COCOS GRAM-POSITIVOS. Alfa Hemolítico. Beta Hemolítico. Gama Hemolítico

Tamanho: px

Começar a partir da página:

Download "COCOS GRAM-POSITIVOS. Alfa Hemolítico. Beta Hemolítico. Gama Hemolítico"

Maria Júlia Conceição Quintanilha
8 Há anos
Visualizações:

1 COCOS GRAM-POSITIVOS Catalase Positiva Catalase Negativa STAPHYLOCOCCUS STREPTOCOCCUS Coagulase (+) S. aureus Coagulase (-) S. epidermidis S. saprophyticus Alfa Hemolítico S. pneumoniae sensível à Optoquina. S. viridans resistente à Optoquina. Coco agrupado em forma de cacho. Beta hemólise em ágar sangue. Sensível a Novobiocina Resistente a Novobiocina. Beta Hemolítico S. pyogenes sensível à Bacitracina / PYR positivo / Resistente a Co-Trimoxazol / Grupo A de Lancefiel. S. agalactie Camp Test Positivo / Grupo B de Lancefield. Não A e não B sensível ao Co-Trimoxazol. Gama Hemolítico Enterococcus Bile esculina positiva / NaCl 6,5 positivo. Também pode ser alta e beta hemolítico. Não Enterococcus (bovis) bile esculina positiva / NaCl 6,5 negativa.

Beta Hemolítico S. pyogenes sensível à Bacitracina / PYR positivo / Resistente a Co-Trimoxazol / Grupo A de Lancefiel. S. agalactie Camp Test Positivo / Grupo B de Lancefield.

2 Fermentação da Glicose Oxidase negativa Reduz nitrato a nitrito. Diferenciação exige testes bioquímicos olhar tabela. ENTEROBACTÉRIAS BACILOS GRAM NEGATIVOS NÃO-FERMENTADORES Crescem em MacConkey. Podem ser oxidase (+) ou (-). Costumam ser encontrados em ambiente hospitalar resistência. E. coli citrato (-) / Indol (+). Pseudomonas aeruginosas bastonentes móveis, aeróbios obrigatórios, oxidase positiva. LACTOSE POSITIVA Klebsiella Burkholderia cepacia Enterobacter Testes Bioquímicos: Acinobacter cocobacilo, aeróbio, oxidase negativa. Citrobacter Citrato Indol Stenotrophomonas maltophila DNAse e lisina positivas, oxidase negativa. LACTOSE NEGATIVA Proteus sp. Providencia sp. Salmonella sp. H 2 S (+) Shigella sp. H 2 S (-) H2S Fermentação de Carboidratos Produção de Gás Bordetella bronchiseptica Moraxella catarrhalis cocos, oxidase postiva, catalse positiva, colônias secas, frágeis e bem características. Não faz antibiograma só beta lactamase. Serratia sp. Teste Coagulase realizada com reagente contendo plasma de coelho quando positiva há formação de pequenos agregados. Teste Catalase realizada com peróxido de hidrogênio quando positiva há efervescência (formação de bolhas). Teste Oxidase

Pseudomonas aeruginosas bastonentes móveis, aeróbios obrigatórios, oxidase positiva.

3 MEIOS DE CULTURA ÁGAR MACCONKEY É um meio seletivo para Gram Negativos Meio diferencial para lactose: Lactose positiva: colônias vermelho tijolo a rosa. Lactose negativa: colônias incolores ÁGAR CLED Não é seletivo crescem Gram (-), Gram (+) e Leveduras. Meio diferencial para Lactose: Lactose Positiva: meio muda de cor amarelo. Lactose Negativa: fundo pode ficar azul e as colônias incolores. Meio não seletivo. ÁGAR SANGUE Diferencial para alfa, beta e gama hemólise dos Streptococcus. ÁGAR CHOCOLATE Possui fator X e fator V, por isso, possibilita o crescimento de bactérias fastidiosas, como Haemophilus.

Meio diferencial para Lactose: Lactose Positiva: meio muda de cor amarelo. Lactose Negativa: fundo pode ficar azul e as colônias incolores.

4 TESTES BIOQUÍMICOS PARA IDENTIFICAÇÃO DE ENTEROBACTÉRIAS: TUBO 1 Meio de EPM LTD (desaminação do L-triptofano), Glicose, Gás, H 2 S e Uréia. TUBO 2 Meio de Lisina Descarboxilação da L-lisina Meio sólido na cor verde tampa branca. Inoculação: picada central até o fundo e semear na superfície deixar tampa frouxa. Triptofano: prova positiva quando a superfície fica verde escura ou acastanhada. Leitura da Glicose: observação de coloração amarela na base do tubo. Produção de gás: formação de bolhas ou rachaduras. Hidrólise de Uréia: prova positiva quando há coloração azul esverdeada fraca na base. Produção de H 2 S: aparecimento de cor negra na base. Meio caldo na cor púrpura tampa branca. Inoculação: dissolução fechar bem a tampa. Lisina: cor amarela indica reação negativa qualquer outra cor indica reação positiva. TUBO 3 Meio de MIO Motilidade, descarboxilação da Ornitina e produção de Indol TUBO 4 Meio de Citrato Utilização de Citrato como única fonte de Carbono. Meio semi-sólido na cor púrpura tampa vermelha. Inoculação: picada central única deixar a tampa frouxa. Motilidade: turvação do meio crescimento apenas na picada é considerado prova negativa. Ornitina: cor amarela é considerada prova negativa qualquer outra cor é prova positiva. Para o teste de Indol é preciso adicionar três gotas do Reativo de Kovacs após a incubação e leitura da Ornitina. Indol: positivo se houver formação de um anel de cor rosa / vermelha na superfície. Meio sólido na cor verde tampa preta. Inoculação: semear na superfície / inóculo leve deixar tampa frouxa. Citrato: prova positiva quando há aparecimento de coloração azul na superfície. No caso de prova negativa o meio permanece com a cor original. TUBO 5 Meio de Rhamnose Fermentação de Rhamnose Meio caldo na cor verde tampa branca. Inoculação: dissolução fechar bem a tampa. Rhamnose: prova positiva quando o meio ficar amarelo. No caso de prova negativa o meio permanece com a cor original.

$Hidrólise de Uréia: prova positiva quando há coloração azul esverdeada fraca na base. Produção de H 2 S: aparecimento de cor negra na base. Meio caldo na cor púrpura tampa branca.$

5 Agar TSI Agar Ferro Lisina Agar Citrato de Simmons Ágar Uréia (Chirstensen) Meio MIO Caldo MR-VP Caldo Fermelho Fenol Ramnose

Documentos relacionados

Módulo - Bacteriologia. Condições essenciais para o crescimento e a identificação Bacteriana

Módulo - Bacteriologia. Condições essenciais para o crescimento e a identificação Bacteriana Módulo - Bacteriologia Condições essenciais para o crescimento e a identificação Bacteriana Estruturas Celulares Essenciais x Facultativas Crescimento bacteriano O crescimento é um somatório dos processos