hospedeiro. O risco de infecção está ainda relacionado ao habitat do carrapato, e em muitas situações o ixodídeo pode permanecer com o agente por longos períodos (NEITZ, 1956; FRIEDHOF & SMITH, 1981; MOREL, 1989). IMPORTÂNCIA A TPB é de grande importância em todo o mundo devido às grandes perdas econômicas. Segundo MC COSKER (1981), se o EUA não tivessem erradicado o B. annulatus, as perdas decorrentes do carrapato e da TPB (babesioses) estariam próximo de 500 milhões de dólares anuais. Na América Latina considera-se perdas em torno de 266 milhões de dólares/ano. A anaplasmose nos EUA é responsável por cerca de 100 milhões de dólares anuais (MC CALLON, 1973). No Brasil a associação de B. microplus e as doenças transmitidas por ele determinam prejuízos estimados em mais de 1 bilhão de dólares (Ministério da Agricultura do Brasil, 1985). Esta importância decorre do fato destes agentes serem responsáveis por prejuízos diretos e indiretos. A morbidade determinada pela TPB é alta nos países tropicais e subtropicais, e em áreas de instabilidade a taxa de mortalidade é alta. Além das consequências decorrentes da patogenia, deve-se levar em consideração a onerosidade do tratamento, pois as drogas são específicas e de custo elevado. PATOGENIA E SINTOMAS CLÍNICOS A patogenia para o complexo TPB difere em relação aos agentes etiológicos e, consequentemente, à expressão sintomatológica. As principais ações são decorrentes de: Ação hemolítica: Na TPB a eritrólise é decorrente da multiplicação assexuada, dos piroplasmídeos, de forma gradual e progressiva, levando a acentuada diminuição do número de hemácias circulantes. A destruição de eritrócitos é bem marcada pela B. bigemina, enquanto a B. bovis é considerada menos hemolítica (ARAGON, 1976). Na anaplasmose não há hemólise intravascular, as hemácias parasitadas e/ou marcadas são fagocitadas pelas células do sistema fagocítico mononuclear, a nível de baço principalmente; assim a anemia é consequência da remoção dos eritrócitos parasitados da circulação. Entretanto na anaplasmose pode ocorrer um processo imuno-mediado, determinado pela destruição de eritrócitos normais (BOERO, 1974). Ação sobre o sistema digestivo: Nos casos graves de TPB é frequente observar alterações digestivas como diarréia ou coprostase e desidratação, associada à icterícia e anemia em função da eritrólise. A nível hepático, sobrevém a degeneração dos hepatócitos, seguido de bilirrubinemia devido ao desdobramento de pigmentos hemáticos. Na babesiose encontra-se uma hemoglobinemia intensa, já na anaplasmose a hemoglobina é decomposta e os pigmentos biliares estaram em altas concentrações no plasma e nas fezes (BOERO, 1974). Na babesiose a hemoglobina liberada passa ao plasma para então ser expelida pela urina ou acumular nas cavidades como no saco pericárdico. Na anaplasmose a massiva destruição dos eritrócitos levará a excessiva 5

6 produção biliar, ficando a vesícula aumentada com bile espessa e grumosa ( mal da bile ) (MASSARD & FREIRE, 1985). A insuficiência hepática permite a passagem de sais e ácidos à circulação, os quais podem determinar uma toxemia. A grumosidade e o espessamento biliar favorece o aparecimento das disfunções digestivas. A ação sobre o sistema digestivo terá como consequência a esplenomegalia, a hepatomegalia, a icterícia, a coprostase ou a diarréia, dentre outros distúrbios. Ação sobre a termorregulação: Existe uma relação, nas babesioses, entre a eritrólise, hemoglobinúria e hipertermia. Os primeiros sinais febris normalmente são decorrentes da infecção pela B. bigemina, cuja parasitemia é maior e a febre próxima de 40 o C (MASSARD & FURLONG, 1994). Em relação a infecção pela B. bovis, a parasitemia é menor, pois esta tem características viscerotrópicas, não havendo intensa hemoglobinemia, hemoglobinúria e a febre pode ser menor que para a B. bigemina. A anaplasmose, normalmente, caracteriza a segunda fase da TPB e o terceiro pico febril, embora esta possa manifestar-se de forma isolada, e a febre é acima de 40 o C (FONSECA & BRAGA, 1924). Ação sobre a hematopoiese: A atividade da medula óssea pode ser caracterizada pela presença de reticulócitos circulantes. A hemólise intravascular nas babesioses associada a intensa função esplênica quanto a hemocaterese (anaplasmose e babesiose), determina uma parada de atividade esplênica quanto a sua função frenadora. Assim a medula óssea enviará grande número de células imaturas à circulação (BOERO, 1974). Estas células são ineficientes no transporte de oxigênio. A disfunção dos órgãos hematopoiéticos e do tecido sanguíneo, quanto a eritrólise, a diminuição da resistência globular, a liberação de hemoglobina e a trombose capilar, caracterizam a vitória do parasitismo sobre a barreira imunológica do hospedeiro, o que fará o animal apresentar um quadro patológico de gravidade variável. Ação viscerotrópica bloqueante: Enquanto a B. bigemina e o A. marginale apresentam tropismo pela circulação periférica, para a B. bovis esse comportamento é raro. Esta espécie possui tropismo por capilares de órgãos centrais como cérebro, cerebelo e meninges, e órgãos viscerais como rins, baço, pulmão, e coração. A B. bovis determina uma patologia menos anemiante e menos icterógena com característica viscerotrópica aglutinante com bloqueio de vasos (MASSARD & FREIRE, 1985). A B. bovis, a nível de capilares do SNC, pode desencadear a sintomatologia nervosa decorrente de alterações devido a congestão da rede capilar, aglutinação de hemácias e trombose. Assim, o animal apresentará sinais de incoordenação motora, sialorréia, andar vacilante, cefeléia, culminando com encefalites e morte. Ação sobre a função renal: Na babesiose a hemoglobinúria é consequência da massiva eritrólise intravascular o que é bem marcada na infecção pela B. bigemina. Na anaplasmose, no entanto, não há hemoglobinúria. É comum ocorrer na babesiose nefropatias devido à deposição de pigmentos férricos e acúmulo de cristais no glomérulo renal (HILDEBRANDT, 1981). Os sinais clínicos associados a toxemia hematógena, a lesão renal, a desidratação, a perda da viscosidade sanguínea e a diminuição da tensão superficial do sangue, determinam a morte do animal (MASSARD & FREIRE, 1985). 6

7 IMUNIDADE A imunidade contra os agentes da TPB depende da especificidade dos anticorpos. No entanto, não existe correlação entre o título de anticorpos e o nível de proteção, exceto em animais jovens, onde mesmo títulos baixos pode conferir proteção (MOREL, 1989). Variações antigênicas podem ocorrer entre amostras de agentes provenientes de diferentes regiões geográficas. Estas diferenças também são aplicáveis quanto a patogenicidade. Tais fenômenos são comuns entre as babésias, e não estão claramente compreendidos. As babésias possuem um mecanismo de variação antigênica que aparece após a primeira expressão clínica/imunológica do hospedeiro. Este fenômeno é comum entre os protozoários Apicomplexa (TAVERN & BRADLEY, 1997). Os antígenos permanecem estáveis durante a primo-infecção; entretanto, a recorrência da enfermidade ocorre como um resultado da produção de uma nova variação antigênica não correspondendo aos anticorpos pré-estabelecidos (MOREL, 1989). Os agentes da TPB têm uma grande habilidade de evasão ao sistema imune do hospedeiro seja no caráter humoral ou celular. Pouco se conhece sobre a imunidade às rickettsias, mas acredita-se que estas possuem mecanismos similares aos Apicomplexa. Assim, a imunidade do tipo coinfecciosa é de grande importância, além de ter papel relevante quanto a epizootiologia da enfermidade. DIAGNÓSTICO O diagnóstico da TPB pode ser dividido em: Diagnóstico clínico: As formas clínicas da TPB podem ser confundidas ou estarem associadas a outros estados mórbidos (ARAGON, 1976). Em geral a babesiose é a primeira manifestação da TPB, onde a B. bigemina determina febre próxima de 40 o C, anemia, debilidade geral, prostação, inapetência, perda de peso, desidratação e hemoglobinúria (ESTRADA PEÑA, 1984). Quanto a B. bovis raramente ocorre hemoglobinúria. A característica viscerotrópica deste babesídeo levará ao bloqueio de capilares e consequente congestão de órgãos, e esta babésia no SNC desencadeará o quadro neurológico de incoordenação, movimentos de pedalagem, salivação e opistótomo (KESSLER et al., 1992). A babesiose visceral tem como diagnóstico diferencial a raiva dos bovinos e ainda intoxicação por plantas como a Cestrum laevigatum que determinam sintomas neurológicos. A anaplasmose representa a segunda fase da TPB, onde ocorre febre muito alta (acima de 40 o C), palidez de mucosas, icterícia marcada, ausência de hemoglobinúria, desidratação, perda do apetite, coprostase, fezes ressequidas e com estrias de sangue. Pode ocorrer ainda aborto, esterilidade, além da queda de produção. A anamnese é importante no diagnóstico da TPB, pois o histórico relacionado com a apresentação clínica da enfermidade constituem pontos importantes para o fechamento do diagnóstico. Diagnóstico laboratorial: O diagnóstico laboratorial é de grande valia para a confirmação e identificação dos agentes da TPB. Esse pode ser direto através da confecção de esfregaços sanguíneos delgados, corados pelo método de Giemsa, onde pode-se observar o agente parasitário. O exame direto pode ser auxiliado pela realização 7

8 do hemograma (KESSLER et al., 1992) onde ter-se-á determinada a concentração de hemoglobina, os níveis protéicos séricos e plasmáticos, o hematócrito e outros parâmetros sanguíneos e bioquímicos. A urinálise também é um procedimento, auxiliar, importante no diagnóstico. Quanto ao diagnóstico indireto, pode-se proceder os imunoensaios como a fixação de complemento, a imunofluorescência indireta, o ELISA indireto, a técnica de aglutinação, a conglutinação e ainda técnicas mais modernas como a reação de polimerase em cadeia e a hibridização in situ. Os exames anatomo-patológicos são importantes no diagnóstico da TPB. Pela necropsia pode-se observar mucosas e serosas hipocoradas ou ictéricas, hepatomegalia, esplenomegalia. nefromegalia. congestão de diversos órgãos como fígado, baço, rins, cérebro e cerebelo; linfonodos aumentados, bile espessa e grumosa, vesícula biliar distendida e bexiga urinária contendo urina escura. Na suspeita de babesiose visceral é importante proceder a confecção de impressões de órgãos, pelo médico veterinário, principalmente, a partir de fragmentos de cérebro e cerebelo, especialmente do hipocampo, onde pode-se encontrar a B. bovis, no interior dos eritrócitos aglutinados ao capilar visceral. CONTROLE O controle da TPB baseia-se na adoção de medidas integradas, tais como: Controle do vetor: Deve-se proceder o controle do carrapato de forma mais adequada para a situação, tendo-se por opções: o manejo dos animais, o sistema de rotação de pastagem, o controle químico (MOREL, 1989), controle estratégico, controle microbiológico e o controle imunológico que se baseia no uso de imunógenos recombinantes para o B. microplus, diminuindo assim a população de carrapatos (DE LA FUENTE, 1995). É importante ressaltar a necessidade dos animais jovens entrarem em contato com o carrapato, a fim de desenvolverem imunidade. A erradicação do carrapato é maléfica quanto a imunidade para os agentes da TPB (MOREL, 1989). Para a anaplasmose deve-se adotar medidas de higienização dos intrumentos cirúrgicos, e o controle dos dípteros hematófagos. Controle dos agentes da TPB: No início do século iniciou-se o desenvolvimento da técnica de premunição dos bovinos aos agentes da TPB, estando esta técnica hoje bem aprimorada e amplamente utilizada com resultados satisfatórios. O uso de vacinas no controle da TPB é uma questão muito discutida. As vacinas inativadas, sejam elas obtidas a partir de animais infectados ou de cultivo celular, garantem uma imunidade temporária e/ou possuem um baixo poder imunogênico, devido às características regionais das cepas dos agentes (ESTRADA PEÑA, 1984). As vacinas vivas, derivadas de sucessivas passagens dos agentes em bezerros esplenectomizados também não garantem imunidade satisfatória, além de levarem consigo o risco da reversão de patogenicidade/variação na virulência; embora sejam a melhor tecnologia disponível. Atualmente, acredita-se que uma vacina ideal seria obtida a partir de proteínas produzidas pelas organelas do complexo apical das babésias, como roptrias e micronemas. Estas proteínas estão associadas ao processo de invasão do agente ao eritrócito, sendo de função vital para a sobrevivência das babésias (PERKINS, 1992). 8

9 TRATAMENTO No tratamento terapêutico e na profilaxia é importante o acompanhamento pelo profissional. O tratamento da TPB depende do diagnóstico específico quanto ao agente. As babésias possuem diferentes níveis de sensibilidade às drogas. A B. bovis é mais resistente aos babesicidas que a B. bigemina. As drogas babesicidas mais encontradas no mercado são os derivados das diamidinas e derivados do imidocarb. A dose terapêutica das diamidinas é de 3,5 mg/kg de peso, em dose única, via intramuscular (IM), esta droga é muito eficiente para a B. bigemina. A dose terapêutica dos derivados do imidocarb é de 1,2 mg/kg de peso, por via subcutânea, esta droga é eficiente tanto para a B. bigemina quanto para a B. bovis. O imidocarb além de possuir longa ação, tem efetividade sobre as rickettsias na dose de 2,4 mg/kg de peso (ARAGON, 1976; ESTRADA PEÑA, 1984). A droga de eleição para o A. marginale é a tetraciclinas, principalmente sob a forma de cloridrato de oxitetraciclina na dose de 2 a 4 mg/kg de peso, via IM, fazendo aplicações diárias até o desaparecimento dos sintomas. Para as axitetraciclinas de longa ação a dose é de 20 mg/kg de peso, via IM, em dose única, podendo repetir esta dose, se necessário, após três dias, em casos severos (KESSLER et al., 1992). Todos estes quimioterápicos apresentam efeitos colaterais sérios, portanto, devem ser usados com precaução (TODOROVIC et al., 1973b; PATARROYO et al., 1982 ). PREMUNIÇÃO PARA A TRISTEZA PARASITÁRIA BOVINA SERGENT et al. (1924) postularam que o termo premunir, de origem latínica, significa præ (= antes) e munire (= mœnia, igual a modo de defesa). Desta forma, premunir nada mais significa do que fortalecer o sistema de defesa do animal contra um mal que possa acontecer e, estando assim preparado, a doença ocorreria numa forma benígna. Esclareciam ainda que premunir significa o ato, citando o seguinte exemplo: imunizar = vacinar e premunição é o ato da vacinação. Concomitantemente a postulação do termo premunir, FONSECA & BRAGA (1924) registraram, no Brasil, estudos detalhados sobre a TPB e seus agentes, enfocando metodologia de controle pela premunição. Várias são as circunstâncias que levam à surtos de TPB. KESSLER et al. (1992) relacionam como mais importantes: Introdução de animais criados em áreas livres de carrapatos em áreas enzoóticas; introdução de animais parasitados por carrapatos em áreas ou rebanhos livres; redução temporária da infestação de carrapatos, devido às condições climáticas desfavoráveis à sua multiplicação (áreas de instabilidade enzoótica) e, redução temporária de infestação de carrapatos por meios artificiais (controle intensivo de carrapato através de banhos carrapaticidas, descanso de pastagens e criação de raças mais resistentes). Além destes, a raça, a idade, a imunidade e o tempo de manifestação da doença são fatores importantes relacionados ao animal que o predispõe ao aparecimento da enfermidade. O controle dos agentes da TPB foi inicialmente realizado, de forma empírica, no final do século XIX, concomitante à descrição da B. bigemina por SMITH & KILBORNE em 1893, no extremo Sul dos EUA. Entretanto, os trabalhos precursores de premunição foram realizados na África do Sul por THEILER (1912), logo após ter descrito o A. marginale em

10 PREMUNIÇÃO A técnica de premunição foi utilizada, desde o início do século, para imunizar bovinos importados de áreas indenes a serem introduzidos em áreas enzoóticas para carrapatos, quando morriam cerca de 90 a 97% dos animais acometidos pela doença (STEPHAN & SQUIBEL, 1929). A premunição é um método utilizado no Brasil, e quando tecnicamente acompanhado, apresenta resultados satisfatórios. Este método consiste em induzir a imunidade coinfecciosa pela inoculação de sangue total, parasitado pelos agentes da TPB, seguido de tratamento com quimioterápico quando se estabelece a doença na fase aguda. Hoje, além da premunição clássica, também se utiliza a indução da imunidade através do uso de vacinas atenuadas contra os hemoparasitos. As vacinas atenuadas por passagem em animais esplenectomizados ou por passagem em outros hospedeiros têm como principal fator desfavorável, o risco de reversão da patogenicidade (virulência), embora estas sejam muito utilizadas (PERKINS, 1992). O insucesso das premunições muitas das vezes estão relacionados com a não obervância de fatores como raça, idade e época do ano que se procede a importação, o que poderá acarretar prejuízos consideráveis (GRAÇA, 1996). Qualquer que seja o método, a imunização contra os patógenos da TPB tem vantagens e desvantagens. MÉTODOS DE PREMUNIÇÃO Vários têm sido os métodos empregados no processo de premunição de animais importados para adaptá-los antes de serem introduzidos em áreas enzoóticas para carrapatos e consequentemente TPB. A premunição segundo SERGENT et al. (1924) é a resistência de um animal ao primeiro ataque da babesiose ou anaplasmose, estabelecendo de certo modo uma simbiose somato-parasitária entre o hospedeiro e o parasita. Em condições naturais de criação a campo esta simbiose será mantida pelas sucessivas reinfestações de carrapatos, havendo, desta forma, um equilíbrio entre a presença constante do parasito e o organismo do hospedeiro. Nas áreas de estabilidade enzoótica, os efeitos da TPB são minimizados pela exposição precoce dos animais ao agente logo após o nascimento, pela primo-infecção, embora essa normalmente assegure apenas a uma imunidade temporária. Entretanto, nas áreas de instabilidade e em bovinos importados de áreas indenes a doença ocorre sob forma aguda causando altos índices de mortalidade (CORRIER & GUZMAN, 1977; LIMA, 1991). Os métodos comumente empregados utilizam a inoculação de sangue parasitado, desfibrinado e resfriado, colhido de animais portadores, seguido de acompanhamento e de tratamento específico quando aparece os sinais clínicos de babesiose e anaplasmose. Contudo, deve-se ter o cuidado de não provocar uma quimioesterilização com o uso excessivo de drogas. Os principais métodos de premunição são: Método natural: Foi o primeiro a ser utilizado e consiste em infestar o animal a premunir com 20 a 50 larvas de carrapato. Este método foi abandonado por apresentar muitos inconvenientes, além de não estabelecer o número de formas infectantes dos hematozoários. 10

11 Métodos artificiais: Inoculação de carrapatos triturados: Consiste num processo empírico de premunição, onde se usa carrapatos coletados em bovinos naturalmente infestados. Estes são lavados em solução de sulfato de cobre e posteriormente em água destilada, após serem lavados, estes carrapatos são triturados em salina e preparado uma solução para ser inoculada nos bovinos a premunir. Esta técnica consistia num tratamento empírico apresentando mais desvantagens do que vantagens, como exemplo a formação de abcessos, no local de inoculação, induzidos pela quitina do artrópode; outra desvantagem é o risco dos hematozoários estarem com virulência exacerbada e a inoculação de outros agentes (DALRYMPLE et al., citado por CORRÊA, 1973). Método de NUTHAL & THEILER: É o método mais utilizado. Consiste na premunição propriamente dita, ou seja, é um processo em que se utiliza sangue coletado de um animal carrapateado, naturalmente portador dos três agentes da TPB. Inocula-se o sangue no animal a ser premunido, estabelecendo desta forma a infecção, a qual é controlada por quimioterápicos, e induz a imunidade coinfecciosa. Com a evolução das investigações sobre a biologia dos agentes da TPB, este processo sofreu modificações. Mesmo assim, desde que usado com acompanhamento técnico apresenta bons resultados (SANTOS, 1950; KUTTLER, 1972; TODOROVIC et al., 1975; BANGEL Jr et al., 1987; LIMA, 1991). Método de LIGINIÉRES: Neste método usa-se o inóculo de A. marginale obtido por sucessivas passagens em ovinos, para atenuação da virulência. Os ovinos, por serem resistentes, ainda são usados como atenuadores do A. marginale com a finalidade da produção de vacinas contra a anaplasmose do bovinos. Este processo foi confirmado por OSORNO & SOLANA, (1975); VIZCAINO et al., (1978) e RISTIC & MONTENEGRO- JAMES, (1988), os quais utilizaram bezerros holstein-friesian para testar a nível de laboratório e a campo a vacina contra anaplasmose. Método de ROSEMBUSH: Os animais a serem premunidos são inicialmente inoculados com Anaplasma a qual determina uma reação mais severa e de difícil tratamento. Quando estiverem recuperados, os animais são então inoculados com Babesia, a qual acarretará uma reação mais branda com melhor resposta ao tratamento. Esta técnica foi recomendada por SANTOS (1950), este autor ressalvou que os melhores resultados da premunição são obtidos em animais jovens e a técnica deve ter acompanhamento técnico permanente. Método de SERGENT: Este era inicialmente a forma clássica de produção de vacinas contra TPB, que consistia em colher sangue de um animal com doença em fase crônica e passar em animal jovem como forma de atenuar a virulência dos hematozoários. Destes bezerros, coletava-se sangue para ser usado na premunição de outros animais. Atualmente, esta técnica foi modificada e a atenuação dos hematozoários é feita por passagens sucessivas em bezerros esplenectomizados (CALLOW & MELLORS, 1966; KUTTLER, 1972; TODOROVIC et al., 1973a; KESSLER et al., 1992). 11

12 VACINAS Visando minimizar os problemas decorrentes dos inóculos utilizados nos métodos de premunição, pesquisadores da Austrália, EUA, Argentina, Uruguai, Colômbia e Brasil, se empenharam na obtenção de um antígeno padrão para imunização contra os agentes da TPB (KESSLER et al., 1992). Os principais tipos de imunógenos são: Vacinas vivas: São inóculos que contém organismos viáveis, purificados e atenuados por passagens em bezerros esplenectomizados ou normais (CALLOW & MELLORS, l966; VILAS NOVAS & VIANA, 1980). Antígenos atenuados por irradiação: Este é um método pouco estudado. BISHOP & ADANS (1974) testaram a infecciosidade e imunogenicidade de B. bovis submetida à várias dosagens de irradiação por cobalto. Observaram que os hemoparasitos desta forma atenuados e usados como vacina foram capazes de proteger bezerros contra a infecção ao serem desafiados com cepas não atenuadas. Amostras purificadas e não atenuadas: Neste processo utiliza-se doses mínimas infectantes dos agentes da TPB para imunizar os animais (TODOROVIC et al., 1975; BANGEL Jr et al., 1987; LIMA, 1991). Amostras não purificadas nem atenuadas: Consiste no método clássico de premunição, onde se utiliza inóculo proveniente de doadores naturalmente infectados. Este processo confere bons resultados quando devidamente acompanhado (SANTOS, 1950; BANGEL Jr. et al., 1987; LIMA, 1991; LOSS et al., 1992). IMUNÓGENOS NÃO VIÁVEIS Em virtude das vacinas contra a TPB conterem agentes íntegros que além da infecção podem veicular outros patógenos e provocarem sensibilização dos eritrócitos, podendo acarretar isoeritrólise neonatal; alguns pesquisadores investigaram a obtenção de uma vacina que induzisse a imunidade estéril, isto é, mesmo sem a presença dos agentes íntegros, o hospedeiro estaria imune. Plasma de animais enfermos e recentemente recuperados: Consiste na transferência de anticorpos para animais a serem premunidos. É uma técnica muito discutida, pois esta não garante imunidade duradoura (CALLOW, 1967; MAHONEY & GOODGER, l972). Vacinas com o emprego da engenharia genética, DNA recombinante: Os estudos sobre a obtenção de vacinas contra os agentes da TPB a partir da engenharia genética tiveram início na década de 80. Entretanto, estas pesquisas têm utilizado principalmente a B. bovis e, apesar dos resultados serem promissores, deve-se considerar que uma boa vacina contra a TPB deverá conter todos os agentes (B. bovis, B. bigemina e A. marginale) (KESSLER et al., 1992). A premunição, como ainda hoje é feita no Brasil, desde que tecnicamente orientada 12

13 e acompanhada tem demonstrado ser eficiente. O que se deve tentar minimizar são fatores como o excesso de medicação quimioterápica nos animais que apresentem a doença na forma aguda, evitando uma quimioesterelização. Este acontecimento acarretaria a necessidade de reinoculações com sangue parasitado, o que possivelmente exporia o animal ao risco de uma sensibilização para grupos sangüíneos, induzindo à isoeritrólise, conforme relato de CARSON et al. (1976). Outros riscos deste método seria a veiculação de doenças infecciosas como brucelose, leucose, tuberculose, diarréia viral bovina, rinotraqueite infecciosa bovina, língua azul, febre aftosa, ehrlichiose, e outras; caso a seleção do doador não seja rigorosa. MAHONEY et al. (1981), define ser uma vacina de boa qualidade aquela que não exponha o animal premunido aos riscos, ainda hoje, existentes e desta forma pudesse ser recomendada na proteção de doenças hemotrópicas dos bovinos. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ARAGON, R. S Bovine babesiosis: A review. Vet. Bull., 46 (12): BABÉS, V Sur l'hemoglobinurie bacterienne du boeuf. C. Hebd. Seances Acad. Sci., 107: BANGEL Jr., J. J.; SCHEFFER, A. L. & DIAS, M. M Premunição de bovinos segura e sem perdas. Arq. Fac.Vet. UFRGS, Porto Alegre, 15/16: 5-9. BISHOP, J. P. & ADANS, L. G Babesia bigemina: Immune response of cattle inoculated with irradiated parasites. Exp. Parasitol., 35: BOERO, J. J Parasitosis animales: Piroplasmosis. Editorial Univ. Buenos Aires, Tomo II. p BRASIL, Ministério da Agricultura, Secretaria Nacional de Defesa Agropecuária-Secretaria de Defesa Sanitária Animal (Brasília, DF) Carrapato, berne e bicheira no Brasil. Brasília, 153p. CALLOW, L. L. & MELLORS, L. T. 1966: A new vaccine for Babesia argentina infection prepared in splenectomised calves. Aust. Vet. J., 42: CALLOW, L. L Sterili immunity, coinfectious immunity and strain differences in Babesia bigemina infections. Parasitology, 57: CARINI, A. O Anaplasma marginale em São Paulo. Rev. Med., São Paulo, 24. CARSON, C. A.; SELLS, D. M. & RISTIC, M Cell-mediated immunity in bovine anaplasmosis and correlation with protection induced by vaccination (A review). Vet. Parasitol., 2: CORRÊA, O. Doenças parasitárias dos animais domésticos. Ed. SULINA, 1973, 348p. CORRIER, D. E. & GUZMAN, S The effect of natural exposure to Anaplasma and Babesia infections on native calves in an endemic are of Colombia. Trop. An. Hlth. Prod., 9: DALGLIESH, R. J.; JORGENSEN, W. K. & DE VOS, A. J Autralian froze vaccines for the control of babesiosis and anaplasmosis in cattle- A review. Trop. An. Hlth. Prod., 22: DE LA FUENTE, J Recombinant vaccines for the control of cattle tick. Elfos Scientiae, La Habana, Cuba, 241p. ESTRADA PEÑA, A Babesiosis: Diagnóstico, tratamiento, inmunización y epizootiologia. Med. Vet., 1 (1): FAJARDO, F. A A piroplasmose bovina no Rio de Janeiro. Rev. Med., 4: FONSECA, A. & BRAGA, A Noções sobre a tristeza parasitária dos bovinos. Off. 13

14 Typog. do Ministério da Agricultura, Rio de Janeiro. 216p. FRIEDHOF, K. T. & SMITH, R. D Transmission of Babesia by ticks. In: RISTIC, M. & KREIER, J. P. Babesiosis. New York, Academic Press. p FRIEDHOF, K. T Morphology and development of Babesia species from domestics animals: A review. In: VII Congresso Brasileiro de Parasitologia, Porto Alegre. 20p. GRAÇA, F. A. S Aspectos clínicos da premunição contra Babesia (Starcovici, 1893) e Anaplasma (Theiler, l910) em bovinos (Bos taurus) da raça fleckvieh, no Município de Aracruz, Estado do Espírito Santo. Tese de Mestrado, UFRRJ, 87P. HILDEBRANDT, P. K The organ and vascular pathology of babesiosis. In: RISTIC, M. & KREIER, J. P. Babesiosis. New York, Academic Press. p KAKOMA, I. & MEHLHORN, H Babesia of domestic animals. In: KREIER, J. P. Parasitic protozoa. Second edition, Vol. 7. Academic Press. p KESSLER, R. H.; SCHENK, M. A. M.; MADRUGA, C. R.; SACCO, A. M. S. & MIQUITA, M Tristeza parasitária bovina. In: CHARLES, T. P. & FURLONG, J. Doenças parasitárias dos bovinos de leite. EMBRAPA-CNPGL, Coronel Pacheco, 134p. KREIER, J. P. & RISTIC, M Anaplasmosis. X. Morphologic characteristics of theparasitepresent in the blood of calves infected with the Oregon strain of Anaplasma marginale. Am. J. Vet. Res., 24: 676. KUTTLER, K. L Cooperetive response to premunization using attenuated Anaplama marginale, virulent Anaplasma marginale and Anaplasma centrale in different age groups. Trop. An. Hlth. Prod., 4, (4): LIMA, J. D Premunição: Uma alternativa para controle da tristeza parasitária. Anais do VII Seminário Brasileiro de Parasitologia Veterinária, São Paulo, Brasil, p LOSS, A. C.; LIMA, J. D. & BRAZ Jr.; C.J Avaliação da resposta humoral para anaplasmose em bovinos submetidos à premunição. Arq. Bras. Med. Vet. Zoot., 44 (5): MAHONEY, D. F. & GOODGER, B. V Babesia argentina: Immunogenicity of plasma from infected animals. Exp. Parasitol., 32:71-85 MAHONEY, D. F. & MIRRE, J. B A note of the transmission of Babesia bovis (Syn. B. argentina) by the one-host tick Boophilus microplus. Res. Vet. Sci., 26: MAHONEY, D. F.; WRIGHT, I. G. & GOODGER, B. V Bovine babesiosis: The immunization of cattle with fractions of erythrocytes infected with Babesia bovis (syn. B. argentina). Vet. Immunol. Immunopathol., 2: MASSARD, C. L.; MASSARD, C. A.; FONSECA, A. H. & LOSS, Z. G Diagnóstico de Anaplasma centrale Theiler, 1911 em bovinos no Brasil. In: V Congresso Brasileiro de Parasitologia. Rio de Janeiro, p MASSARD, C. A. & MASSARD, C. L Ehlichia bovis (Rickettsiales: Rickettsiaceae) em gado de leite no Brasil. Arq. Univ. Fed. Rural Rio de Janeiro, 5(2): MASSARD, C. L. & FREIRE, R. B Etiologia, manifestações e diagnóstico das babesioses bovinas no Brasil. Hora Vet., 23: MASSARD, C. A. & FURLONG, J Controle da tristeza parasitária dos bovinos. In: FURLONG, J. Manejo sanitário, prevenção e controle de parasitoses e mamite em rebanhos de leite. EMBRAPA-CNPGL, Coronel Pacheco-MG, p MASSARD, C. L.; SOARES, C. O.; FONSECA, A. H. & MADRUGA, C. L Tristeza parasitária bovina: Histórico, biologia e modalidades de transmissão de Babesia bovis, B. bigemina e Anaplasma marginale aos bovinos. In: Curso sobre controle de carrapato em bovinos. EMBRAPA-CNPGC, Campo Grande-MS, p MC CALLON, B. R Prevalence and economic aspects of anaplasmosis. In: VI National Anaplasmosis Conferences, Stillwater, Heritage, p.1. 14

15 MC COSKER. P. J The global importance of babesiosis. In: RISTIC, M. & KREIER, J. P. Babesiosis. New York, Academic Press. p MOREL, P. C Tick-borne disease of livestock in Africa. In: CAB International. Manual of Tropical Veterirary Parasitology. Wallingford, UK. p NEITZ, W. O Classification, transmission, and biology of piroplasms of domestics animals. Ann. New York Acad. Sci., 64 (2): OSORNO, M. B. & SOLANA, P. M Study of an attenuated Anaplasma marginale vaccine in Mexico natural challenge of immunity in na Enzootic area. Am. J. Vet. Res., 36(5): PATARROYO, J. H.; RIBEIRO, M. F. & VARGAS, M. I Effect of imidocarb dipropionate in brazilian anaplasmosis and babesiosis. Trop. Anim. Hlth. Prod., 14:234. PERKINS, M. E Rhoptry organelas of apicomplexa parasites. Parasitol. Today, 8: RIEK, R. F The life cicle of Babesia bigemina (Smith & Kilborne, 1893) in the tick vector Boophilus microplus (Canestrini). Aust. J. Agic. Res., 15: RIEK, R. F The life cicle of Babesia argentina (Lignières, 1903) in the tick vector Boophilus microplus (Canestrini). Aust. J. Agic. Res., 17: RIBEIRO, M. F. B Morfologia, evolução e reprodução do Anaplasma marginale (Theiler, 1910) em células epiteliais intestinais de teleóginas de Boophilus microplus (Canestrini, 1887). Estudo ao microscópio óptico e eletrônico. Tese de Doutorado, UFMG, 134p. RISTIC, M. & MONTENEGRO-JAMES, S Immunization againt Babesia. In: RISTIC, M.. (ed.). Babesiosis of domestical animals and man. Boca Raton. CRC Press, 163p. SANTOS, J. A Normas práticas para premunição de bovinos contra a Tristeza Parasitária (Piro e Anaplasmose). Instituto de Biologia Animal, 10p. SERGENT, E.; PARROT, L. & DONATIEN, A. 1924: Une question de terminologie: Immunizer et preminir. Bul. Soc. Pathol. Exot., 17: SMITH, T. H. & KILBORNE, F. L Investigation into the nature causation and prevision of Texas or southern cattle fever. U. S. Dep. Agric. Bull. Anim. Ind., 1: STEPHAN, O. & SQUIBEL, C. A Método de premunição contra a Tristeza, usado no Posto Zootécnico de São Paulo. Arq. Inst. Biológico, 2: TAVERN, J. & BRADLEY, J. E Imunidade aos protozoários e vermes. In: ROITT, I.; BROSTOFF, J. & MALE, D. Imunologia. Editora Manole, São Paulo, p THEILER, A Anaplasma marginale (gen. and spec. nov.): A protozoon of cattle; a cause of the called gall-sickness. Transv. Med. J., 5: THEILER, A Futher investigations into anaplasmosis of south african cattle. In: First Report of the Director of Veterinary Report. South African Dep. Agric., 1: THEILER, A Gall-sickness of imported cattle and the protective inoculation against disease. Agricul. J. Union South Africa, 3: TODOROVIC, R. A.; GONZALEZ, E. F. & ADANS, L. G. 1973a. Bovine babesiosis: Sterile immunity to Babesia bigemina and Babesia argentina infection. Trop. An. Hlth. Prod., 5: TODOROVIC, R. A.; GONZALEZ, E, F. & ADANS, L. G. 1973b: Chemoprophylaxis (imidocarb) against Babesia bigemina and Babesia argentina infections. Am. J. Vet. Res., 34: TODOROVIC, R. A.; LOPEZ, A.G. & GONZALEZ, E. F Bovine babesiosis and anaplasmosis: Control by premunition and chemoprophylaxis. Exp. Parasitol., 37:

16 VILAS NOVAS, J. C. & VIANA, F. C Avaliação a campo da vacina atenuada de Anaplasma marginale na imunização de bezerros. Arq. Esc. Vet. UFMG, 32(1): VIZCAINO, O.; CARSON, C. A.; LEE, A. J. & RISTIC, M Efficacy of attenuated Anaplasma marginale vaccine under laboratory and field conditions in Colombia. Am. J. Vet. Res., 39(2):