PRODUÇÃO DE CAROTENOIDES MICROBIANOS PELA LEVEDURA Sporidiobolus pararoseus UTILIZANDO COPRODUTOS Whallans Raphael Couto Machado (UNESP whallansfm@hotmail.com Janaina Fernandes de Medeiros Burkert (FURG jfmb@vetorial.net Resumo: Os carotenoides são um grupo de pigmentos naturais distribuídos amplamente na natureza, em plantas, flores e micro-organismos, tendo como principais fontes de obtenção industrial a síntese química, extração de plantas e a produção biotecnológica, na qual vem despertando crescente interesse. Através de um delineamento composto central rotacional 2 2 foi possível estudar os efeitos da composição do meio de cultivo com glicerol bruto (5 a 0 g.l e água de maceração de milho ( a g.l a C, 0 rpm por h. A utilização de 9 a 0 g.l de glicerol bruto e 2 a g.l água de maceração de milho de glicerol bruto alcançou a máxima produção em carotenoides de 0 µg.l (2,3 µg.g em h, uma concentração celular de, g.l, produtividades em carotenoides e biomassa de,7 g.l.h (0,55 µg.g.h e 0,0 g.l.h, respectivamente. Portanto, houve um ganho de aproximadamente 9% e 5% na produção de carotenoides volumétrica e específica, respectivamente, se comparado com o menor resultado de cada resposta. Dessa forma demostrando o potencial da Sporidiobolus pararoseus como fonte de carotenoides microbianos utilizando coprodutos agroindustriais. Palavras-chave: carotenoides, coprodutos, levedura. PRODUCTION OF CAROTENOIDS BY MICROBIAL YEAST SPORIDIOBOLUS PARAROSEUS USING COPRODUCTS Abstract: Its main industrial sources of obtaining chemical synthesis Carotenoids are a group of natural pigments widely distributed in nature, in plants, flowers and micro-organisms, the main sources of industrial obtaining chemical synthesis, extraction plants and biotechnological production, which is attracting growing interest. Through a central composite rotatable design was 2 2 possible to study the effects of the composition of the culture medium with raw glycerol (5 to 0 g.l and corn steep liquor ( to g.l at C, 0 rpm for h. The use of 9 to 0 g.l of raw glycerol and 2 to g.l corn steep liquor reached the maximum yield in carotenoids of 0 µg.l (2.3 μg.g in h, a cell concentration of. g.l, productivities in carotenoids and biomass of.7 g.l.h (0.55 μg.g.h and 0.0 g L.h, respectively. Therefore, a gain of approximately 9% and 5% in volumetric and specific production of carotenoids, respectively, compared with the lowest result of each response. Thereby demonstrating the potential of Sporidiobolus pararoseus as a source of microbial carotenoids using agroindustrial byproducts. Keywords: carotenoids, co-products, yeast.. INTRODUÇÃO Os carotenoides são hidrocarbonetos lipossolúveis encontrados abundantemente na natureza com mais de 00 estruturas caracterizadas, apresentando variação de cor do amarelo até o vermelho, presentes em frutas, vegetais, flores e micro-organismos. Estes pigmentos tem V., N o. 2, Ago/ Página 59
desempenhado papel importante na saúde humana, como precursores de vitamina A, antioxidante e estimula a produção de anticorpos (CABRAL et al., ; AMAR et al., 2. Os carotenoides têm ganhado destaque na indusria de farmaco e alimenticia, pois são corantes naturais utilizados em cosméticos, alimentos e rações animais. Suas propriedades fisiológicas são inúmeras, por esse motivo ele vem ganhando grande aprovação dos consumidores. Entretando o mercado global apresenta uma pespetiva de demanda para o ano de 7 de 0 bilhoes de tonela, com taxa de crescimento de 2,9%/ano (VENIL et al., 3. Atualmente boa parte do mercado é derivada da síntese química, não satisfazendo o desejo do consumidor por busca de corantes naturias. Assim, os aspectos negativos do uso de carotenoides obtidos pela síntese química vêm aumentando o interesse na obtenção de carotenoides por processos biotecnológicos utilizando diferentes leveduras (MACHADO, 3; MICHELON et al., 2; SILVA et al., 2; CIPOLATTI, 2; FONSECA et al., ; OTERO, ; SILVA, 0; SILVA, 09 e microalgas (REIS, 2. Existem alguns micro-organismos produtores de carotenoides como a Phaffia rhodozyma (RAMÍREZ, 00; FRENGOVA e BESHKOVA, 09 e Rhodotorula mucilaginosa (AKSU e EREN, 05. Dentre as leveduras carotenogênicas destacam-se a, Sporidiobolus pararoseus Porém, a obtenção microbiana de carotenoides é limitada principalmente pelo custo elevado de produção. Entretanto, este custo pode ser minimizado aperfeiçoando/otimizando seu processo e aproveitando coprodutos industriais de menor custo como fontes nutrientes alternativas (MALDONADE et al., 07. Os coprodutos agroindustriais como farelo de soja, caldo de cana, ureia, mosto de uva, soro de leite, água de maceração de milho, melaço de cana, melaço de beterraba, glicerol bruto e água de parbolização de arroz podem ser utilizados como substratos no meio de cultivo, por diferentes micro-organismos para produção de pigmentos, como fontes de carbono e nitrogênio alternativas. O objetivo desse trabalho foi produzir, através de cultivos submersos, biomassa rica em carotenoides por Sporidiobolus pararoseus aproveitando glicerol bruto e água de maceração de milho, provenientes respectivamente do processo biodissel, e da moagem do milho úmido. 2. MATERIAIS E MÉTODOS 2.. Micro-organismo Foi utilizado a levedura Sporidiobolus pararoseus previamente isolada e identificada por Otero (. A linhagem foi mantida em ágar GYMP (2 g.l glicose, g.l extrato de malte, 0,5 g.l extrato de levedura, 0,2 g.l NaH 2 PO e, g.l ágar estocada em refrigeração e reativa em ágar YM (3 g.l de extrato de levedura, 3 g.l e extrato de malte, 5 g.l de peptona, 0 g.l de glicose, 0,2 g.l de ágar (Coelho, 05 72 h a ºC. 2.2. Substratos agroindustriais Os substratos agroindustriais utilizados foram o glicerol bruto (BSBIOS Indústria e Comércio de Biodiesel Sul Brasil S/A - Passo Fundo RS oriundo da produção de biodiesel, o melaço de cana-de açúcar (Guimarães Indústria e Comércio Ltda. - RS, ambos como fonte de carbono, e a água de maceração de milho (Corn Products de Balsa Nova - PR da moagem do milho úmido, usada como fonte de nitrogênio, previamente caracterizados Otero (, Silva et al. (2 e Cipolatti, (2. V., N o. 2, Ago/ Página 0
2.3. Preparo do inoculo A partir dos tubos contendo os micro-organismos em ágar YM inclinado, foi realizada uma suspensão celular em ml de água peptonada estéril (0,% e adicionada em 9 ml de caldo YM, sendo incubados a ºC por h. O inoculo foi realizado em erlenmeyers de 0 ml, contendo 90 ml do meio YM, previamente esterilizado a 2ºC por 5 min, acrescidos da suspensão celular, sendo incubados a C, 50 rpm por h ou tempo necessário para atingir x0 células.ml, contadas através de câmara de Neubauer (Silva, 0. 2.. Cultivo Os ensaios foram realizados em erlenmeyers de 500 ml com 2 ml de meios, o ph inicial de,0, acrescidos de 0% de inoculo, iniciando o cultivo com x0 7 células.ml, sendo as condições operacionais do processo ºC, 0 rpm por h (Silva, 09. Nas primeiras h de cultivo as amostras foram retiradas em intervalados de 2 h, onde posteriormente foi retirando em intervalos regulares a cada 2 h até o término do processo ( h, para acompanhar biomassa, ph, açúcares e carotenoides totais. 2.5. Otimização dos meios agroindustriais Os efeitos da composição do meio agroindustrial sem pré-tratamento foi estudado a partir do delineamento central composto rotacional (DCCR 2², apresentado na tabela, tendo como respostas carotenoides totais (µg.l e carotenoides específicos (µg.g, produtividades, biomassa e relação C/N. Para cada ensaio foi determinado a razão carbono (C e nitrogênio (N, identificando a razão C/N ótima para a melhor produção. 2.. Determinação do ph A determinação do ph foi realizada através da leitura da amostra em um potenciômetro, segundo AOAC (00. 2.7. Determinação da concentração de biomassa A concentração celular ao longo da bioprodução dos carotenoides foi estimada por leitura da absorbância a nm, através de uma curva padrão de biomassa (Kusdiyantini et al. 99. 2.. Recuperação de carotenoides totais A recuperação de carotenoides totais foi realizada conforme metodologias descritas anteriormente Fonseca et al. (, Michelon et al. (2 adaptada por Cipolatti (2. A biomassa foi centrifugada a 339 xg por 0 min, transferidas para placa de Petri e colocada em estufa de circulação de ar ( C por h Fonseca et al. (, posteriormente macerada em um grau, padronizada em peneira com mesh 5 e congeladas a C por h (CIPOLATTI et al., 2. Posterior à etapa de congelamento, a biomassa foi submetida a uma lise com o agente de ruptura dimetilsulfóxido - DMSO ((CH 3 2 SO, seguido por agitação em vórtex durante minuto, em intervalos de 5 min, totalizando h (FONSECA et al.,. Após a ruptura foi adicionada acetona, seguido de centrifugação (339 xg por 0 min. O sobrenadante foi separado e foram realizadas sucessivas extrações até o branqueamento V., N o. 2, Ago/ Página
total da célula. Nas fases solventes, obtidas da centrifugação, foram adicionados de solução de NaCl % (p/v e éter de petróleo. Após a formação de duas fases foi coletado a fase polar e o excesso de água foi retirado com sulfato de sódio (Na 2 SO, originando os extratos carotenogênicos (MICHELON et al., 2. 2... Determinação de carotenoides totais A determinação da concentração de carotenoides totais nos extratos foi realizada em espectrofotômetro (Biospectro SP-2, China através do valor médio da máxima absorbância a nm (CABRAL et al., expresso em termos de seu carotenoide majoritário (βcaroteno em éter de petróleo com absortividade específica de equação Davies (97. CT A* V *0 % A cm *00* m amostra A = 92, utilizando a % cm ( Onde CT é concentração específica de carotenoides de totais (µg/g, A é absorvância, % V é volume (ml, m amostra e massa celular seca (g e A cm é absortividade específica. Para o cálculo da produção volumétrica de carotenoides totais (µg/l foi realizada uma conversão de unidades utilizando o resultado de concentração de carotenoides totais (µg/g e da concentração da biomassa (g/l. 2.9. Determinação da concentração de açúcares totais A concentração açúcares não redutores foi determinada através do método DNS (Miller, 959. 2.0. Análise estatística Para avaliação do desempenho substratos agroindustriais, as análises foram conduzidas em triplicata no ponto central, sendo os resultados analisados estatisticamente utilizando o software Statistica 7.0 (Startsoft. 3. RESULTADOS E DISCUSSÃO As respostas avaliadas foram os máximos valores alcançados na produção volumétrica de carotenoides (µg.l em cada ensaio, e neste mesmo tempo os respectivos valores alcançados na produção específica de carotenoides (µg.g, a biomassa (g.l, a produtividade (g.l.h e a relação C/N de cada meio. A Tabela apresenta a matriz do planejamento com os valores reais e codificados das variáveis em estudo, bem como suas respostas. Enquanto a Figura mostra o acompanhamento desta bioprodução de carotenoides, envolvendo a produção de carotenoide volumétrico (a, carotenoide especifico (b, produção celular (c, ph (d e açúcar redutor total (e para os ensaios do planejamento fatorial. Analisando a Tabela é possível verificar uma variação nas repostas, como a máxima produção volumétrica de carotenoides de 5, µg.l (ensaio a 0 µg.l (ensaio, máxima produção específica de 35 µg.g (ensaio a 99,0 µg.g (ensaio, concentração de V., N o. 2, Ago/ Página 2
biomassa de,2 g.l (ensaio a,7 g L (ensaio e a razão C/N dos meios de produção que apresentaram pequenas modificações de,55 (ensaio 3 a 9,2 (ensaio 2. A produtividade em carotenoides volumétricos variou de 0,922 g.l.h (ensaio a 3,3 g.l -.h (ensaio, a produtividade em carotenoides específicos de 0, µg.g.h (ensaio a 0,59 µg.g.h (ensaio e a produtividade em biomassa variando entre 0,02 g.l.h (ensaio a 0,039 g.l.h (ensaio. Em geral observa-se também que os máximos valores de carotenoides volumétricos, específicos e biomassa encontrados estão nos maiores níveis das concentrações do glicerol e AMM, demostra uma provável necessidade de ampliação da faixa de concentração para este substrato. Nota-se na Tabela que a condição do ensaio, formulada com 0 g.l de glicerol e com g.l de água de maceração de milho, apresentou uma relação C/N de,2, e resultou nas maiores respostas para bioprodução de carotenoides 0 µg.l (99,0 µg.g, em h de cultivo, a partir de,2 g.l de biomassa, apresentando produtividades em carotenoides de 3, µg.l.h (0, µg.g.h e produtividade em biomassa 0,039 g.l.h. O perfil de ph dos cultivos (Figura b de todos os ensaios para S. pararoseus apresentou um comportamento crescente ao longo das h de processo, já observado anteriormente por Otero ( e Cipolatti (2, para este mesmo micro-organismo em diferentes composições de meios formulados com estes coprodutos agroindustriais. Tabela DCCR 2² (valores reais e codificados para os meios agroindustriais com glicerol bruto e AMMM. Ensaios X X 2 Y Y 2 Y 3 Y Y 5 Y Y 7 5 ( ( 5, (h 35,00,2 7,2 0,922 0, 0, 2 0 (+ ( 23,9 (h,7,05 9,2,97 0,3 0,3 3 5 ( (+ 3,03 (h 35,,55,55 0,970 0,23 0,23 0 (+ (+ 0,5 (h 99,0,7,2 3,3 0,590 0,590 5 7,5 (0 (0 3,95 (h 59,2 5,3 7,93 2,07 0,35 0,35 7,5 (0 (0 39,3 (h 5,53 5,97 7,93 2,0 0,3 0,3 7 7,5 (0 (0 35,3 (h 57,70 5,99 7,93 2,059 0,33 0,33 5 ( ( 5, (h 35,00,2 7,2 0,922 0,02 0,02 9 0 (+ ( 23,9 (h,7,05 9,2,97 0,02 0,02 0 5 ( (+ 3,03 (h 35,,55,55 0,970 0,027 0,027 X =Melaço (g.l ; X 2 =Água de maceração de milho (g.l ; Y =Produção volumétrica (µg.l ; Y 2 =Produção específica (µg.g ; Y 3 =Biomassa (g.l ; Y =C/N (relação Carbono e nitrogênio no meio de cultivo; Y 5 =Produtividade em Carotenoides volumétricos. (µg.l.h e Y = Produtividade em carotenoides específicos (µg.l.h, Y 7 = Produtividade em Biomassa (g.l.h. Na literatura, alguns trabalhos relatam a utilização de diferentes substratos e condições de processos para bioprodução de carotenoides por Sporidiobolus pararoseus. Maldonade et al. (0, isolou e identificou a levedura Sporobolomyces roseus na qual realizou o cultivo em meio complexo comercial (YM onde a produção alcançou 237 µg.l em carotenoides com 3,3 g.l de biomassa. A utilização de meios complexos (fontes alternativas de nutrientes podem apresenta uma produção equivalente ou superior aos meios complexos comercias. As leveduras pigmentadas podem ser provenientes de várias fontes ambientais que podem ser cultivadas e purificadas. Vários meios de crescimento podem ser usados para isolar os diferentes tipos de leveduras produtoras de pigmentos. No entanto, devido ao elevado custo da utilização de meio sintético, há uma necessidade de desenvolver um novo processo de baixo custo para a produção de pigmentos. A utilização de fontes alternativas de nutrientes fornecem um meio rentável para reduzir custo de substratos. Nos achados de Manowattana et V., N o. 2, Ago/ Página 3
al. (2 compararam a produção de biopigmentos utilizando meio comercial suplementado com coproduto frente a um meio sintético, na qual a produção alcançada em carotenoides pela levedura S. pararoseus (TISTR523 foi de,55 mg.l com, g.l de biomassa, com 3 g.l de glicerol suplementado em meio BMP e para o meio comercial (YM uma produção de,7 mg.l com, g.l de biomassa, sendo as condições a 2 C, 0 rpm, 2 C por h e ph inicial de,0. O custo da produção para o meio composto com glicerol foi de,09 Baht.mg.L em contra partida ao meio sintético de 2,0 Baht.mg.L (baht é a moeda da Tailândia. Biomassa (g.l 7 5 3 2 0 0 2 2 3 72 9 0 Tempo (h c µg.g Carotenoides Específicos ( 00 90 0 70 0 50 0 0 3 72 9 Tempo (h a 2 3 5 7 9 0 2 3 5 7 9 0 Carotenoides Volumétricos (µg.l 5,0 0 2 2 3 72 9 Tempo (h Figura Cinética da evolução do crescimento celular (a, ph (b, produção específica (c, produção volumétrico (d por S. pararoseus ao longo de h, a C e 0 rpm, no delineamento central composto rotacional 2² com meios de cultivo contendo glicerol bruto e água de maceração de milho. Para a construção dos modelos empíricos foram calculados os coeficientes de regressão e realizada ANOVA (Tabela 2. Com a razão Fcalculado/Ftabelado superior a 3 (Rodrigues e Iemma, foi possível obter modelos preditivos e significativos para todas as respostas em função das variáveis melaço e água de maceração de milho (equações 02 a 07, possibilitando a construção das superfícies de contorno mostradas na Figura 2. Carotenoides volumétricos (µg.l = 32,57 + 5,.GLI + 9,3*AMM + 7,. GLI. AMM (2 Carotenoide Especifico (µg.l = 5,0 +,75.GLI + 3,2.AMM + 2,.GLI.AMM (3 Biomassa (g.l = 5, + 0,9.GLI ( C/N = 7,9 +,03.GLI 0,.AMM - 0,07.GLI.AMM (5 Vol. (µg.l.h =,9 + 0,972.GLI + 0,7.AMM + 0,50.GLI.AMM ( ph 9,5 9,0,5,0 7,5 7,0,5,0 5,5 700 00 500 00 0 0 00 0 3 72 9 Tempo (h b d 2 3 5 7 9 0 2 3 5 7 9 0 V., N o. 2, Ago/ Página
Esp. (µg.l.h = 0, + 0,2.GLI + 0,0 AMM+ 0,05.GLI.AMM (7 Bio. (g.l.h = 0,03 + 0,007GLI ( Onde: GLI: glicerol bruto, AMM: água maceração de milho. Tabela 2 Análise de variância para o delineamento composto central rotacional 2 2 Soma Quadrática Graus de liberdade Média quadrática F calculado Fonte de variação PVC PEC PVC PEC PVC PEC PVC PEC Regressão 553, 2773,2 3 3 5,3 92,0 3,5 7,55 Resíduo 2, 37, 3 3,27 2, Total 5092,2, Soma Quadrática Graus de liberdade Média quadrática F calculado Fonte de variação Bio. CN. Bio. C/N Bio. C/N Bio. C/N Regressão 3, 5,3 3 3,,9 2,3,35 Resíduo 0, 0,07 5 3 0,3 0,0057 Total 3,0 5,3 Soma Quadrática Graus de liberdade Média quadrática F calculado Fonte de variação Vol. Esp. Vol. Esp. Vol. Esp. Vol. Esp. Regressão 5,9 0,093 3 3,3 0,032,7 0 Resíduo 0,0 0,00072 3 3 0,0,57.0 - Total 5,53 0,090 Soma Quadrática Graus de liberdade Média quadrática F calculado Fonte de variação Bio. Bio Bio. Pro. Bio. Regressão 0,0009 0,00009,7 Resíduo 0,0000 5 0,000003 Total 0,000 PVC = Produção volumétrica de carotenoides; PEC = produção específica de carotenoides; Bio = Biomassa; C/N = Relação carbono e nitrogênio; Vol. = Produtividade em carotenoides volumétricos; Esp. = Produtividade em carotenoides específicos e Bio. = Produtividade em biomassa. PVC (R: 0,99, F 3; 3; 0,95 = 9,2; PEC (R: 0,99, F 3; 7; 0,95 = 9,2, Bio (R: 0,9, F ; 5; 0,95 =,, C/N. (R: 0,99, F 3; 3; 0,95 = 9,2, Vol (R: 0,99, F 3; 3; 0,95 = 9,2, Esp. (R: 0,99, F 3; 3; 0,95 = 9,2 e Bio. (R: 0,93, F ; 5; 0,95 = 5,9. Com as curvas de contorno expostas nas Figuras 2a e 2b verifica-se que para obter elevada produção volumétrica e específica de carotenoides é possível trabalhar na faixa 9 a 0 g.l de glicerol combinado com 2 a g.l de água de maceração de milho. Na utilização de 9,5 a 0 g.l de glicerol bruto associado a qualquer variação de a g.l de água de maceração de milho, é possível obter maiores concentrações de biomassa (Figura 2c. Para aumentar a relação carbono e nitrogênio do meio de cultivo deve-se trabalhar com glicerol na faixa de 9,5 a 0 g.l e baixa concentração de água de maceração de milho a 22 g.l (Figura 2d. No entanto, vale ressaltar que as maiores produções de carotenoides e produtividades do processo de obtenção de carotenoides não foram observadas V., N o. 2, Ago/ Página 5
nestas maiores relações C/N (aproximadamente 0 e sim em relações C/N intermediárias ( aproximadamente onde as maiores produção de carotenoides foram de 0,5 µg.l (99,0 µg.g tendo as produtividades de 3,3 µg.l.h (0,59 µg.l.h a b c 5 7,5 0 Glicerol (g.l 0 50 0 0 5 7,5 0 Glicerol (g.l 2,3 0 70 0 50 0 5 7,5 0 Glicerol (g.l,, 5, 5,2,, d e f 5 7,5 0 Glicerol (g.l 0,5 9,,75 5 7,5 0 Glicerol (g.l,75 3,5 2, 5 7,5 0 Glicerol (g.l 0,55 0,5 0,35 0, 0,5 g 5 7,5 0 Glicerol (g.l Figura 2 Curva de contorno para as respostas produção volumétrica (a, produção específica (b, biomassa (c relação C/N (d, produtividade em carotenoides volumétricos (e, produtividade em carotenoides específicos (f e produtividade em biomassa (g. AMM = água de maceração de milho. Quando utilizado água de maceração de milho na faixa 2 a g.l juntamente com glicerol bruto entre 9,5 a 0 g.l é possível obter as maiores produtividades volumétricas (Figura 2e e específicas de carotenoides (Figura 2f. Para ter elevada produtividade em biomassa deve-se trabalhar com glicerol na faixa de 9,5 a 0 g.l e água de maceração de milho entre a g.l (Figura 2g. Na Figura 2 analisando todas as superfícies de contorno percebe-se que o aumento da concentração dos substratos pode favorecer um incremento na produção e produtividade em carotenoides. Portanto, um novo sequenciamento do planejamento experimental será realizado aumentando a concentração da AMM e glicerol bruto. 0,0 0,03 0,03 0,03 0,032 0,03 0,02 0,02. AGRADECIMENTOS Os autores agradecem ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq e a Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES Brasil. V., N o. 2, Ago/ Página
5. CONCLUSÃO A utilização de 9 a 0 g.l de glicerol na combinação com 2 a g.l de água de maceração de milho foi obtido uma na produção de carotenoides de 7% (0 µg.l, se comparado com o menor resultado experimental, além da concentração celular de, g.l, uma produtividade em carotenoides de,7 g.l.h (0,55 µg.g.h e produtividade em biomassa 0,0 g.l.h. Dessa forma demostrando o potencial da Sporidiobolus pararoseus como fonte de carotenoides microbianos utilizando coprodutos agroindustriais.. REFERÊNCIAS AMAR, E. C.; KIRON, V; AKUTSU, T.; SATOH, S.; WATANABE, T. Resistance of rainbow trout Oncorhynchus mykiss to infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV experimental infection following ingestion of natural and synthetic carotenoids. Aquaculture, v. 3, n., p. 55, 2 Association of Official Analytical Chemists AOAC.; Official methods of analysis of the Association of the Analytical Chemists, thed., AOAC International: Washington, 995. AKSU¹, Z.; EREN, A. T. Carotenoids production by the yeast Rhodotorula mucilaginosa: Use of agricultural wastes as a carbon source. Process Biochemistry, v. 0, n. 9, p. 295-299, 05. CABRAL, M. M. S.; CENCE, K.; ZENI, J.; TSAI, S. M.; DURRER, A.; FOLTRAN, L. L.; TONIAZZO, G.; VALDUGA, E.; TREICHEL, H. Carotenoids production from a newly isolated Sporidiobolus pararoseus strain by submerged fermentation. European Food Research and Technology, v. 233, n., p. 59,. Cipolatti E. P. 2. Carotenoides microbianos: Avaliação da atividade antioxidante e aproveitamento de coprodutos agroindustriais. Rio Grande RS, pag. Dissertação (Pós- Graduação em Engenharia e Ciência de Alimentos. Escola de Química e Alimentos, Universidade Federal do Rio Grande (FURG. Coelho A. R. 05. Controle de penicillium expansum/biodegradação de patulina: perfil cromatográfico de composto bioativo de leveduras killer visando aplicação pós-colheita. Londrina PR, 22pag. Tese (Pós-Graduação em Ciências de Alimento. Universidade Estadual de Londrina (UEL. FONSECA R. A. S., RAFAEL R. S., KALIL S. J., BURKERT A. V., BURKERT J. F. M. Different cell disruption methods for astaxanthin recovery by Phaffia rhodozyma. African Journal of Biotechnology, v. 0, n. 7, p. 57,. FRENGOVA, G. I.; BESHKOVA, D. M. Carotenoids from Rhodotorula and Phaffia: yeasts of biotechnological importance. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, v. 3, p., 09. KUSDIYANTINI E., GAUDIN P., GOMA G., BLANC P. J. Growth kinetics and astaxanthin production of Phaffia rhodozyma on glycerol as a carbon source during batch fermentation. Biotechnology Letters, v., p. 929-93, 99. V., N o. 2, Ago/ Página 7
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