PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. SK testes para utilização no Autostainer Link 48. Finalidade Para utilização em diagnóstico in vitro.

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1 PD-L1 IHC 28-8 pharmdx SK testes para utilização no Autostainer Link 48 Finalidade Para utilização em diagnóstico in vitro. O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx é um ensaio de imunohistoquímica qualitativa que utiliza o anticorpo Monoclonal Rabbit Anti-PD-L1, Clone 28-8, para a deteção da proteína PD-L1 em tecidos de melanoma e cancro do pulmão de células não escamosas e não pequenas (NSCLC), fixados em formol e impregnados em parafina (FFPE) através do sistema de visualização EnVision FLEX no Autostainer Link 48. A expressão da proteína PD-L1 é definida como a percentagem de células tumorais que apresentam coloração da membrana positiva em qualquer intensidade. A expressão da PD-L1, conforme detetada pelo PD-L1 IHC 28-8 pharmdx no NSCLC não escamoso, pode estar associada a uma maior sobrevivência resultante do OPDIVO (nivolumab). A expressão da PD-1, conforme detetada pelo PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, no melanoma, pode ser utilizada como um auxiliar na avaliação de doentes para quem o tratamento com a combinação de OPDIVO (nivolumab) e YERVOY (ipilimumab) esteja a ser considerado. Resumo e explicação A ligação dos ligandos da PD-1, PD-L1 e PD-L2 ao recetor da PD-1 encontrado nas células T inibe a proliferação de células T e a produção de citoquina. A regulação superior dos ligandos da PD-1 ocorre em alguns tumores e a sinalização através desta via pode contribuir para a inibição da vigilância a células T imunes ativas dos tumores (1). O OPDIVO (nivolumab) é um anticorpo monoclonal de imunoglobulina humana G4 (IgG4) que se liga ao recetor da PD-1 e bloqueia a interação deste com a PD-L1 e a PD-L2, promovendo a inibição mediada pela via da PD1 da resposta imune, incluindo a resposta imune antitumoral (2). Em modelos tumorais de ratinhos singeneicos, o bloqueio da atividade da PD-1 resultou num menor crescimento do tumor (3). As vantagens clínicas do OPDIVO e a utilidade clínica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx têm sido investigadas no NSCLC e no melanoma. NSCLC não escamoso: A deteção de células tumorais com expressão da PD-L1 numa amostra de um doente com cancro do pulmão de células não escamosas e não pequenas pode indicar uma vantagem em termos de maior sobrevivência para o doente com o tratamento com OPDIVO (nivolumab). As amostras de doentes em estudos clínicos do OPDIVO patrocinados pela Bristol-Myers Squibb foram testadas utilizando o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. Os estudos clínicos CA investigaram a validade clínica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx para a avaliação do estado da PDL1 em doentes com NSCLC não escamoso tratados com o OPDIVO (5,11). Melanoma: O antigénio 4 associado aos linfócitos T citotóxicos (CTLA-4) é um regulador negativo da atividade das células T. YERVOY (ipilimumab) é um anticorpo monoclonal que se liga ao CTLA-4 e bloqueia a interação do CTLA-4 com os seus ligandos, CD80/CD86. O bloqueio do CTLA-4 tem demonstrado aumentar a ativação e proliferação de células T, o que contribui para um aumento geral da reação imune antitumoral (4). A PD-1 e o CTLA-4 inibem a imunidade antitumoral através de mecanismos complementares e não redundantes. A monoterapia com OPDIVO e a combinação de OPDIVO e YERVOY demonstraram uma melhoria significativamente maior da sobrevivência sem progressão em relação ao YERVOY de forma isolada em doentes com melanoma avançado que não tinham anteriormente recebido tratamento (8-10). As amostras de tecido de doentes com tumores de melanoma tratados com OPDIVO em estudos clínicos patrocinados pela Bristol-Myers Squibb foram testadas utilizando o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. O estudo clínico CA investigou a validade clínica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx para efeitos de avaliação da expressão da PDL1 em doentes com melanoma tratados com OPDIVO, OPDIVO em combinação com YERVOY e YERVOY de forma isolada. OPDIVO e YERVOY são marcas comerciais registadas da Bristol-Myers Squibb. Princípio do procedimento O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx contém os reagentes otimizados e o protocolo necessário para concluir um procedimento de coloração por IHC de amostras FFPE utilizando o Autostainer Link 48 e o PT Link Pre-treatment Module (6). Após a incubação com o anticorpo monoclonal primário contra a PD-L1 ou com o Negative Control Reagent (NCR), as amostras são incubadas com um anticorpo de ligação específico às espécies hospedeiras do anticorpo primário, sendo depois incubadas com um reagente de visualização pronto a usar, que consiste em moléculas do anticorpo secundário e em moléculas de peroxidase de rábano associadas a uma estrutura base de polímero dextrano. A conversão enzimática do cromogénio adicionado posteriormente resulta na precipitação de um produto de reação visível no local do antigénio. A cor da reação cromogénica é modificada por um reagente de intensificação do cromogénio. Em seguida, é possível aplicar um contraste e uma lamela na amostra. Os resultados são interpretados utilizando um microscópio ótico. São fornecidas lâminas de controlo contendo duas linhas celulares humanas, fixadas em formol e impregnadas em parafina, para validar os processos de coloração. Materiais fornecidos PD-L1 IHC 28-8 pharmdx (Referência SK005) Os materiais enumerados em baixo são suficientes para 50 testes (50 lâminas incubadas com o anticorpo primário da proteína PD-L1 e 50 lâminas incubadas com o reagente de controlo negativo correspondente; 100 lâminas de teste no total). O anticorpo primário adicional da PD-L1 é fornecido no kit para corar 15 linhas celulares das lâminas de controlo. O número de testes tem por base a utilização de 2 x 150 µl de cada reagente por lâmina, exceto para DAB+ e para a solução Target Retrieval Solution. ( ) P03914PT_02/SK / p. 1/18

2 O kit fornece materiais suficientes para, no máximo, 15 processos de coloração individuais. Quantidade Descrição 1 x 34,5 ml Peroxidase-Blocking Reagent PEROXIDASE-BLOCKING REAGENT Solução tamponada que contém peróxido de hidrogénio, detergente e 0,015 mol/l de azida de sódio. 1 x 19,5 ml Anticorpo primário: Monoclonal Rabbit Anti-PD-L1, Clone 28-8 MONOCLONAL RABBIT ANTI-PD-L1 CLONE 28-8 Anticorpo monoclonal de coelho anti PD-L1 numa solução tamponada que contém proteína estabilizadora e 0,015 mol/l de azida de sódio. 1 x 15 ml Negative Control Reagent* NEGATIVE CONTROL REAGENT Anticorpo IgG monoclonal de coelho de controlo numa solução tamponada que contém proteína estabilizadora e 0,015 mol/l de azida de sódio. *IgG de controlo Monoclonal Rabbit vendido ao abrigo da licença da Cell Signaling Technology. 1 x 34,5 ml LINKER, Anti-Rabbit LINKER, ANTI-RABBIT Anticorpo secundário de ratinho contra imunoglobulinas de coelho numa solução tamponada que contém proteína estabilizadora e 0,015 mol/l de azida de sódio. 1 x 34,5 ml Visualization Reagent-HRP VISUALIZATION REAGENT-HRP Dextrano associado a moléculas de peroxidase e moléculas de anticorpo secundário de caprino contra imunoglobulinas de coelho e ratinho numa solução tamponada, que contém proteína estabilizadora e um agente antimicrobiano. 15 x 7,2 ml DAB+ Substrate Buffer DAB+ SUBSTRATE BUFFER Solução tamponada que contém peróxido de hidrogénio e um agente antimicrobiano. 1 x 5 ml DAB+ Chromogen DAB+ CHROMOGEN 3,3'-diaminobenzidina tetrahidrocloreto num solvente orgânico. 1 x 34,5 ml DAB Enhancer DAB ENHANCER Sulfato cúprico em água. 6 x 30 ml EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph (50x) EnVision FLEX TARGET RETRIEVAL SOLUTION LOW ph (50X) Solução tamponada, ph 6,1, que contém detergente e um agente antimicrobiano. 15 lâminas PD-L1 IHC 28-8 pharmdx Control Slides CONTROL SLIDES Cada lâmina contém cortes de duas linhas celulares aglomeradas, fixadas em formol e impregnadas em parafina: NCI-H226** com expressão da proteína PD-L1 positiva e MCF-7 com expressão da proteína PD-L1 negativa. PD-L1, SK005 pharmdx XXXXX MCF-7: negativo à PD-L1 NCI-H226: positivo à PD-L1 **É reconhecido o contributo do Dr. AF Gazdar e do Dr. JD Minna nos Institutos Nacionais de Saúde (NIH) para o desenvolvimento da NCI-H226 (número ATCC: CRL-5826 ) (7). ( ) P03914PT_02/SK / p. 2/18

3 Nota: Todos os reagentes incluídos são especialmente formulados para a utilização com este kit. Para que o teste tenha o desempenho especificado, não podem ser feitas substituições, à exceção da EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph, 50x (Referência K8005). O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi concebido para ser usado com o Autostainer Link 48. Consulte os manuais de utilizador do Autostainer Link 48 e do PT Link para obter mais informação. Materiais necessários, mas não fornecidos PT Link Pre-treatment Module (Referências PT100/PT101) Autostainer Link 48 (Referência AS480) EnVision FLEX Wash Buffer, 20x (Referência K8007) EnVision FLEX Hematoxylin (Link) (Referência K8008) Água destilada ou desionizada (água de qualidade reagente) Cronómetro Tecidos positivos e negativos para utilizar como controlos do processo (consultar a secção Controlo de qualidade e a tabela 1) Lâminas de microscópio: Lâminas de microscópio Dako FLEX IHC (Referência K8020) ou lâminas Fisherbrand Superfrost Plus carregadas Lamelas Meio de montagem permanente e reagentes acessórios necessários para a montagem de lamelas Microscópio ótico (ampliação de objetiva de 4x-40x) Precauções 1. Para utilização em diagnóstico in vitro. 2. Para utilizadores profissionais. 3. Este produto contém azida de sódio (NaN3), uma substância química altamente tóxica na forma pura. Em situações de concentrações do produto, embora não sendo classificada como perigosa, a NaN3 pode reagir com as canalizações de chumbo e de cobre, formando acumulações de azidas metálicas altamente explosivas. Ao eliminar o produto, adicionar água abundante para evitar a acumulação de azida metálica na canalização (12). 4. O Primary Antibody, o Negative Control Reagent, o Linker e o Visualization Reagent contêm material de origem animal. 5. As amostras, antes e depois da fixação, assim como todos os materiais expostos às amostras, deverão ser manuseados como sendo potencialmente infeciosos e eliminados com as precauções adequadas (13). 6. Os tempos e as temperaturas de incubação ou métodos diferentes dos especificados podem originar resultados erróneos. 7. Os reagentes apresentam uma diluição ideal. A diluição subsequente pode originar a perda de coloração do antigénio. 8. Caso sejam expostos a níveis de luz excessivos, o Visualization Reagent, o Liquid DAB+ Chromogen e a solução DAB+ Substrate- Chromogen preparada podem ser afetados de forma adversa. Não conservar os componentes do sistema nem efetuar a coloração sob luz intensa como, por exemplo, luz solar direta. 9. Os resíduos de parafina podem dar origem a resultados falsos negativos. 10. Utilizar volumes de reagentes diferentes dos recomendados pode resultar na perda da imunorreatividade visível da PD-L Cortes de tecido de grandes dimensões presentes em 2/3 da lâmina podem necessitar de 3 x 150 µl de reagente. 12. Geralmente, pessoas com idade inferior a 18 anos não estão autorizadas a trabalhar com este produto. Os utilizadores devem ser cuidadosamente instruídos sobre os procedimentos de trabalho adequado, as propriedades perigosas do produto e as instruções de segurança necessárias. Consultar a Ficha de segurança (FDS) para obter informações adicionais. 13. Usar equipamento de proteção pessoal adequado para evitar o contacto com a pele e os olhos. 14. A solução não utilizada deverá ser eliminada em conformidade com as regulamentações locais, regionais, nacionais e internacionais. 15. A ficha de dados de segurança encontra-se disponível para utilizadores profissionais mediante pedido. Perigo DAB+ Chromogen: Bifenil-3,3,4,4 -tetrailtetraamónio tetracloreto a 1-5% H350 Pode provocar cancro. H341 Suspeito de provocar anomalias genéticas. P201 Pedir instruções específicas antes da utilização. P202 Não manuseie o produto antes de ter lido e percebido todas as precauções de segurança. P280 Usar luvas de proteção. Usar proteção ocular ou facial. Usar vestuário de proteção. P308 + P313 EM CASO DE exposição ou suspeita de exposição: Procurar assistência médica. P405 Armazenar em local fechado à chave. P501 Eliminar o conteúdo/recipiente em conformidade com as regulamentações locais, regionais, nacionais e internacionais. Aviso EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph (50x): 1-5% de ácido cítrico H319 Provoca irritação ocular grave. H411 Tóxico para os organismos aquáticos com efeitos duradouros. P280 Usar proteção ocular ou facial. P273 Evitar a libertação para o ambiente. P264 Lavar cuidadosamente as mãos após manuseamento. P305 + P351 + P338 SE ENTRAR EM CONTACTO COM OS OLHOS: Enxaguar cuidadosamente com água durante vários minutos. Se usar lentes de contacto, retire-as, se tal lhe for possível. Continue a enxaguar. P337 + P313 Caso a irritação ocular persista: Procurar assistência médica. P501 Eliminar o conteúdo/recipiente em conformidade com as regulamentações locais, regionais, nacionais e internacionais. ( ) P03914PT_02/SK / p. 3/18

4 Conservação Conservar todos os componentes do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, incluindo as lâminas de controlo, no recipiente original e num local escuro a 2-8 C, quando não estiverem a ser utilizados no Au tostainer Link 48. Não utilizar o kit após o fim da data de validade impressa no exterior da embalagem. Se os reagentes forem conservados sob outras condições que não as especificadas no folheto informativo, estas deverão ser validadas pelo utilizador. Não existem sinais óbvios que indiquem a instabilidade deste produto e, por isso, devem processar-se controlos positivos e negativos em simultâneo com as amostras do doente. Preparação das amostras As amostras devem ser manuseadas de forma a preservar os tecidos para a coloração IHC. Devem ser utilizados para todas as amostras métodos padrão de processamento de tecidos. Cortes impregnados em parafina Os tecidos fixados em formol e impregnados em parafina são adequados para utilização. As condições recomendadas de manuseamento e processamento são: <30 minutos de tempo de isquemia antes da imersão num agente de fixação e horas de tempo de fixação em 10% de formol neutro tamponado. Agentes de fixação alternativos não foram validados e podem originar resultados erróneos. As amostras devem ser bloqueadas numa espessura de 3 mm ou 4 mm, fixadas em 10% de formol neutro tamponado e desidratadas e limpas numa série de álcoois e xilol, seguidas por uma infiltração com parafina derretida. A temperatura da parafina não deve exceder os 60 C. As amostras de tecido devem ser cortadas em secções de 4-5 µm. Após o seccionamento, os tecidos devem ser montados em lâminas carregadas Fisherbrand Superfrost Plus ou em lâminas de microscópio Dako FLEX IHC (Referência K8020) e, em seguida, colocadas num forno a 58 ± 2 C durante 1 hora. Para preservar a antigenicidade, os cortes de tecido, depois de montados nas lâminas, devem ser conservados em local escuro a 2-8 C ou a uma tempe ratura ambiente até 25 C e devem ser corados num p razo de 4 meses após o seccionamento. As condições de conservação e o manuseamento das lâminas não devem exceder os 25 C em qualquer momento posterior à montagem para garantir a integridade e a antigenicidade do tecido. A utilização do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx em tecidos descalcificados não foi validada e não é recomendada. Preparação dos reagentes Antes da coloração devem ser preparados os seguintes reagentes: EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph (50x) Prepare uma quantidade suficiente de 1x Target Retrieval Solution, Low ph, diluindo a Target Retrieval Solution, Low ph (50x) 1:50 com água de qualidade reagente; o ph da 1x Target Retrieval Solution tem de ser 6,1 ± 0,2. Um frasco de 30 ml de Target Retrieval Solution, Low ph (50x), com uma diluição de 1:50, resultará em 1,5 L de 1x reagente, suficiente para encher um depósito do PT Link para tratar até 24 lâminas por utilização. Elimine 1x Target Retrieval Solution após três utilizações e, no máximo, 5 dias após a diluição. Se for necessária mais EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph (50x), está disponível com a Referência K8005. EnVision FLEX Wash Buffer (20x) Prepare uma quantidade suficiente de tampão de lavagem, diluindo o tampão de lavagem (20x) 1:20 através da utilização de água de qualidade reagente para os passos de lavagem. Conservar a solução 1x não utilizada a 2-8 ºC durante não mais de um mês. Eliminar o tampão, caso este fique turvo. Consultar mais informações no Manual de Utilizador do seu Autostainer Link 48. O EnVision FLEX Wash Buffer (20x) está disponível com a Referência K8007. DAB+ Substrate-Chromogen Solution Antes de ser utilizada, esta solução deve ser completamente misturada. O desenvolvimento de precipitado na solução não afeta a qualidade da coloração. Para preparar a DAB+ Substrate-Chromogen Solution, adicionar 1 gota de Liquid DAB+ Chromogen por ml de DAB+ Substrate Buffer e misturar. O substrato-cromogénio preparado é estável durante 5 dias se conservado no escuro a 2-8 C. Notas importantes: Se utilizar um frasco inteiro de DAB+ Substrate Buffer, adicionar 9 gotas de DAB+ Chromogen. Apesar de a etiqueta indicar 7,2 ml, trata-se do volume utilizável e não tem em conta o "volume morto" do frasco. A cor do Liquid DAB+ Chromogen no frasco pode variar de incolor a castanho-lavanda. Tal não afetará o desempenho deste produto. Diluir de acordo com as orientações acima fornecidas. A adição de Liquid DAB+ Chromogen em excesso ao DAB+ Substrate Buffer resultará na deterioração do sinal positivo. Procedimento de coloração no Autostainer Link 48 Notas do procedimento Antes da utilização, o utilizador deve ler estas instruções com cuidado e familiarizar-se com todos os componentes e instrumentação (consultar a secção Precauções). Antes da imunocoloração, todos os reagentes devem ser equilibrados à temperatura ambiente (20-25 C). Do mesmo modo, todas as incubações devem ser realizadas à temperatura ambiente. Durante o procedimento de coloração, não permitir a secagem dos cortes de tecido. Os cortes de tecido secos poderão apresentar um aumento da coloração não específica. ( ) P03914PT_02/SK / p. 4/18

5 Todos os passos necessários e os tempos de incubação para a coloração são pré-programados no software Dako Link. Consultar os Manuais de Utilizador do Autostainer Link 48 e do PT Link para obter informações sobre os protocolos de programação e colocação das lâminas e dos reagentes. Nota: Os reagentes e instruções fornecidos com este sistema foram concebidos para se obter um desempenho ótimo quando utilizados com os reagentes e materiais recomendados. A diluição subsequente dos reagentes ou a alteração dos tempos ou temperaturas de incubação podem originar resultados erróneos ou discordantes. Protocolo de coloração Selecione o protocolo de coloração para o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx a partir das opções do menu pendente do DakoLink. Todos os passos necessários e os tempos de incubação para a coloração estão pré-programados no DakoLink. Se os protocolos adequados para o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx não estiverem presentes no servidor, contacte o seu representante local do serviço técnico. Passo 1: Procedimento de desparafinação, reidratação e recuperação do alvo (3 em 1) Procedimento recomendado: Para informações detalhadas, consultar o manual do utilizador do PT Link. Definir Preheat (Pré-aquecimento) e Cool (Frio) do PT Link (Referências PT100/PT101) para 65 C. Defin ir Heat (Aquecimento) para 97 C durante 20 minutos. Encher os depósitos do PT Link com 1,5 L por depósito de solução de trabalho Target Retrieval Solution, Low ph, 1x para cobrir os cortes de tecido. Pré-aquecer a Target Retrieval Solution até 65 C. Mergulhar os suportes do Autostainer que contenham cortes de tecido FFPE montados na Target Retrieval Solution, Low ph, (1x solução de trabalho) pré-aquecida no depósito do PT Link. Incubar durante 20 minutos a 97 C. Quando a incubação de recuperação do alvo estiver concluída e a temperatura tiver arrefecido até 65 C, retirar todos os suportes de lâminas Autostainer com as respetivas lâminas do depósito do PT Link e colocar de imediato o suporte do Autostainer com as lâminas num depósito (ex., PT Link Rinse Station, Referência PT109) que contenha o tampão de lavagem (Referência K8007) diluído à temperatura ambiente. Deixar as lâminas no tampão de lavagem diluído e à temperatura ambiente durante 5 minutos. Passo 2: Procedimento de coloração Após o procedimento de desparafinação, reidratação e recuperação do alvo (3 em 1), os suportes do Autostainer com as lâminas são colocados no Autostainer Link 48. Certificar-se de que as lâminas permanecem humedecidas com tampão durante a colocação no aparelho e antes de iniciar o processo. O instrumento realiza o procedimento de coloração aplicando o reagente apropriado, monitorizando o tempo de incubação e lavando as lâminas entre a colocação dos reagentes. Os tempos do reagente são pré-programados no software Dako Link. Passo 3: Contraste O contraste deve ser aplicado às lâminas durante 7 minutos com EnVision FLEX Hematoxylin (Link) (Referência K8008). O tempo de incubação da hematoxilina está pré-programado no protocolo. Passo 4: Montagem É necessário um meio de montagem permanente não aquoso. Nota: Ao longo do tempo, poderá ocorrer algum esbatimento das lâminas coradas mediante diversos fatores, incluindo, entre outros, aplicação de contraste, materiais e métodos de montagem e condições de conservação das lâminas. Para minimizar o desvanecimento, armazenar as lamelas num local escuro e à temperatura ambiente (20-25 C). Controlo de qualidade O controlo de qualidade dos reagentes do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi realizado por intermédio de imuno-histoquímica, utilizando os procedimentos de recuperação do alvo e coloração definidos anteriormente. Quaisquer desvios dos procedimentos recomendados para a fixação de tecidos, processamento e impregnação no laboratório do utilizador podem produzir uma variabilidade significativa nos resultados. Em cada processo de coloração, devem ser incluídos controlos de qualidade. Estes controlos de qualidade são especificados na tabela 1 e incluem: uma amostra de tecido do doente corada com H&E; tecidos de controlo positivo e negativo fornecidos pelo laboratório; e uma lâmina de controlo (15) fornecida pela Dako. Nos Estados Unidos, consultar as diretrizes de controlo de qualidade do College of American Pathologists (CAP) Certification Program for Immunohistochemistry, CLSI Quality Assurance for Immunocytochemistry, Approved Guideline (14) para obter mais informação. Verificação do ensaio Antes da utilização inicial de um sistema de coloração num procedimento de diagnóstico, o utilizador deve verificar o desempenho do ensaio, testando-o numa série de tecidos fornecidos pelo laboratório com características de desempenho IHC conhecidas, representando tecidos positivos e negativos conhecidos. Consultar os procedimentos de controlo de qualidade indicados previamente nesta secção do folheto informativo do produto. Estes procedimentos de controlo de qualidade devem ser repetidos para cada novo kit ou sempre que houver alterações nos parâmetros do ensaio. As opções de resolução de problemas para potenciais problemas, as suas causas e ações de correção sugeridas são indicadas na tabela 12. Interpretação da coloração - NSCLC não escamoso e melanoma A avaliação da lâmina deve ser efetuada por um patologista, utilizando um microscópio ótico. Para a avaliação da coloração e classificação imunohistoquímica da PD-L1, pode ser utilizada uma ampliação de objetiva de 4x para a avaliação inicial de toda a amostra, seguida por objetivas de 10-20x para a classificação (pode ser utilizada uma de 40x para confirmação, se necessário). A coloração da PD-L1 é indicada com um produto de reação castanho (3,3 -diaminobenzidina, DAB). ( ) P03914PT_02/SK / p. 5/18

6 A coloração positiva para PD-L1 é definida como uma coloração da membrana de plasma circunferencial completa e/ou linear parcial de células tumorais em qualquer intensidade. É necessário avaliar toda a amostra. Todas as células tumorais viáveis em toda a lâmina do doente corada com PD-L1 devem ser avaliadas e incluídas na avaliação dos resultados da PD-L1. Pelo menos 100 células tumorais viáveis devem estar presentes na lâmina do doente corada com PD-L1 para determinar a percentagem de células coradas. A coloração citoplasmática, caso esteja presente, não é considerada para efeitos de classificação. Células não malignas e células imunes (como por ex., linfócitos infiltrantes ou macrófagos) podem também ser coradas com a PD-L1; no entanto, estas não devem ser incluídas na classificação para a determinação da positividade da PD-L1. NOTA: Ao interpretar as amostras de melanoma do doente, pode estar presente uma pigmentação castanha de melanina. A melanina deve ser excluída ao classificar a coloração da membrana plasmática; a comparação com uma lâmina corada sequencial com NCR pode ser útil para a identificação e exclusão do conteúdo de melanina. Se a melanina com níveis altamente elevados impedir a classificação da coloração da membrana plasmática de células tumorais, a amostra pode ser excluída da interpretação e considerada indeterminada. Em cada processo de coloração, as lâminas devem ser examinadas na ordem apresentada na tabela 1 para determinar a validade do processo de coloração e permitir a avaliação da coloração da amostra de tecido. Para maior orientação, consulte o manual de interpretação do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx para melanoma ou cancro do pulmão de células não escamosas e não pequenas. Tabela 1: Ordem recomendada de avaliação das lâminas Amostras Racional Requisitos 1. H&E Uma coloração da amostra de tecido com hematoxilina e eosina (Fornecidas pelo (H&E) é avaliada em primeiro laboratório) lugar para avaliar a histologia do tecido e a qualidade da preservação. 2. Control Slide (Fornecida pela Dako) A lâmina de controlo corada com o anticorpo primário da PD-L1 do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx deve ser examinada para determinar se todos os reagentes estão a funcionar devidamente. A Control Slide contém o aglomerado da linha celular positiva a PD-L1 e o aglomerado da linha celular negativa a PD-L1. O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx e a coloração H&E devem ser realizados em cortes em série do mesmo bloco de parafina da amostra. As amostras de tecido devem estar intactas, bem preservadas e devem confirmar a indicação de tumor. Em cada procedimento de coloração, deve ser corada uma Control Slide com o anticorpo primário contra a PD-L1. Critérios de aceitação da NCI-H226 (Linha celular de controlo positiva à PD-L1): Coloração da membrana de plasma de 80% das células a 2+ da intensidade de coloração média. Intensidade de coloração não-específica <1+. Critérios de aceitação da MCF-7 (Linha celular de controlo negativa à PD-L1): Sem coloração específica. Intensidade de coloração não-específica <1+. De notar que pode ser ocasionalmente observada a coloração de algumas células nos aglomerados de células de MCF-7. São aplicáveis os seguintes critérios de aceitação: a presença de 10 células totais com coloração distinta da membrana de plasma ou a coloração citoplasmática com 1+ de intensidade dentro dos limites do aglomerado de células de MCF-7 são aceitáveis. 3. Positive Control Tissue Slides (Fornecidas pelo laboratório) As lâminas dos tecidos de controlo positivo coradas com o anticorpo primário da PD-L1 e com o reagente de controlo negativo devem ser examinadas em seguida. Estas lâminas verificam se o método de fixação e o processo de recuperação do alvo são eficazes. Os controlos de tecidos positivos conhecidos devem ser utilizados apenas para monitorização do desempenho correto dos tecidos processados e dos reagentes de teste, NÃO para auxiliar na formulação de um diagnóstico específico das amostras dos doentes. Se os resultados das linhas celulares de controlo não corresponderem a estes critérios, todos os resultados obtidos com as amostras do doente deverão ser considerados inválidos. Os controlos devem consistir em amostras de biopsia/cirúrgicas da mesma indicação de tumor da amostra do doente, fixadas, processadas e impregnadas logo que possível, da mesma forma que a(s) amostra(s) do doente. Utilizar amostras intactas para a interpretação dos resultados de coloração, já que as células necróticas ou degeneradas apresentam, normalmente, uma coloração não específica. Os tecidos selecionados para utilização como controlos de tecido positivo devem demonstrar uma coloração positiva fraca a moderada, quando corados com a PD-L1 para ajudar na deteção de alterações subtis na sensibilidade do ensaio. Em cada processo de coloração, devem ser incluídas duas lâminas de controlo de tecido positivo. Lâmina corada com PD-L1: Deve ser observada presença de coloração castanha na membrana de plasma. A coloração não-específica deve ser 1+. Lâmina corada com Negative Control Reagent: Sem coloração da membrana. A coloração não-específica deve ser 1+. Caso os controlos de tecidos positivos não demonstrem uma coloração positiva apropriada, devem considerar-se inválidos os resultados obtidos com as amostras de teste. ( ) P03914PT_02/SK / p. 6/18

7 4. Negative Control Tissue Slides (Fornecidas pelo laboratório) 5. A lâmina do tecido do doente corou com o Negative Control Reagent 6. A lâmina do tecido do doente corou com o anticorpo primário da PD-L1 As lâminas do tecido de controlo negativo (conhecidas como sendo negativas para a PD-L1), coradas com o anticorpo primário da PD-L1 e com o reagente de controlo negativo, devem ser examinadas a seguir para verificar a especificidade da marcação do antigénio-alvo pelo anticorpo primário. Em alternativa, as porções negativas do tecido de controlo positivo podem servir como tecido de controlo negativo, mas tal deverá ser validado pelo utilizador. Examinar amostras de doentes coradas com o Negative Control Reagent do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. O reagente de controlo negativo é utilizado em vez do anticorpo primário e auxilia na interpretação da coloração específica do local do antigénio. Examinar, por último, toda a lâmina das amostras do doente coradas com o anticorpo primário da PD-L1 do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. Consultar as secções Resumo e explicação, Limitações e Características de desempenho para obter informações específica sobre a imunorreatividade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. Os controlos devem consistir em amostras de biopsia/cirúrgicas da mesma indicação de tumor da amostra do doente, fixadas, processadas e impregnadas logo que possível, da mesma forma que a(s) amostra(s) do doente. Em cada processo de coloração, devem ser incluídas duas lâminas de controlo de tecido negativo. Lâmina corada com PD-L1: Sem coloração da membrana em células tumorais. A coloração não-específica deve ser 1+. Lâmina corada com Negative Control Reagent: Sem coloração da membrana. A coloração não-específica deve ser 1+. Caso ocorra coloração específica da membrana de plasma nas Negative Control Tissue Slides, os resultados obtidos com a amostra do doente devem ser considerados inválidos. A ausência da coloração da membrana plasmática verifica a marcação específica do antigénio-alvo pelo anticorpo primário da PD-L1. A coloração não-específica deve ser 1+. A intensidade da coloração positiva deve ser avaliada no contexto de qualquer coloração de fundo não-específica observada na lâmina do Negative Control Reagent no mesmo processamento. À semelhança do que acontece com qualquer teste de imuno-histoquímica, um resultado negativo significa que o antigénio não foi detetado e não necessariamente que este estava ausente nas células/tecido analisado. Todas as células tumorais viáveis em toda a lâmina do doente corada com PD-L1 devem ser avaliadas e incluídas na avaliação dos resultados da PD-L1. Pelo menos 100 células tumorais viáveis devem estar presentes na lâmina do doente corada com PD-L1 para determinar a percentagem de células coradas. Limitações gerais 1. A imunohistoquímica é um processo de diagnóstico com várias etapas que requer uma formação especializada na seleção dos reagentes apropriados; seleções de tecidos, fixação e processamento; preparação da lâmina de imunohistoquímica e interpretação dos resultados da coloração. 2. A coloração de tecidos depende do manuseamento e processamento dos tecidos antes da coloração. A fixação, congelação, descongelação, lavagem, secagem, aquecimento e seccionamento incorretos ou a contaminação com outros tecidos ou fluidos poderá produzir artefactos, aprisionamento de anticorpos ou resultados falsos negativos. Os resultados inconsistentes podem dever-se a variações nos métodos de fixação e impregnação ou a irregularidades inerentes aos tecidos. 3. Uma contrastação excessiva ou incompleta poderá comprometer a interpretação adequada dos resultados. 4. A interpretação clínica de qualquer coloração positiva ou a sua ausência deve ser avaliada no contexto da apresentação clínica, morfologia e outros critérios histopatológicos. A interpretação clínica de qualquer coloração positiva ou a sua ausência deve ser complementada com estudos morfológicos e controlos adequados, bem como outros testes de diagnóstico. A interpretação da lâmina corada é da responsabilidade de um patologista qualificado que esteja familiarizado com os anticorpos, reagentes e métodos utilizados. A coloração deve ser efetuada por um laboratório licenciado certificado sob a supervisão de um patologista responsável pelo exame das lâminas coradas e garantia da adequação dos controlos positivos e negativos. 5. Os tecidos de pessoas infetadas pelo vírus da hepatite B que contenham o antigénio de superfície da hepatite B (HBsAg) podem exibir coloração não específica com a peroxidase (15). 6. A possibilidade de reações inesperadas em tipos de tecidos testados não pode ser completamente eliminada devido à variabilidade biológica da expressão de antígenos em neoplasmas ou noutros tecidos patológicos. Contactar a Assistência técnica Dako com reações inesperadas devidamente documentadas. 7. Podem observar-se resultados falsos positivos devido à ligação não imunológica de proteínas ou a produtos de reação do substrato. Poderão ser também causados pela atividade da pseudoperoxidase (eritrócitos) e pela atividade da peroxidase endógena (citocromo C) (14). 8. Os reagentes e instruções fornecidos neste sistema foram concebidos para se obter um desempenho ótimo. A diluição subsequente dos reagentes ou a alteração dos tempos ou temperaturas de incubação podem originar resultados erróneos ou discordantes. Limitações específicas do produto 1. Os resultados falsos negativos poderão ser causados pela degradação do antigénio presente nos tecidos ao longo do tempo. Depois de montados nas lâminas, os cortes de tecido devem ser conservados em local escuro a 2-8 C ou a uma temp eratura ambiente até 25 C e devem ser corados num prazo de 4 meses após o seccionamento. As condições de conservação e o manuseamento das lâminas não devem exceder os 25 C em qualquer momento posterio r à montagem para garantir a integridade e a antigenicidade do tecido. 2. Para resultados ótimos e reprodutíveis, a proteína PD-L1 requer o pré-tratamento da recuperação do alvo quando os tecidos forem rotineiramente fixados (formol neutro tamponado) e impregnados em parafina. 3. Não substituir por reagentes de outros números de lote deste produto ou de kits de outros fabricantes. A única exceção é a EnVision FLEX Target Retrieval Solution, Low ph (50x), que, se necessário, está disponível com a Referência K As linhas celulares de controlo coradas apenas devem ser utilizadas para validação do processo de coloração e não para classificar a reação da coloração nos cortes de tecido. 5. Não foi validada a utilização do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx em tecidos com agentes de fixação que não possuam 10% de formol neutro tamponado. 6. As biopsias com agulha excisionais, incisionais, de punção ou internas foram consideradas tipos de amostras aceitáveis para os testes clínicos que utilizavam o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. Aspirações com agulha fina ou outras amostras citológicas eram insuficientes para análises de biomarcadores e foram excluídas dos testes clínicos que utilizavam o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. ( ) P03914PT_02/SK / p. 7/18

8 Avaliação do desempenho não clínico Especificidade analítica para o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx O anticorpo primário para o PD-L1 IHC 28-8 pharmdx é um anticorpo monoclonal de coelho anti PD-L1 humana, clone O imunogénio utilizado para a geração de anticorpos é uma PD-L1 humana recombinante purificada, contendo o domínio extracelular (Phe19-Thr239) da PD-L1 humana. A coloração por IHC com o anticorpo primário da PD-L1 não mostrou qualquer reatividade cruzada para a PD-L2 expressa exogenamente em células de ovário de hamster chinês (CHO). O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx deteta especificamente a proteína de membrana PD-L1 expressa em células tumorais em tecidos FFPE que podem ser completamente abolidas através da adição do antigénio da PD-L1. O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx não deteta a proteína de membrana PD-L1 em células tumorais com a PD-L1 inativada quando o gene PD-L1 está geneticamente eliminado. Tecidos normais e neoplásicos A tabela 2 resume a imunorreatividade do anticorpo Monoclonal Rabbit Anti-Human PD-L1 no painel recomendado de tecidos normais. A tabela 3 resume a imunorreatividade do anticorpo Monoclonal Rabbit Anti-Human PD-L1 em tecidos neoplásicos em micromatrizes de tecido multitumoral. Todos os tecidos foram fixados com formol e impregnados em parafina e corados com PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, de acordo com as instruções no folheto informativo. O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx detetou a proteína PD-L1 localizada na membrana de plasma de tipos de células conhecidos por expressar o antígeno da PD-L1, como as células imunes e células de origem epitelial, sobretudo, células tumorais. Tabela 2: Resumo da reatividade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx em tecido normal Tipo de tecido (n.º testados) Coloração de membrana de plasma positiva: Elementos de tecido Coloração citoplasmática positiva: Elementos de tecido Amígdalas (3) 3/3 Epitélio da cripta 0/3 3/3 Centro germinativo (células imunes) Baço (3) 1/3 Macrófagos 0/3 3/3 Célula litorânea Células mesoteliais (3) 0/3 0/3 Cerebelo (3) 0/3 0/3 Cérebro (3) 0/3 0/3 Colo do útero (3) 1/3 Epitélio 1/3 Epitélio Cólon (3) 2/3 Macrófagos 0/3 Esófago (3) 0/3 0/3 Estômago (3) 0/3 0/3 Fígado (3) 2/3 Células imunes 2/3 Células imunes Glândula salivar (3) 0/3 0/3 Hipófise (3) 1/3 Adeno-hipófise anterior 1/3 Adeno-hipófise anterior 3/3 Neuro-hipófise posterior Intestino delgado (2) 0/2 0/2 Mama (3) 0/3 0/3 Medula óssea (3) 3/3 Megacariócitos 3/3 Megacariócitos Músculo, cardíaco (3) 0/2 0/2 Músculo, esquelético (3) 0/2 0/2 Nervos, periféricos (3) 0/3 0/3 Ovário (3) 0/3 0/3 Pâncreas (3) 3/3 Epitélio (sobretudo células dos ilhéus) 3/3 Epitélio (sobretudo células dos ilhéus) Paratiroide (3) 3/3 Epitélio 0/3 Pele (3) 0/3 1/3 Epitélio Próstata (2) 0/2 0/2 Pulmão (3) 3/3 Macrófagos alveolares 0/3 Rim (3) 3/3 Epitélio tubular 3/3 Epitélio tubular Suprarrenal (3) 3/3 Células medulares 3/3 Células medulares Testículos (3) 0/3 1/3 Células de Leydig Timo (3) 3/3 Epitélio medular 0/3 Tiroide (3) 0/3 0/3 Útero (3) 0/3 0/3 ( ) P03914PT_02/SK / p. 8/18

9 Tabela 3: Resumo da reatividade em tecidos neoplásicos do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx Tipo de tumor Local/Órgão Positivo à PD-L1/total (N=162) Apêndice 1/1 Cabeça e pescoço, palato duro 0/1 Carcinoma bronco-alveolar, pulmão 0/1 Colo do útero, tipo endocervical 0/1 Cólon 2/5 Cólon, metastático para o fígado 1/1 Cólon, mucinoso 0/1 Esófago 1/1 Estômago 1/6 Estômago, mucinoso 0/1 Glândula salivar/parótida 0/2 Intestino delgado 0/2 Mama, DCIS 0/2 Mama, ductal invasivo 3/7 Mama, metastático ductal invasivo para nódulo linfático 1/1 Adenocarcinoma Ovário 0/1 Ovário, endometrioide 0/1 Ovário, mucinoso 0/1 Ovário, seroso 0/1 Pâncreas 1/2 Pâncreas, ductal 0/3 Próstata 2/4 Pulmão 2/5 Reto 2/4 Tiroide, folicular 0/1 Tiroide, folicular-papilar 0/1 Tiroide, papilar 0/3 Útero, célula clara 1/1 Útero, endométrio 1/3 Vesícula biliar 2/4 Vesícula biliar, metastático para o pulmão 0/1 Astrocitoma Cérebro 0/3 Carcinoma Nasofaríngeo, NPC 0/1 Carcinoma adrenocortical Suprarrenal 0/1 Carcinoma das células de Bexiga 3/6 transição Rim 0/1 Carcinoma das células em anel de sinete metastático para Carcinoma das células em anel de 0/1 o ovário sinete Cólon 0/1 Cabeça e pescoço 0/2 Carcinoma das células escamosas esofágicas metastático para o nódulo linfático 1/1 Carcinoma das células escamosas Colo do útero 2/4 Esófago 4/7 Pele 1/2 Pulmão 1/3 Útero 1/1 Carcinoma das células renais Célula clara Rim 0/6 Papilar Rim 0/1 Carcinoma de célula basal Pele 0/1 Carcinoma de célula pequena Pulmão 1/2 Carcinoma de células grandes Pulmão 1/1 Carcinoma embrionário Testículos 0/1 Carcinoma hepatocelular Fígado 1/5 Carcinoma medular Tiroide 0/1 Cordoma Cavidade pélvica 0/1 Ependimoma Encéfalo 0/1 Espermatocitoma Testículos 0/2 Glioblastoma Encéfalo 0/1 Hepatoblastoma Fígado 0/1 Cólon 0/1 Intersticialoma Intestino delgado 0/1 Reto 0/1 Linfoma Célula B difusa Nódulo linfático 2/4 Célula grande anaplásica Nódulo linfático 1/1 Hodgkin Nódulo linfático 2/2 Não-Hodgkin Nódulo linfático 1/1 ( ) P03914PT_02/SK / p. 9/18

10 Tipo de tumor Local/Órgão Positivo à PD-L1/total (N=162) Liposarcoma Cavidade abdominal, mucinoso 0/1 Meduloblastoma Encéfalo 0/1 Melanoma Cavidade nasal 0/1 Reto 0/1 Meningioma Encéfalo 0/2 Mesotelioma Peritoneu 0/1 Neuroblastoma Retroperitoneu 0/1 Neuroectodérmico primitivo Retroperitoneu 0/1 Neurofibroma Tecido mole, região lombar 0/1 Sarcoma Célula clara Parede abdominal 0/1 Condrossarcoma Osso 0/1 Leiomiossarcoma Bexiga 0/1 Tecido mole, parede torácica 0/1 Liposarcoma Cavidade abdominal, mucinoso 0/1 Osteossarcoma Osso 0/2 Próstata 0/1 Rabdomiossarcoma Retroperitoneu 0/1 Tecido mole, embrionário 0/1 Sarcoma sinovial Cavidade pélvica 0/1 Seminoma Testículos 0/2 Timoma Mediastino 1/1 Tumor das células dos ilhéus Pâncreas 0/1 Sensibilidade analítica: NSCLC não-escamoso A sensibilidade analítica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi testada em 112 casos únicos de amostras FFPE de carcinoma do pulmão de células não escamosas (NSCLC) de estádio I a IV, utilizando um lote de produção fabricado. A avaliação da expressão da PD-L1 demonstrou coloração num intervalo de células tumorais positivas de 0-100% e de intensidade de coloração de 0-3. Repetibilidade: NSCLC não-escamoso A repetibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliada na Dako. Os dados de desempenho são fornecidos na tabela 4. A percentagem de concordância negativa (NPA), a percentagem de concordância positiva (PPA) e a percentagem de concordância global (OA) de uma comparação por pares independente dos testes foram determinadas para cada nível da expressão da PD-L1 avaliado. A observação que ocorreu com mais frequência foi aplicada como uma referência para calcular a NPA, a PPA e a OA, assim como os correspondentes intervalos de confiança de 95% da classificação de Wilson; portanto, um dos resultados com esta observação foi excluído das comparações por pares. ( ) P03914PT_02/SK / p. 10/18

11 Tabela 4: Repetibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx - NSCLC não escamoso Repetibilidade Método 1% de nível de expressão Entre equipamentos Entre analistas Entre dias Entre lotes Entre processamentos Cada uma das 10 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas em cada um dos três equipamentos Autostainer Link 48. Foram realizadas, no total, 60 comparações por pares independentes. Cada uma das 12 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas por três analistas num equipamento Autostainer Link 48. Foram realizadas, no total, 72 comparações por pares independentes. Cada uma das 10 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas ao longo de cinco dias não consecutivos no equipamento Autostainer Link 48. Foram realizadas, no total, 80 comparações por pares independentes. Cada uma das 20 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com duas réplicas com cada um dos cinco lotes de reagentes no equipamento Autostainer Link 48. Foram realizadas, no total, 160 comparações por pares independentes. Cada uma das 10 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com oito réplicas num processamento no equipamento Autostainer Link 48. Foram realizadas, no total, 70 comparações por pares independentes. NPA 100 (82,4, 100) PPA 100 (91,6, 100) OA 100 (94,0, 100) NPA 100 (86,2, 100) PPA 100 (92,6, 100) OA 100 (94,9, 100) NPA 100 (86,2, 100) PPA 100 (93,6, 100) OA 100 (95,4, 100) NPA 100 (94,3, 100) PPA 100 (96,2, 100) OA 100 (97,7, 100) NPA 100 (84,5, 100) PPA 100 (92,7, 100) OA 100 (94,8, 100) % de concordância (IC de 95%) 5% de nível de expressão NPA 100 (86,2, 100) PPA 100 (90,4, 100) OA 100 (94,0, 100) NPA 100 (91,6, 100) PPA 100 (88,6, 100) OA 100 (94,9, 100) NPA 100 (89,3, 100) PPA 100 (92,6, 100) OA 100 (95,4, 100) NPA 100 (95,4, 100) PPA 100 (95,4, 100) OA 100 (97,7, 100) NPA 100 (87,9, 100) PPA 100 (91,6, 100) OA 100 (94,8, 100) 10% de nível de expressão NPA 100 (91,6, 100) PPA 100 (82,4, 100) OA 100 (94,0, 100) NPA 100 (93,4, 100) PPA 100 (82,4, 100) OA 100 (94,9, 100) NPA 98,2 (90,6, 99,7) PPA 100 (86,2, 100) OA 98,8 (93,3, 99,8) NPA 100 (96,4, 100) PPA 100 (93,6, 100) OA 100 (97,7, 100) NPA 100 (92,7, 100) PPA 100 (84,5, 100) OA 100 (94,8, 100) Reprodutibilidade externa: NSCLC não-escamoso A reprodutibilidade externa do PPD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliada em três locais de teste externos, respetivamente. Os procedimentos de mascaramento e aleatorização das secções coradas foram efetuados antes da classificação das secções coradas. Os dados de desempenho são fornecidos na tabela 5. A percentagem de concordância negativa (NPA), a percentagem de concordância positiva (PPA) e a percentagem de concordância global (OA) de uma comparação por pares independente dos testes foram determinadas para cada nível da expressão da PD-L1 avaliado. A observação que ocorreu com mais frequência foi aplicada como uma referência para calcular a NPA, a PPA e a OA, assim como os correspondentes intervalos de confiança de 95% da classificação de Wilson; portanto, um dos resultados com esta observação foi excluído das comparações por pares. ( ) P03914PT_02/SK / p. 11/18

12 Tabela 5: Reprodutibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx - NSCLC não escamoso testado em três locais externos Reprodutibilidade Ensaio entre locais (três locais) Ensaio entre locais Intraobservador (um observador em cada um dos três locais) Intraobservador (um observador em cada um dos três locais) Método Cada uma das 10 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada em cinco dias não consecutivos. A análise entre locais foi realizada entre três locais num total de 140 comparações por pares independentes. Cada uma das 10 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada em cinco dias não consecutivos em cada um dos três locais de estudo. A análise intralocal foi realizada para três locais num total de 120 comparações por pares independentes. A classificação de 15 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC, coradas com PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, foi realizada por três patologistas, um em cada dos três locais do estudo, em três dias não consecutivos. A análise entre observadores foi realizada entre três locais num total de 120 comparações por pares independentes. A classificação de 15 amostras de NSCLC não-escamoso com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC, coradas com PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, foi realizada por três patologistas, um em cada dos três locais do estudo, em três dias não consecutivos. A análise intra-observador foi realizada para três locais num total de 90 comparações por pares independentes. 1% de nível de expressão % de concordância (IC de 95%) NPA 100 (93,6, 100) PPA 98,8 (93,6, 99,8) OA 99,3 (96,1, 99,9) NPA 100 (92,6, 100) PPA 98,6 (92,5, 99,8) OA 99,2 (95,4, 99,9) NPA 96,9 (89,3, 99,1) PPA 100 (93,6, 100) OA 98,3 (94,1, 99,5) NPA 95,8 (86,0, 98,8) PPA 100 (91,6, 100) OA 97,8 (92,3, 99,4) 5% de nível de expressão NPA 91,4 (82,5, 96,0) PPA 97,1 (90,2, 99,2) OA 94,3 (89,1, 97,1) NPA 96,4 (87,9, 99,0) PPA 95,3 (87,1, 98,4) OA 95,8 (90,6, 98,2) NPA 100 (94,3, 100) PPA 89,3 (78,5, 95,0) OA 95,0 (89,5, 97,7) NPA 100 (93,1, 100) PPA 100 (90,8, 100) OA 100 (95,9, 100) Avaliação do desempenho clínico: NSCLC não-escamoso A utilidade clínica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliada no CA209057, um estudo de fase 3, aleatorizado e sem dupla ocultação do nivolumab em comparação com docetaxel em indivíduos adultos ( 18 anos) com NSCLC de células não escamosas, avançado ou metastático, após falha do tratamento anterior de quimioterapia dupla baseada em platina. No total, 582 indivíduos foram aleatorizados em 112 locais em 22 países (Argentina, Austrália, Áustria, Brasil, Canadá, Chile, República Checa, França, Alemanha, Hong Kong, Hungria, Itália, México, Noruega, Peru, Polónia, Roménia, Federação Russa, Singapura, Espanha, Suíça e Estados Unidos). Os indivíduos foram aleatorizados 1:1 e estratificados de acordo com 1) a utilização anterior de terapia de manutenção vs. a não utilização de terapia de manutenção e 2) terapia de segunda vs. terceira linha. Amostras de tecido tumoral anteriores ao estudo (referência) foram recolhidas antes da aleatorização e antes do primeiro tratamento, para realizar análises pré-planeadas da eficácia, de acordo com níveis da expressão da PD-L1 predefinidos (objetivo secundário). O parâmetro de avaliação final primário era a sobrevivência global (OS). Outros parâmetros de avaliação final secundários consistiam na taxa de resposta objetiva (ORR), na sobrevivência sem progressão (PFS) e na melhoria dos sintomas relacionados com a doença ao fim de 12 semanas, medidos pela Lung Cancer Symptom Scale (LCSS). As características de referência em termos de população e doença foram normalmente equilibradas entre indivíduos aleatorizados nos grupos de nivolumab e docetaxel. A idade média era de 62 anos (intervalo: 21 a 85) com 34% com 65 anos e 7% com 75 anos. A maioria dos doentes era caucasiana (92%) e do sexo masculino (55%); o estado de desempenho ECOG de referência era 0 (31%) ou 1 (69%). Setenta e nove por cento dos doentes tinham sido/eram ainda fumadores. Foram recolhidas amostras tumorais de tumores NSCLC não-escamosos, de acordo com os requisitos de inclusão do estudo. As frequências da expressão da PD-L1 em cada um dos níveis de expressão de referência predefinidos em todos os indivíduos aleatorizados no CA são apresentadas na tabela 6. ( ) P03914PT_02/SK / p. 12/18

13 Tabela 6: Frequência da expressão da PD-L1 anterior ao estudo em todos os indivíduos aleatorizados com NSCLC não escamoso CA Categoria da expressão de referência da PD-L1 da população Nivolumab 3 mg/kg Docetaxel Total Geral PD-L1 quantificável, N (%) 231 (79,1) 224 (77,2) 455 (78,2) Expressão da PD-L1 1% 123/231 (53,2) 123/224 (54,9) 246/455 (54,1) Expressão da PD-L1 < 1% 108/231 (46,8) 101/224 (45,1) 209/455 (45,9) Expressão da PD-L1 5% 95/231 (41,1) 86/224 (38,4) 181/455 (39,8) Expressão da PD-L1 < 5% 136/231 (58,9) 138/224 (61,6) 274/455 (60,2) Expressão de referência da PD-L1 10% 86/231 (37,2) 79/224 (35,3) 165/455 (36,3) Expressão da PD-L1 < 10% 145/231 (62,8) 145/224 (64,7) 290/455 (63,7) PD-L1 não quantificável, N ( %) 61 (20,9) 66 (22,8) 127 (21,8) Os doentes com expressão da PD-L1 em todos os níveis de expressão predefinidos no grupo do OPDIVO foram associados a uma maior sobrevivência em comparação com o docetaxel, ao passo que a sobrevivência foi semelhante ao docetaxel em doentes sem expressão da PD-L1. Diferenças significativas na sobrevivência global média foram observadas nos subgrupos do nivolumab em relação aos subgrupos do docetaxel, quando analisados pelo nível de expressão da PD-L1. A sobrevivência global média foi de 17,1, 18,2 e 19,4 meses para indivíduos com o nivolumab, em comparação com 9,0, 8,1 e 8,0 meses para indivíduos com o docetaxel com níveis de expressão da PD-L1 de 1%, 5% e 10%, respetivamente. Não foi observada qualquer diferença na sobrevivência global entre os grupos de tratamento em indivíduos com níveis de expressão < 1%, < 5% e < 10%, com intervalos de sobrevivência global média de 9,7 a 10,4 meses para o nivolumab e 10,1 a 10,3 meses para o docetaxel. As taxas de risco (HR) não estratificadas e a sobrevivência global (OS) média são apresentadas na figura 1. O diagrama de Kaplan-Meier para subgrupos por nível de expressão da PD-L1 é mostrado nas figuras 2 e 3. Figura 1: Gráfico de floresta Sobrevivência global baseada na expressão da PD-L1 em doentes com NSCLC não escamoso CA Sobrevivência global média (meses) Nível da expressão da PD-L1 Taxas de risco OPDIVO Doceraxel não estratificadas 1% (n = 246) 0,59 17,1 9,0 <1% (n = 209) 5% (n = 181) <5% (n = 274) 10% (n = 165) <10% (n = 290) 0,90 10,4 10,1 0,43 18,2 8,1 1,01 9,7 10,1 0,40 19,4 8,0 1,00 9,9 10,3 0,25 0,5 1,0 2,0 Favorece o OPDIVO Nota: A taxa de risco não estratificada e os correspondentes intervalos de confiança de 95% foram estimados num modelo Cox de riscos proporcionais, utilizando o braço aleatorizado como uma covariável única ( ) P03914PT_02/SK / p. 13/18

14 Figura 2: Sobrevivência global - doentes com NSCLC não escamoso com expressão da PD-L1 1% - CA ,0 0,9 Probabilidade de sobrevivência 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 OPDIVO Docetaxel 0, Sobrevivência global (meses) Número de risco OPDIVO Docetaxel Figura 3: Sobrevivência global - doentes com NSCLC não escamoso com expressão da PD-L1 < 1% - CA ,0 0,9 Probabilidade de sobrevivência 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 OPDIVO Docetaxel 0, Sobrevivência global (meses) Número de risco OPDIVO Docetaxel ( ) P03914PT_02/SK / p. 14/18

15 Sensibilidade analítica: Melanoma A sensibilidade analítica do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi testada em 104 casos únicos de amostras FFPE de melanoma de estádio I a IV. A avaliação da expressão da PD-L1 demonstrou coloração num intervalo de células tumorais positivas de 0-100% e de intensidade de coloração de 0-3. Repetibilidade: Melanoma A repetibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliada na Dako. Os procedimentos de mascaramento e aleatorização das secções coradas foram efetuados antes da classificação das secções coradas. Os dados de desempenho são apresentados na tabela 7 e na tabela 8. A percentagem média de concordância negativa (ANA), a percentagem média de concordância positiva (APA) e a percentagem de concordância global (OA) de uma comparação por pares não redundante dos testes foram determinadas para cada nível de expressão da PD-L1 avaliado. Tabela 7: Repetibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx - Melanoma Repetibilidade Entre equipamentos Entre analistas Entre dias Entre lotes Entre processamentos Método Cada uma das 16 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas em cada um dos três equipamentos Autostainer Link 48. No total, foram realizadas 160 comparações por pares. Cada uma das 16 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas por três analistas num equipamento Autostainer Link 48. No total, foram realizadas 240 comparações por pares. Cada uma das 16 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com três réplicas ao longo de cinco dias não consecutivos no equipamento Autostainer Link 48. No total, foram realizadas 160 comparações por pares. Cada uma das 16 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com duas réplicas com cada um dos três lotes de reagentes no equipamento Autostainer Link 48. No total, foram realizadas 640 comparações por pares. Cada uma das 16 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada com oito réplicas num processamento no equipamento Autostainer Link 48. No total, foram realizadas 160 comparações por pares. % de concordância (IC de 95%) 1% de nível de expressão 5% de nível de expressão ANA 89,5 (83,2, 93,6) APA 90,5 (84,8, 94,2) OA 90,0 (86,0, 92,9) ANA 96,4 (92,9, 98,2) APA 96,8 (93,8, 98,4) OA 96,6 (94,5, 97,9) ANA 95,5 (90,3, 97,9) APA 96,8 (93,1, 98,6) OA 96,3 (93,5, 97,9) ANA 98,6 (97,3, 99,3) APA 98,8 (97,8, 99,4) OA 98,7 (98,0, 99,2) ANA 97,1 (92,6, 98,9) APA 97,7 (94,1, 99,1) OA 97,4 (94,9, 98,7) ANA 90,8 (85,7, 94,2) APA 85,5 (77,6, 90,9) OA 88,8 (84,6, 91,9) ANA 91,3 (87,1, 94,2) APA 88,8 (83,4, 92,6) OA 90,2 (87,0, 92,7) ANA 90,0 (84,0, 93,9) APA 90,0 (84,0, 93,9) OA 90,0 (86,0, 92,9) ANA 92,6 (90,6, 94,2) APA 86,6 (83,1, 89,5) OA 90,5 (88,7, 91,9) ANA 93,6 (89,0, 96,4) APA 89,8 (82,7, 94,2) OA 92,2 (88,4, 94,8) Reprodutibilidade externa: Melanoma A reprodutibilidade externa do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliada em três locais de teste externos. Os procedimentos de mascaramento e aleatorização das secções coradas foram efetuados antes da classificação das secções coradas. Os dados de desempenho são apresentados na tabela 8. A percentagem média de concordância negativa (ANA), a percentagem média de concordância positiva (APA) e a percentagem de concordância global (OA) de uma comparação por pares não redundante dos testes foram determinadas para cada nível de expressão da PD-L1 avaliado. Tabela 8: Reprodutibilidade do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx - Melanoma testado em três locais externos % de concordância (IC de 95%) Reprodutibilidade Método 1% de nível de expressão 5% de nível de expressão Ensaio entre locais (três locais) Ensaio entre locais Intraobservador (um observador em cada um dos três locais) Intraobservador (um observador em cada um dos três locais) Cada uma das 18 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada em cinco dias não consecutivos. A análise Inter locais foi realizada entre três locais num total de 1350 pares de comparações. Cada uma das 18 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC foi testada em cinco dias não consecutivos em cada um dos três locais de estudo. A análise Intra locais foi realizada entre três locais num total de 540 pares de comparações. A classificação de 30 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC, coradas com PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, foi realizada por três patologistas, um em cada um dos três locais do estudo, em três dias não consecutivos. A análise Inter observadores foi realizada entre três locais num total de 810 pares de comparações. A classificação de 30 amostras de melanoma com um intervalo de expressão da PD-L1 por IHC, coradas com PD-L1 IHC 28-8 pharmdx, foi realizada por três patologistas, um em cada um dos três locais do estudo, em três dias não consecutivos. A análise Intra observadores foi realizada entre três locais num total de 270 pares de comparações. ANA 99,3 (98,8, 99,7) APA 99,3 (98,8, 99,7) OA 99,3 (98,7, 99,7) ANA 99,3 (98,4, 99,8) APA 99,3 (98,5, 99,8) OA 99,3 (98,5, 99,8) ANA 90,4 (88,1, 92,5) APA 91,7 (89,7, 93,6) OA 91,1 (89,1, 93,1) ANA 99,2 (97,9, 100) APA 99,3 (98,2, 100) OA 99,3 (98,1, 100) ANA 93,8 (92,5, 95,1) APA 92,7 (91,2, 94,2) OA 93,3 (91,9, 94,7) ANA 97,3 (95,8, 98,5) APA 96,8 (95,1, 98,2) OA 97,0 (95,6, 98,3) ANA 93,2 (91,3, 94,8) APA 91,9 (89,8, 93,9) OA 92,6 (90,7, 94,3) ANA 97,9 (96,1, 99,4) APA 97,6 (95,4, 99,2) OA 97,8 (95,9, 99,3) ( ) P03914PT_02/SK / p. 15/18

16 Avaliação do desempenho clínico: Melanoma O PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi avaliado utilizando amostras de doentes inscritos no teste clínico CA209067, um estudo de fase 3, aleatorizado, duplamente cego de monoterapia de nivolumab ou nivolumab em combinação com ipilimumab versus monoterapia de ipilimumab em doentes com melanoma metastático anteriormente sem tratamento. Um total de 1296 doentes foram inscritos em 137 locais de 21 países (Austrália, Áustria, Bélgica, Canadá, República Checa, Dinamarca, Finlândia, França, Alemanha, Irlanda, Israel, Itália, Países Baixos, Nova Zelândia, Noruega, Polónia, Espanha, Suécia, Suíça, Reino Unido e Estados Unidos). Dos 1296 doentes inscritos, 945 doentes foram aleatorizados num dos três braços de tratamento numa proporção de 1:1:1 e estratificados pelo estado da PD-L1 ( 5% num ensaio de teste clínico), estado do BRAF e fase AJCC M. As características de referência em termos de população e doença foram normalmente equilibradas entre doentes aleatorizados nos grupos de tratamento. A idade média era de 60 anos (intervalo: 18 a 90) com 40% dos indivíduos com idades 65 anos e 13% com idades 75 anos. A maioria dos doentes era de raça branca (97%) e do sexo masculino (65%). As amostras tumorais (de referência) anteriores ao estudo foram recolhidas em doentes com melanoma, sendo que 86% foram recolhidas a partir de locais metastáticos. Dos 945 doentes aleatorizados do estudo, foi realizado em 915 (97%) doentes um teste retrospetivo dos tecidos tumorais arquivados com o ensaio PD-L1 IHC 28-8 pharmdx. Em 55 (6%) dos doentes do estudo, a melanina impedia a avaliação do estado da expressão da PD-L1 e o estado da expressão da PD-L1 era desconhecido para 47 (5%) doentes devido à retirada de consentimento ou a amostras em falta. Assim, o estado da expressão da PD-L1 foi verificado em 843 (89%) dos doentes do estudo. A proporção de doentes com expressão tumoral da PD-L1 em níveis de 1% e <1% foi equilibrada entre os grupos de tratamento. O estado da expressão da PD-L1 nos doentes do estudo com resultados do teste PD-L1 IHC pharmdx em CA é apresentado na tabela 9. Tabela 9: Frequência da expressão da PD-L1 em todos os indivíduos aleatorizados com melanoma CA Número de indivíduos, n (%) nivolumab nivolumab + ipilimumab ipilimumab Indivíduos com PD-L1 quantificável a Nível da expressão da PD-L1: 1% 171 (59,4) 155 (55,8) 164 (59,2) <1% 117 (40,6) 123 (44,2) 113 (40,8) 5% 80 (27,8) 68 (24,5) 75 (27,1) <5% 208 (72,2) 210 (75,5) 202 (72,9) a Apenas o número de resultados quantificáveis da PD-L1; não inclui o número indeterminado de resultados da PD-L1 O nivolumab e a combinação do nivolumab com ipilimumab demonstrou uma PFS melhorada em comparação com o ipilimumab em subgrupos de expressão da PD-L1. A comparação entre o nivolumab+ipilimumab vs nivolumab não foi um objetivo primário do estudo e, consequentemente, o estudo não foi realizado para detetar esta diferença. No entanto, em indivíduos com níveis baixos de expressão da PD-L1, a combinação do nivolumab + ipilimumab demonstrou uma PFS melhorada em comparação com o tratamento com nivolumab. Em indivíduos com níveis altos de expressão da PD-L1, a PFS era comparável no tratamento com nivolumab e na combinação nivolumab + ipilimumab. As ORR superiores foram observadas nos grupos de tratamento com nivolumab e nivolumab + ipilimumab em ambas as definições do estado de expressão da PD-L1 (expressão da membrana das células tumorais de 1% ou 5%) relativamente ao grupo de tratamento com ipilimumab. Os indivíduos submetidos ao nivolumab e nivolumab + ipilimumab que tiveram uma expressão da membrana das células tumorais de 1% ou 5% registaram uma ORR numericamente superior em comparação com a expressão da membrana das células tumorais de <1% ou <5%, respetivamente. No grupo com ipilimumab, as ORR foram comparáveis em todos os subgrupos de expressão da PD-L1, independentemente da definição da expressão da PD-L1 (expressão da membrana das células tumorais de 1% ou 5%). Para além disso, foi observada uma ORR superior com nivolumab + ipilimumab em comparação com uma monoterapia com nivolumab, independentemente do nível de expressão da PD-L1. Com base nas análises da expressão da PD-L1 a partir deste estudo, a maior vantagem da PFS para a combinação do nivolumab + ipilimumab vs nivolumab isolado pode ocorrer na definição da expressão da PD-L1 <5%. A expressão da PD-L1 pode ser utilizada como auxiliar na avaliação de doentes para quem estiver a ser considerada a combinação de nivolumab com ipilimumab versus monoterapia de nivolumab, mas esta informação deve ser tida em consideração no contexto de todas as informações clínicas disponíveis, uma vez que foram observadas respostas clinicamente significativas em subgrupos de expressão da PD-L1. Nos níveis de expressão da PD-L1, a população com intenção de se tratar que recebeu a combinação do nivolumab com ipilimumab apresentou melhorias na eficácia, em comparação com o ipilimumab de forma isolada. As taxas de risco (HR) da PFS e a PFS média por nível de expressão da PD-L1 são apresentadas na tabela 10. A ORR avaliada pelo investigador de acordo com o nível de expressão da PD-L1 é apresentada na tabela 11. ( ) P03914PT_02/SK / p. 16/18

17 Tabela 10: Resumo da sobrevivência sem progressão de acordo com o grupo de tratamento e nível da PD-L1 - Todos os indivíduos aleatorizados com melanoma - CA Tratamento nivolumab +ipilimumab nivolumab ipilimumab Nível da expressão da N.º de eventos/ PD-L1 N.º de doentes PFS média por mês (IC de 95%) HR vs. ipilimumab (IC de 95%) HR vs. monoterapia de nivolumab (IC de 95%]) 5% 28/68 13,96(9,72, NA) 0,39 (0,25, 0,62) 0,96 (0,58, 1,58) <5% 103/210 11,24(7,98, NA) 0,42 (0,32, 0,54) 0,70 (0,54, 0,91) 1% 72/155 12,35(8,51, NA) 0,44 (0,32, 0,58) 0,95 (0,69, 1,31) <1% 59/123 11,17(6,93, NA) 0,38 (0,27, 0,53) 0,56 (0,40, 0,79) 5% 33/80 14,00(9,07, NA) 0,41 (0,26, 0,63) -- <5% 122/208 5,32(2,83, 7,06) 0,59 (0,47, 0,75) -- 1% 79/171 12,39(8,11, NA) 0,46 (0,34, 0,61) -- <1% 76/117 2,83(2,76, 5,13) 0,67 (0,49, 0,92) -- 5% 53/75 3,94 (2,79, 4,21) <5% 154/202 2,83 (2,76, 3,09) % 122/164 3,91 (2,83, 4,17) <1% 85/113 2,79 (2,66, 2,96) Abreviaturas: IC = intervalo de confiança, NA = não atingido, PFS = sobrevivência sem progressão TR = taxa de risco para efeito do tratamento com base no modelo de risco proporcional de Cox com o tratamento, PD-L1, estado e tratamento de acordo com a interação do estado da PD-L1 Tabela 11: ORR avaliada pelo investigador: Doentes com melanoma por expressão da PD-L1 - indivíduos testados à PD-L1 - CA PD-L1 Número ORR Tratamento Nível de expressão de doentes % [IC de 95%] 5% 68 72% (59,9, 82,3) Nivolumab + Ipilimumab <5% % (47,8, 61,6) 1% % (56,4, 72,0) <1% % (42,8, 61,1) 5% 80 58% (45,9, 68,5) Nivolumab <5% % (34,6, 48,4) 1% % (46,6, 62,0) <1% % (24,9, 42,6) 5% 75 21% (12,7, 32,3) Ipilimumab <5% % (12,8, 23,8) 1% % (13,2, 25,7) <1% % (11,9, 27,0) Tabela 12: Resolução de problemas Problema Causa provável Ação sugerida 1. Ausência de coloração de controlo ou lâminas com amostras 1a. Erro de programação. 1a. Verificar se o programa SK005 do PD-L1 IHC 28-8 pharmdx foi selecionado para a programação das lâminas. 1b. Falta de reação com a DAB+ Substrate-Chromogen Solution (DAB) 1b. Verificar se a DAB+ Substrate-Chromogen Solution foi devidamente preparada. 1c. Azida de sódio no tampão de lavagem. 1c. Utilizar apenas Dako Wash Buffer, Referência K d. Degradação da lâmina de controlo 1d. Verificar a data de validade e as condições de conservação do kit impressas no exterior da embalagem. 2a. Coloração fraca das lâminas das 2a. Foi utilizado um método de fixação 2a. Certificar-se de que são utilizados apenas amostras. 2b. Coloração fraca das lâminas de amostras ou da linha de células positivas na lâmina de controlo fornecida pela Dako. 3. Coloração de fundo excessiva das lâminas. inapropriado. métodos e agentes de fixação aprovados. 2b. Recuperação de alvo inadequada. 2b. Verificar se o procedimento de pré-tratamento 3 em 1 foi corretamente realizado. 3a. A parafina não foi completamente removida. 3a. Verificar se o procedimento de pré-tratamento 3 em 1 foi corretamente realizado. ( ) P03914PT_02/SK / p. 17/18

18 4. Os tecidos separam-se das lâminas. 3b. As lâminas secaram enquanto eram carregadas para o Autostainer Link 48. 3c. Ligação não específica dos reagentes ao corte de tecido. 4a. Utilização de lâminas de microscópio incorretas. 3b. Certificar-se de que as lâminas permanecem humedecidas com tampão durante a colocação no aparelho e antes de iniciar o processo. 3c. Verificar se a amostra foi corretamente fixada e/ou se existe necrose. 4a. Utilizar lâminas de microscópio Dako FLEX IHC (Referência K8020) ou lâminas carregadas (por exemplo, Fisherbrand Superfrost Plus). 4b. As secções cortadas devem ser colocadas num forno a 58 ± 2 C durante 1 hora antes da coloração. 5a. Certificar-se de que são utilizados apenas métodos e agentes de fixação aprovados. 5b. Utilizar apenas Dako Wash Buffer, Referência K Isto é normal e não influencia a coloração. 4b. Preparação inadequada das amostras 5. Coloração específica 5a. Foi utilizado um método de fixação excessivamente forte. inapropriado. 5b. Foi utilizado um tampão de lavagem inadequado. 6. A Target Retrieval Solution adquire 6. Quando é aquecida, a Target um aspeto turvo quando é aquecida. Retrieval Solution adquire um aspeto turvo. NOTA: Contactar a Assistência técnica Dako e solicitar assistência, caso não seja possível atribuir o problema a uma das causas acima indicadas ou se a ação de correção sugerida não solucionar o problema. É possível encontrar informações adicionais sobre técnicas de coloração e preparação das amostras no Dako Education Guide: Immunohistochemical Staining Methods (15) (disponibilizado pela Dako). Referências 1. Topalian SL, Drake CG, Pardoll DM. Targeting the PD-1/B7-H1 (PD-L1) pathway to activate anti-tumor immunity. Curr Opin Immunol 2012; 24(2): Wang C, Thudium KB, Han M, et al. In vitro characterization of the anti-pd-1 antibody nivolumab, BMS , and in vivo toxicology in non-human primates. Cancer Immunol Res 2014; 2(9): OPDIVO package insert. 4. YERVOY package insert. 5. Borghaei H, Paz-Ares L, Horn L, et al. Nivolumab versus Docetaxel in advanced nonsquamous non-small-cell lung cancer. N Engl J Med 2015; /NEJMoa Phillips T, Simmons P, Inzunza HD, et al. Development of an automated PD-L1 immunohistochemistry (IHC) assay for non-small cell lung cancer. Appl Immuno Molec Morph 2015; 23(8): Phelps RM, et al. NCI-navy medical oncology branch cell line data base. J. Cell. Biochem. 1996; 63: Weber JS, D Angelo SP, Minor D, et al. Nivolumab versus chemotherapy in patients with advanced melanoma who progressed after anti-ctla-4 treatment (CheckMate 037): a randomised, controlled, open-label, phase 3 trial. Lancet Oncol 2015; 16: Postow M, Chesney J, Pavlick A, et al. Nivolumab and ipilimumab versus ipilimumab in untreated melanoma. N Engl J Med. 2015; 372(21): Larkin J, Chiarion-Sileni V, Gonzalez R et al. Combined Nivolumab and Ipilimumab or Monotherapy in Untreated Melanoma. N Engl J Med. 2015; 373(1): Topalian SL, Hodi FS, Brahmer JR, et. al. Safety, Activity, and Immune Correlates of Anti-PD-1 Antibody in Cancer. New Eng. J. Med. 2012; 366(26): Department of Health, Education and Welfare, National Institutes for Occupational Safety and Health, Rockville, MD. Procedures for the decontamination of plumbing systems containing copper and/or lead azides. DHHS (NIOSH) Publ. No , Current 13. August 16, Clinical and Laboratory Standards Institute (formerly NCCLS). Protection of Laboratory Workers From Occupationally Acquired Infections; Approved Guideline Fourth Edition. CLSI document M29-A4 [ISBN ]. Clinical and Laboratory Standards Institute, 950 West Valley Road, Suite 2500, Wayne, Pennsylvania USA, Clinical and Laboratory Standards Institute (formerly NCCCLS). Quality assurance for Design Control and Implementation of Immunohistochemistry Assays; Approved guideline. CLSI document I/LA28-A2; Vol. 31 No. 4 (ISBN ) CLSI, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania USA; Taylor CR and Rudbeck L. Education Guide: Immunohistochemical Staining Methods. Sixth Edition. Dako, Carpinteria, California; Edição 04/16 ( ) P03914PT_02/SK / p. 18/18