Panbio Dengue IgG Indirect ELISA

Transcrição

1 Not for Sale or Distribution in the United States of America Panbio Dengue IgG Indirect ELISA Cat. No. 01PE30 English

2 English INTENDED USE The Panbio Dengue IgG Indirect ELISA is for the qualitative detection of IgG antibodies to dengue antigen serotypes (1, 2, 3 and 4) in serum, as an aid in the clinical laboratory diagnosis of patients with clinical symptoms and past exposure consistent with dengue fever. INTRODUCTION The dengue group of arboviruses is transmitted by mosquito, principally Aedes aegypti and Aedes albopictus. Dengue infection, associated with febrile disease, is characterised by the sudden onset of fever, intense headache, myalgia, arthralgia and rash. Severe complications of dengue infection include dengue haemorrhagic fever and dengue shock syndrome. An increased prevalence of such complications is associated with secondary infection with a different dengue serotype. Detection of specific antibody of the IgG class to the four dengue serotypes, by ELISA, is valuable for the diagnosis of previous exposure to dengue. The presence of rising levels of IgG in paired sera is suggestive of active dengue infection. Traditionally, haemagglutinationinhibition (HAI) titres have been used to classify infections as primary or secondary. The current definition depends upon an assay of paired serum specimens separated in time by at least 7 days, though any acute specimen with a HAI titre 1:2560 is defined as coming from a patient with secondary flavivirus infection 1. PRINCIPLE Serum antibodies, when present, combine with a combination of the dengue antigens attached to the polystyrene surface of the microwell test strips. Residual serum is removed by washing and peroxidase conjugated anti-human IgG is added. The microwells are washed and a colourless substrate system, tetramethylbenzidine / hydrogen peroxide (TMB Chromogen), is added. The substrate is hydrolysed by the enzyme and the chromogen changes to a blue colour. After stopping the reaction with acid, the TMB becomes yellow. Colour development is indicative of the presence of dengue IgG antibodies in the test sample. MATERIALS PROVIDED 1. Dengue Antigen (Serotypes 1, 2, 3, 4) Coated Microwells - (12x8 wells). Ready for use. Unused microwells should be resealed immediately and stored in the presence of the desiccant. Stable at 2-8ºC until expiry. 2. Wash Buffer (20x) - One bottle, 60 ml of 20x concentrate of phosphate buffered saline (ph ) with Tween 20 and preservative (0.1% Proclin ). Crystallisation may occur at low temperatures. To correct, incubate at 37ºC until clear. Mix well. Dilute one part Wash Buffer with 19 parts of distilled water. Diluted buffer may be stored for one week 2-25ºC. 3. Sample Diluent - Two bottles, 50 ml (Pink). Ready for use. Tris buffered saline (ph ) with preservatives (0.1% Proclin ) and additives. Stable at 2-8ºC until expiry. 4. HRP Conjugated Anti-human IgG - One bottle, 15 ml (Green). Ready for use. Horseradish peroxidase conjugated goat antihuman IgG with preservative (0.1% Proclin ) and protein stabilisers. Stable at 2-8ºC until expiry. 5. TMB Chromogen (TMB) - one bottle, 15 ml. Ready for use. A mixture of 3,3,5,5' b-tetramethylbenzidine and hydrogen peroxide in a citric-acid citrate buffer (ph ). Stable at 2-8ºC until expiry. 6. Positive Control - One Red-capped vial, 200 µl human serum

3 (contains 0.1% sodium azide and 0.005% gentamycin sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry. 7. Calibrator - One Yellow-capped vial, 400 µl human serum (contains 0.1% sodium azide and 0.005% gentamycin sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry. 8. Negative Control - One Green-capped vial, 200 µl human serum (contains 0.1% sodium azide and 0.005% gentamycin sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry. 9. Stop Solution One Red-capped bottle, 15 ml. Ready for use. 1M Phosphoric acid. Stable at 2-25ºC until expiry Proclin 300 is a registered trademark of Rohm and Haas Company. ADDITIONAL MATERIALS REQUIRED BUT NOT PROVIDED 1. Accurate adjustable micropipettors with disposable pipette tips ( µl capacity) 2. Deionised water 3. Microplate washing system 4. Microplate reader with 450 nm filter 5. Timer 6. Graduated cylinder 7. Flask 8. Test tubes or microtitre plate for serum dilutions PRECAUTIONS FOR IN VITRO DIAGNOSTIC USE 1. All human source material used in the preparation of controls has been tested for antibody to human immunodeficiency virus 1 & 2 (HIV 1 & 2), hepatitis C (HCV) as well as hepatitis B surface antigen and found to be negative. However no test method can offer complete assurance and all human controls and antigencoated wells should be handled as potentially infectious material. The Centers for Disease Control and Prevention and the National Institutes of Health recommend that potentially infectious agents be handled at the Biosafety Level This test should be performed on serum only. The use of whole blood, plasma or other specimen matrix has not been established. 3. Icteric or lipaemic sera, or sera exhibiting haemolysis or microbial growth should not be used. 4. Do not heat-inactivate sera. 5. All reagents must be equilibrated to room temperature (20-25ºC) before commencing the assay. The assay will be affected by temperature changes. Do not remove microwells from closed bag until they have reached room temperature (20-25ºC). 6. Dispense reagents directly from bottles using clean pipette tips. Transferring reagents may result in contamination. 7. Unused microwells should be resealed immediately and stored in the presence of desiccant. Failure to do this may cause erroneous results. 8. Substrate System: (a) As TMB is susceptible to contamination from metal ions, do not allow the substrate system to come into contact with metal surfaces. (b) Avoid prolonged exposure to direct light. (c) Some detergents may interfere with the performance of the TMB. English - 3 -

4 (d) The TMB may have a faint blue colour. This will not affect the activity of the substrate or the results of the assay. FOR FURTHER SAFETY INFORMATION PLEASE REFER TO THE SAFETY DATA SHEETS (SDS) AVAILABLE FROM STANDARD DIAGNOSTICS, INC. English 9. Some kit components contain sodium azide, which may react with lead or copper plumbing to form highly explosive metal azide compounds. When disposing of these reagents through plumbing fixtures, flush with a large volume of water to prevent azide build-up in drains. 10. Sodium azide inhibits conjugate activity. Clean pipette tips must be used for the conjugate addition so that sodium azide is not carried over from other reagents. 11. Hazard information for the components under applicable European Community (EC) Directives is as follows: Components Hazard Nature Wash Buffer 20x Concentrate Irritant R36/38, R43 TMB Chromogen Irritant R36/37/38 Stop Solution Irritant R36/38 Sample Diluent Irritant R36/38, R43 Dengue IgG Indirect Anti-Human Irritant Xi Irritant R36/38, R43 IgG HRP Conjugate Dengue IgG Indirect Antigen Coated Microwells Not Considered Hazardous Dengue IgG Indirect Positive Control Harmful R22, R32, R43 Dengue IgG Indirect Calibrator Harmful R22, R32, R43 Dengue IgG Indirect Negative Control Harmful R22, R32, R43 Harmful Xn SPECIMEN COLLECTION AND PREPARATION Blood obtained by venipuncture should be left to clot at room temperature (20-25ºC) and then centrifuged according to the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), (Approved Standard - Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, H3). The serum should be separated as soon as possible and refrigerated (2-8ºC) or stored frozen ( -20ºC) if not tested within two days. Selfdefrosting freezers are not recommended for storage. The use of icteric sera or sera exhibiting haemolysis, lipaemia or microbial growth is not recommended. The CLSI provides recommendations for storing blood specimens, (Approved Standard - Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens, H18). TEST PROCEDURE Note: Ensure all reagents are equilibrated to room temperature (20-25ºC) before commencing assay. Performing the assay outside the time and temperature ranges provided may produce invalid results. Assays not falling within the established time and temperature ranges must be repeated. ELISA PROCEDURE 1. Remove the required number of microwells from the foil sachet and insert into strip holder. Five microwells are required for Negative Control, Positive Control and Calibrator in triplicate. Ensure the remaining unused microwells are sealed tightly in the - 4 -

5 foil sachet. 2. Using suitable test tubes or a microtitre plate, dilute N P CAL CAL the Positive Control (P), Negative Control (N), Calibrator (CAL), and patient samples. (a) To 10 µl serum add 1000 µl of Sample Diluent. Mix well. Alternatively, CAL (b) To 10 µl serum add 90 µl of Sample Diluent. Take 20 µl of the diluted serum and add 180 µl Sample Diluent. Mix well Pipette 100 µl of diluted patient sample, Controls and Calibrator into their respective microwells Cover plate and incubate for 30 minutes at 37ºC ± 1ºC. 5. Wash six (6) times with diluted Wash Buffer (refer to washing procedure). 6. Pipette 100 µl HRP Conjugated Anti-human IgG to each well. 7. Cover plate and incubate for 30 minutes at 37ºC ± 1ºC. 8. Wash six (6) times with diluted Wash Buffer (refer to washing procedure). 9. Pipette 100 µl TMB into each well. 10. Incubate 10 minutes at room temperature (20-25ºC), timing from the first addition. A blue colour will develop. 11. Pipette 100 µl of Stop Solution into all wells in the same sequence and timing as the TMB addition. Mix well. The blue colour will change to yellow. 12. Within 30 minutes read the absorbance of each well at a wavelength of 450 nm with a reference filter of nm Note: If a dual wavelength spectrophotometer is available, set the reference filter between nm. Reading the microwells at 450 nm without a reference filter may result in higher absorbance values due to background. WASHING PROCEDURE Efficient washing to remove uncomplexed sample or components is a critical requirement of the ELISA procedure. A. Automated Plate Washer (1) Completely aspirate all wells. (2) Fill all wells to rim (350 µl) during wash cycle. (3) On completion of six (6) washes, invert plate and tap firmly on absorbent paper towel to ensure all Wash Buffer is removed. (4) Automated plate washers must be well maintained to ensure efficient washing. Manufacturer s cleaning instructions should be followed at all times. B. Manual Washing (1) Discard contents of plate in appropriate waste container. (2) Fill wells with Wash Buffer using a suitable squeeze bottle. Avoid bubbling of Wash Buffer as this may reduce wash efficiency. Discard Wash Buffer from wells immediately. (3) Refill wells with Wash Buffer and discard immediately. (4) Repeat step (3) another four times. This will make a total of six (6) washes with Wash Buffer. (5) After the final wash, discard contents of wells and tap the plate on absorbent paper towel to ensure all Wash Buffer is removed. English - 5 -

6 CALCULATIONS IMPORTANT NOTE: The calibration factor is batch specific and detailed in the specification sheet. Obtain the calibration factor value before commencing calculations. 1. Calculate the average absorbance of the triplicates of the Calibrator and multiply by the calibration factor. This is the Cutoff Value. 2. An index value can be calculated by dividing the sample absorbance by the Cut-off Value (calculated in step (1) above). Alternatively, 3. Panbio Units can be calculated by multiplying the index value (calculated in step (2) above) by 10. Index Value = Sample Absorbance Cut-off Value Example : Sample A Absorbance = Sample B Absorbance = Mean absorbance of Calibrator = Calibration Factor = 0.62 Cut-off Value = x 0.62 = Sample A Sample B 1.91 X 10 = 19.1 Panbio Units 0.14 X 10 = 1.4 Panbio Units QUALITY CONTROL Each kit contains Calibrator, Positive and Negative Control. Acceptable values for these are found on the accompanying specification sheet. The Negative and Positive Controls are intended to monitor for substantial reagent failure. The Positive Control will not ensure precision at the assay cut-off. The test is invalid and should be repeated if the absorbance readings of either the Controls or the Calibrator do not meet the specifications. If the test is invalid, patient results cannot be reported. Quality Control (QC) requirements must be performed in conformance with local, state, and/or federal regulations or accreditation requirements and your laboratory's standard QC procedures. It is recommended that the user refer to CLSI C24-A and 42 CFR for guidance on appropriate QC practices. INTERPRETATION OF RESULTS INDEX PANBIO UNITS RESULT <0.9 <9 Negative Equivocal >1.1 >11 Positive English Sample A (0.949/0.497) = 1.91 Index value Sample B (0.070/0.497) = 0.14 Index value Panbio Units = Index Value X 10 RESULT Negative INTERPRETATION No evidence of a past dengue infection. If a recent dengue infection is suspected this can be confirmed by testing a further specimen 7-14 days later

7 RESULT Equivocal INTERPRETATION Suggest samples should be re-tested. If specimen remains equivocal following repeat testing then the specimen may be tested by an alternate method or another patient specimen obtained and tested. Presence of detectable IgG antibodies indicates evidence of past or recent dengue infection. In areas where multiple Positive flaviviruses co-circulate the presence of crossreactive flavivirus antibodies should be considered. The following is a recommended method for reporting the results obtained: The following results were obtained with the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Values obtained with different methods may not be used interchangeably. The magnitude of the measured result, above the cut-off, is not indicative of the total amount of antibody present. The result should be reported as positive, negative or equivocal and not as a numerical value. EXPECTED VALUES AND TEST LIMITATIONS 1. The clinical diagnosis must be interpreted with clinical signs and symptoms of the patient. The results from this kit are not by themselves diagnostic and should be considered in association with other clinical data and patient symptoms. 2. The positive predictive value depends on the likelihood of the virus being present. Testing should only be performed on patients with clinical symptoms or when exposure is suspected Serological cross-reactivity across the flavivirus group (dengue 1, dengue 2, dengue 3, dengue 4, Japanese encephalitis, West Nile virus, Murray Valley encephalitis, etc) is common at the level of IgG 3,4,5. Trials in South East Asia have shown that 90% of patients with Japanese encephalitis (n=20) had an IgG Indirect result of >10 Panbio Units. 4. The cut-off has been determined using a local population. Population seroepidemiology may vary over time in different geographical regions. Consequently, the cut-off may require adjustment based on local studies. 5. The performance characteristics have not been established for visual result determination. 6. All sera indicating infection by the ELISA screening test should be referred to a reference laboratory for confirmation of positivity and epidemiological recording. PERFORMANCE CHARACTERISTICS 386 retrospective sera characterised by Haemagglutination Inhibition (HAI) and ELISA methods were tested on the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. The sera included samples from the following groups: 108 seronegative samples, 84 primary samples, 94 secondary samples and 100 endemic samples. These sera were tested on the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA and the results were compared relative to the dengue serological status to determine the sensitivity, specificity, and agreement of the assay. The data is summarised in Table sera were characterised as primary and secondary dengue by a university in Malaysia using a HAI, based on WHO criteria. The panel consisted of 23 primary dengue and 92 secondary dengue samples. The results are summarised in Table 2 English

8 English Table 1 Serological Sensitivity and Specificity of Panbio ELISA versus Dengue Status Panbio ELISA Dengue Status Positive Equivocal a Negative Total Seronegative Primary Secondary Endemic Total Serological Sensitivity (Secondary) Serological Specificity (Endemic) Serological Specificity (Primary) Serological Specificity (Negatives) Serological Agreement = 92/94 = 62/100 = 28/84 = 108/108 = 290/386 = 97.9% = 62.0% = 33.3% = 100.0% = 75.1% 95% CI* % % % % % a Retesting of equivocal samples was not conducted, as the samples were unavailable. * Confidence Interval Table 2 Serological Diagnosis of Panbio ELISA Positivity versus Dengue Status Panbio ELISA Dengue Status (HAI) Equivocal Positive Negative Total Primary Secondary Total % CI* Serological Sensitivity (Primary) = 20/23 = 87.0% % Serological Specificity (Secondary) = 92/92 = 100.0% % * Confidence Interval REPRODUCIBILITY The reproducibility of the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA kit was determined by testing 8 sera three times each on three Panbio kit batch numbers on three different days. Within-run, between day, between batch and total precision were estimated by analysis of variance (ANOVA Type II) and are presented in Table 3. Table 3 Panbio Dengue IgG Indirect Study Precision Measures (Using Index Value*) Between Within Between Day Total Batch Sample n *Mean *SD CV *SD CV *SD CV *SD CV #1 #2 #3 #4 # % 4.5% 6.0% 6.1% 8.9% % 1.9% 0.0% 2.3% 3.9% % 14.8% 13.0% 19.3% 8.3% % 13.2% 12.3% 17.3% 11.7% - 8 -

9 Within Between Day Between Batch Total Sample n *Mean *SD CV *SD CV *SD CV *SD CV #6 #7 # % 20.8% 6.4% % 11.9% 10.7% % 0.0% 5.8% % % % All values are calculated from Index values (Cut-off using OD) SD = Standard Deviation; CV = Coefficient of Variation Note: Standard Deviation results have been rounded to two decimal places for tabulation purposes. * index value is calculated by dividing the sample absorbance by the cut-off value. CROSS-REACTIVITY A panel of 63 specimens from patients with confirmed diseases other than dengue fever was tested to establish the analytical specificity of the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. The specimens were from patients with diseases that have the potential for cross-reactivity. Each of the specimens included in the study was characterised with respect to disease diagnosis prior to analysis with the Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Refer to Table 4 for a summary of the results. Disease Type Total Specimens Positive Result Rubella 8 (0/8) Barmah Forest virus 10 (0/10) Scrub typhus 10 (0/10) Anti-nuclear antibody 10 (0/10) Rheumatoid factor 10 (0/10) Ross River virus 10 (0/10) West Nile virus 5 (2/5) Total 63 (2/63) Date issued : PE30-06-En-1 Table 4 Cross-reactivity Data Panbio Dengue IgG Indirect ELISA English - 9 -

10 - 10 -

11 Non destiné à la vente ou à la distribution aux États-Unis Panbio Dengue IgG Indirect ELISA Cat. No. 01PE30 Français

12 French INDICATION Le kit Panbio Dengue IgG Indirect ELISA est destiné à la détection qualitative d anticorps IgG dirigés les antigènes de la dengue (sérotypes 1, 2, 3 et 4) dans le sérum et contribue au diagnostic clinique en laboratoire des patients présentant des symptômes cliniques et une exposition antérieure caractéristiques de la dengue. INTRODUCTION Le groupe d arbovirus de la dengue est transmis par le moustique, principalement de type Aedes aegypti et Aedes albopictus. Associée à une maladie fébrile, l infection par le virus de la dengue se caractérise par une poussée de fièvre soudaine, d intenses maux de tête, des douleurs musculaires et articulaires, ainsi qu une éruption cutanée. Parmi les complications graves de la dengue figurent la dengue hémorragique et la dengue avec syndrome de choc. L augmentation de la prévalence de ces complications est associée à une infection secondaire par un autre sérotype de la dengue. La détection d anticorps de classe IgG spécifiques dirigés contre les quatre sérotypes de la dengue par le test ELISA est très utile pour diagnostiquer une exposition préalable au virus de la dengue. Une élévation des niveaux d IgG dans les sérums appariés suggère la présence d une infection active par le virus de la dengue. On utilise généralement un test d inhibition de l hémagglutination (IHA) pour distinguer les infections primaires des infections secondaires. La définition actuelle dépend de l analyse d échantillons sériques appariés, espacés d une période de sept jours minimum, avec un échantillon prélevé en phase aigüe contenant un titre IHA supérieur à 1:2 560, défini comme provenant d un patient présentant une infection secondaire par le flavivirus 1. PRINCIPE Lorsqu ils sont présents, les anticorps sériques se lient à une combinaison d antigènes de la dengue dont est recouverte la surface en polystyrène des bandes de micropuits. Le sérum résiduel est éliminé par lavage, puis des anticorps IgG anti-humains conjugués à la peroxydase sont ajoutés. Les micropuits sont lavés et un substrat incolore, composé de tétraméthylbenzidine/peroxyde d hydrogène (chromogène TMB), est ajouté. Le substrat est hydrolysé par l enzyme et le chromogène devient bleu. Une fois la réaction stoppée par l acide, le chromogène TMB devient jaune. Le changement de couleur indique la présence des anticorps IgG anti-dengue dans l échantillon testé. MATÉRIEL FOURNI 1. Micropuits recouverts d antigènes de la dengue (sérotypes 1, 2, 3, 4) - (12 x 8 puits). Prêts à l emploi. Les micropuits inutilisés doivent être immédiatement rescellés et conservés avec l agent déshydratant. Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 2. Tampon de lavage (20x) - Un flacon de 60 ml de tampon phosphate salin concentré 20x (ph 7,2-7,6), contenant du Tween 20 et un conservateur (0,1 % de Proclin ). Une cristallisation peut se produire à basse température. Pour corriger cet effet, incuber à 37ºC jusqu à éclaircissement de la solution. Bien mélanger. Diluer un volume de tampon de lavage avec 19 volumes d eau distillée. Le tampon dilué peut être conservé pendant une semaine à une température comprise entre 2 et 25ºC. 3. Diluant d échantillon - Deux flacons de 50 ml (rose). Prêt à

13 l emploi. Solution saline tamponnée au tris (ph 7,2-7,6) avec conservateurs (0,1% de Proclin ) et additifs. Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 4. IgG anti-humain conjugués à la HRP - Un flacon de 15 ml (vert). Prêts à l emploi. IgG anti-humains de chèvre conjugués à la peroxydase de raifort avec conservateur (0,1% de Proclin ) et stabilisateurs de protéines. Stable entre 2 et 8 ºC jusqu à la date de péremption. 5. Chromogène TMB (TMB) - Un flacon de 15 ml. Prêt à l emploi. Mélange de 3,3,5,5 -tétraméthylbenzidine et de peroxyde d hydrogène dans un tampon citrate-acide citrique (ph 3,5-3,8). Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 6. Contrôle positif - Un flacon avec bouchon rouge, contenant 200 μl de sérum humain (contient 0,1 % d azoture de sodium et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 7. Étalon - Un flacon avec bouchon jaune, contenant 400 μl de sérum humain (contient 0,1% d azoture de sodium et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 8. Contrôle négatif - Un flacon avec bouchon vert, contenant 200 μl de sérum humain (contient 0,1% d azoture de sodium et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8ºC jusqu à la date de péremption. 9. Solution d arrêt Un flacon avec bouchon rouge de 15 ml. Prête à l emploi. Acide phosphorique 1 M. Stable entre 2 et 25ºC jusqu à la date de péremption. Proclin 300 est une marque déposée de Rohm and Haas Company. MATÉRIEL SUPPLÉMENTAIRE NÉCESSAIRE MAIS NON FOURNI 1. Micropipettes réglables de précision avec embouts jetables (capacité de 5 à μl) 2. Eau déionisée 3. Système de lavage de microplaque 4. Lecteur de microplaque avec filtre de 450 nm 5. Minuteur 6. Cylindre gradué 7. Flacon 8. Tubes à essai ou plaque de microtitration pour les dilutions de sérum MISES EN GARDE POUR USAGE DIAGNOSTIC IN VITRO 1. Toutes les matières d origine humaine utilisées dans la préparation des contrôles ont été soumises au dépistage des anticorps dirigés contre les virus de l immunodéficience humaine 1 et 2 (VIH 1 et 2), de l hépatite C (VHC) ainsi que l antigène de surface de l hépatite B. Tous les résultats se sont révélés négatifs. Néanmoins, aucune méthode de test n est véritablement fiable à 100 % ; aussi tous les puits recouverts d antigènes et contrôles humains doivent être considérés comme des produits potentiellement infectieux. Aux États-Unis, les Centres de contrôle et de prévention des maladies et les Instituts nationaux de la santé recommandent de manipuler les agents potentiellement infectieux en appliquant les mesures de biosécurité de niveau L analyse doit être effectuée sur du sérum uniquement. L utilisation French

14 French de sang total, de plasma ou d une autre matrice d échantillon n a pas été testée. 3. Ne pas utiliser de sérum ictérique, lipémique, hémolysé ou présentant une prolifération microbienne. 4. Ne pas inactiver le sérum à la chaleur. 5. Tous les réactifs doivent être stabilisés à température ambiante (20 à 25ºC) avant le début du test. Les variations de température affectent le test. Ne pas retirer les micropuits de leur pochette fermée avant qu ils aient atteint la température ambiante (20 à 25ºC). 6. Distribuer les réactifs en les prélevant directement dans les flacons à l aide d embouts de pipette propres. Le transfert des réactifs peut entraîner une contamination. 7. Les micropuits inutilisés doivent être immédiatement rescellés et conservés avec un agent déshydratant. Le non-respect de cette consigne peut fausser les résultats. 8. Substrat : (a) Le chromogène TMB pouvant être contaminé par les ions métalliques, ne pas mettre le substrat en contact avec des surfaces métalliques. (b) Éviter toute exposition prolongée à la lumière directe. (c) Certains détergents peuvent altérer les performances du TMB. (d) Le TMB peut être de couleur bleu pâle. Cette coloration n affecte pas l activité du substrat, ni les résultats du test. 9. Certains composants du kit contiennent de l azoture de sodium qui peut réagir avec les canalisations en cuivre ou en plomb pour former des composés d azotures métalliques hautement explosifs. Lors de la mise au rebut de ces réactifs dans les éviers, rincer abondamment à l eau afin d éviter toute accumulation d azoture dans les canalisations. 10. L azoture de sodium inhibe l activité du conjugué. Utiliser des embouts de pipette propres pour ajouter du conjugué afin d éviter toute contamination par l azoture de sodium présent dans d autres réactifs. 11. Conformément aux directives de la Communauté européenne (CE) en vigueur, les risques associés aux composants sont signalés comme suit : Composants Nature du risque Tampon de lavage concentré 20x Chromogène TMB Irritant R36/38, R43 Irritant R36/37/38 Solution d arrêt Irritant R36/38 Diluant d échantillon IgG anti-humains conjugués à la HRP de Dengue IgG Indirect Micropuits recouverts d antigènes de Dengue IgG Indirect Contrôle positif de Dengue IgG Indirect Étalon nocif de Dengue IgG Indirect Contrôle négatif de Dengue IgG Indirect Irritant R36/38, R43 Irritant R36/38, R43 Considéré comme n étant pas dangereux Nocif R22, R32, R43 Nocif R22, R32, R43 Nocif R22, R32, R43 Irritant Xi Nocif Xn

15 POUR PLUS D INFORMATIONS SUR LA SÉCURITÉ, CONSULTER LES FICHES DE DONNÉES DE SÉCURITÉ DISPONIBLES AUPRÈS DE STANDARD DIAGNOSTICS, INC. PRÉLÈVEMENT ET PRÉPARATION DES ÉCHANTILLONS Laisser le sang obtenu par ponction veineuse coaguler à température ambiante (20 à 25ºC). Le centrifuger ensuite selon la procédure édictée par le Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) (Approved Standard - Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, H3). Le sérum doit être séparé dès que possible et réfrigéré (entre 2 et 8ºC) ou congelé ( -20ºC) s il n est pas analysé dans les deux jours. Les congélateurs à dégivrage automatique sont déconseillés pour la conservation. L utilisation de sérum ictérique, hémolysé, lipémique ou présentant une prolifération microbienne est déconseillée. Le CLSI a émis des recommandations pour la conservation des échantillons sanguins (Approved Standard - Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens, H18). PROCÉDURE DU TEST Remarque: s assurer que tous les réactifs sont stabilisés à température ambiante (entre 20 et 25ºC) avant de commencer le test. Tout test réalisé en dehors des plages limites de temps et de température peut donner lieu à des résultats non valides. Les tests réalisés en dehors des plages limites de temps et de température doivent être recommencés. PROCÉDURE ELISA 1. Extraire le nombre requis de micropuits du sachet N P 4 5 en aluminium et les insérer dans le support de bandelettes. Cinq micropuits sont nécessaires pour le CAL CAL CAL contrôle négatif, le contrôle positif et l étalon en trois exemplaires. Veiller à ce que le sachet en aluminium contenant les micropuits inutilisés soit bien refermé. Dans des tubes à essai (ou une plaque de microtitration) appropriés, diluer le contrôle positif (P), le contrôle négatif (N), l étalon (CAL) et les échantillons patients. (a) Pour 10 μl de sérum, ajouter 1000 μl de diluant d échantillon. Bien mélanger. Autre méthode : (b) Pour 10 μl de sérum, ajouter 90 μl de diluant d échantillon. Prélever 20 µl du sérum dilué et ajouter 180 µl de diluant d échantillon. Bien mélanger. 3. Ajouter 100 μl d'échantillon de patients, de contrôles et d'étalons (CAL) dans leurs puits respectifs. 4. Couvrir la plaque et incuber pendant 30 minutes à 37ºC ±1ºC. 5. Laver à six (6) reprises avec le tampon de lavage dilué (se reporter à la procédure de lavage). 6. Ajouter 100 μl d IgG anti-humain conjugué à la HRP dans chaque puits. 7. Couvrir la plaque et incuber pendant 30 minutes à 37ºC ±1ºC. 8. Laver à six (6) reprises avec le tampon de lavage dilué (se reporter à la procédure de lavage). 9. Ajouter 100 μl de TMB dans chaque puits. French

16 French 10. Incuber pendant 10 minutes à température ambiante (20 à 25ºC), à compter du premier ajout. Une couleur bleue se développe. 11. Ajouter 100 µl de solution d arrêt dans tous les puits en respectant le même ordre et les mêmes délais que pour l ajout du TMB. Bien mélanger. La couleur passe du bleu au jaune. 12. Dans les 30 minutes qui suivent, mesurer le niveau d absorbance de chaque puits à une longueur d onde de 450 nm, avec un filtre de référence de nm. Remarque: si un spectrophotomètre à double longueur d onde est disponible, régler le filtre de référence entre 600 et 650 nm. Toute mesure effectuée sur les micropuits à 450 nm sans filtre de référence risque de générer des valeurs d absorbance élevées en raison du bruit de fond. PROCÉDURE DE LAVAGE La procédure ELISA requiert un lavage efficace afin d éliminer tout échantillon ou composant nu. A. Laveur de plaques automatique (1) Aspirer la totalité du contenu de tous les puits. (2) Remplir tous les puits jusqu à la limite (350 μl) au cours du cycle de lavage. (3) Une fois les six (6) lavages effectués, retourner la plaque et la tapoter fermement sur du papier absorbant afin d éliminer toute trace du tampon de lavage. (4) Les laveurs de plaques automatiques doivent être bien entretenus afin de garantir un lavage efficace. Les instructions de nettoyage du fabricant doivent être systématiquement respectées. B. Lavage manuel (1) Mettre au rebut le contenu de la plaque dans le conteneur de déchets approprié. (2) Remplir les puits de tampon de lavage à l aide d une pissette. Éviter toute formation de bulles au niveau du tampon de lavage, au risque de compromettre l efficacité du lavage. Mettre immédiatement au rebut le tampon de lavage utilisé dans les puits. (3) Remplir une nouvelle fois les puits avec le tampon de lavage, puis les vider immédiatement. (4) Répéter l étape (3) à quatre autres reprises. Au total, les puits auront été lavés six (6) fois avec le tampon de lavage. (5) Après le dernier lavage, mettre le contenu les puits au rebut et tapoter la plaque sur du papier absorbant afin d éliminer toute trace du tampon de lavage. CALCULS REMARQUE IMPORTANTE : le facteur d étalonnage est spécifique au lot ; il est détaillé dans la fiche technique. Se munir de la valeur de facteur d étalonnage avant de commencer les calculs. 1. Calculer l absorbance moyenne des trois exemplaires d étalon et multiplier le résultat par le facteur d étalonnage. La valeur obtenue correspond à la valeur seuil. 2. Pour obtenir la valeur d index, diviser l absorbance de l échantillon par la valeur seuil (calculée à l étape (1) ci-dessus). Sinon, 3. Pour calculer les unités Panbio, multiplier la valeur d index (calculée à l étape (2) ci-dessus) par

17 Valeur d index = absorbance de l échantillon Valeur seuil Exemple : Absorbance de l échantillon A = Absorbance de l échantillon B = Absorbance moyenne de l étalon = 0,802 Facteur d étalonnage = 0,62 Valeur seuil = 0,802 x 0,62 = 0,497 Échantillon A (0.949/0.497) = valeur d index de 1,91 Échantillon B (0.070/0.497) = valeur d index de 0,14 laboratoire de l utilisateur. L utilisateur doit consulter les normes CLSI C24-A et 42 CFR pour obtenir des conseils sur les pratiques adéquates en matière de contrôle qualité. INTERPRÉTATION DES RÉSULTATS Index UNITÉS PANBIO RÉSULTAT <0.9 <9 Négatif Équivoque >1.1 >11 Positif Unités Panbio = valeur d index x 10 RÉSULTAT INTERPRÉTATION Échantillon A Échantillon B 1.91 X 10 = 19,1 unités Panbio 0.14 X 10 = 1.4 unités Panbio CONTRÔLE QUALITÉ Chaque kit contient un étalon, ainsi que des contrôles positif et négatif. Les valeurs acceptables pour chacun d eux sont indiquées sur la fiche technique fournie. Les contrôles négatif et positif visent à surveiller toute défaillance importante au niveau du réactif. Le contrôle positif ne garantit pas la précision à la valeur seuil du test. Le test n est pas valide et doit être répété si les mesures d absorbance des contrôles ou de l étalon ne correspondent pas aux spécifications. Si le test n est pas valide, les résultats du patient ne peuvent pas faire l objet d un compte-rendu. La procédure de contrôle qualité (CQ) doit être appliquée conformément à la réglementation locale, nationale ou internationale en vigueur, et/ou aux conditions d agrément et aux procédures de CQ en vigueur dans le Négatif Équivoque Aucun signe d infection antérieure par le virus de la dengue. Confirmer toute suspicion d infection récente par le virus de la dengue en réalisant un test sur un autre échantillon 7 à 14 jours plus tard. Suggérer la réalisation d un nouveau test sur les échantillons. Si un échantillon reste équivoque suite à ce nouveau test, le recours à une autre méthode de test ou le prélèvement et le test d un autre échantillon du patient peuvent être envisagés. French

18 French RÉSULTAT INTERPRÉTATION La présence d anticorps IgG détectables est la preuve d une infection antérieure ou récente par le virus de la dengue. Dans Positif les régions où circulent de nombreux flavivirus, la présence d anticorps de flavivirus à réaction croisée doit être prise en compte. La formulation suivante est recommandée pour présenter les résultats obtenus : «Les résultats suivants ont été obtenus avec le kit Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Ces valeurs ne sont pas interchangeables avec celles obtenues par d autres méthodes. L amplitude du résultat mesuré au-delà de la valeur seuil n est pas représentative de la quantité totale d anticorps présente.» Le résultat doit être rapporté comme étant positif, négatif ou équivoque et non pas sous la forme de valeur numérique. VALEURS ATTENDUES ET LIMITES DE LA PROCÉDURE 1. Le diagnostic clinique doit être établi sur la base des symptômes et signes cliniques présentés par le patient. Les résultats de ce kit ne constituent pas un diagnostic en soi et doivent être interprétés conjointement à d autres données cliniques et aux symptômes présentés par le patient. 2. La valeur prédictive positive dépend de la probabilité de la présence du virus. Des tests doivent être réalisés uniquement chez les patients présentant des symptômes cliniques correspondant au virus ou dans le cas où une exposition au virus serait suspectée. 3. Les réactions sérologiques croisées au sein du groupe des flavivirus (dengue 1, dengue 2, dengue 3, dengue 4, encéphalite japonaise, virus du Nil occidental, encéphalite de Murray Valley, etc.) est courante au niveau de l IgG 3,4,5. Des essais menés en Asie du Sud-est ont montré que 90 % des patients atteints d encéphalite japonaise (n=20) présentaient un résultat d IgG indirect supérieur à 10 unités Panbio. 4. La valeur seuil a été déterminée à partir d une population locale. La séroépidémiologie de la population peut évoluer avec le temps selon les régions géographiques. Il peut donc s avérer nécessaire d ajuster la valeur seuil en fonction des études locales. 5. Les caractéristiques de performance n ont pas été établies pour la détermination visuelle des résultats. 6. Tous les sérums indiquant une infection dans le cadre du test de dépistage ELISA doivent être envoyés à un laboratoire de référence pour obtenir confirmation de la positivité des résultats et procéder à un enregistrement épidémiologique. CARACTÉRISTIQUES DE PERFORMANCE 386 sérums rétrospectifs caractérisés par des méthodes ELISA et par inhibition de l hémagglutination (IHA) ont été testés au moyen du kit Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Les sérums provenaient d échantillons prélevés dans les groupes suivants : 108 échantillons séronégatifs, 84 échantillons primaires, 94 échantillons secondaires et 100 échantillons endémiques. Ces sérums ont été testés avec le Panbio Dengue IgG Indirect ELISA et les résultats ont été comparés à l état sérologique de la dengue pour déterminer la sensibilité, la spécificité et la concordance du test. Les données sont présentées dans le tableau

19 115 sérums ont été caractérisés comme étant propres à la dengue primaire et secondaire par une université de Malaisie, selon une méthode d inhibition de l hémagglutination (IHA) et d après des critères définis par l Organisation mondiale de la santé. Le panel était composé de 23 échantillons de dengue primaire et de 92 échantillons de dengue secondaire. Les résultats sont présentés dans le tableau 2. Tableau 1 Sensibilité et spécificité sérologiques du test Panbio ELISA par rapport à l état de la dengue ELISA Panbio État de la dengue Positif Équivoque a Négatif Total Séronégatif Primaire Secondaire Endémique Total % IC* Sensibilité sérologique (secondaire) = 92/94 = 97.9% % Spécificité sérologique (endémique) = 62/100 = 62.0% % Spécificité sérologique (primaire) Spécificité sérologique (négative) Concordance sérologique = 28/84 = 108/108 = 290/386 = 33.3% = 100.0% = 75.1% % % % a Aucun test supplémentaire des échantillons équivoques n a été réalisé car ceux-ci n étaient pas disponibles. * Intervalle de confiance Tableau 2 Diagnostic sérologique du kit Panbio ELISA par rapport à l état de la dengue ELISA Panbio État de la dengue (IHA) Équivoque Positif Négatif Total Primaire Secondaire Total % IC* Sensibilité sérologique (primaire) = 20/23 = 87.0% % Spécificité sérologique (secondaire) = 92/92 = 100.0% % * Intervalle de confiance REPRODUCTIBILITÉ La reproductibilité du kit Panbio Dengue IgG Indirect ELISA a été déterminée par en analysant 8 sérums trois fois chacun, avec trois numéros de lot de kit Panbio et sur trois jours différents. La précision intra-série, inter-jours, inter-lots ainsi que la précision totale ont été évaluées par analyse de variance (ANOVA type II) et sont présentées dans le tableau 3. Tableau 3 Mesures de la précision du test Panbio Dengue IgG Indirect (à l aide de la valeur d index*) French

20 Intra-série Inter-jours Inter-lots Total Échantillon n *Moyenne *É.T. CV *É.T. CV *É.T. CV *É.T. CV #1 #2 #3 # % 4.5% 6.0% 6.1% % % % % % % % % % % % % #5 # % 9.9% % % % % % % # % % % % # % % % % Toutes les valeurs sont calculées à partir de la valeur d index (valeur seuil déterminée à l aide de la DO). É.T. = écart-type ; CV = coefficient de variation Remarque: les résultats de l écart-type ont été arrondis à deux décimales pour la constitution du tableau. * la valeur d index est calculée en divisant la valeur d absorbance de l échantillon par la valeur seuil. Tableau 4 Données de réactivité croisée Panbio Dengue IgG Indirect ELISA Type de maladie Total des échantillons Résultat positif Rubéole 8 (0/8) Virus de la forêt de Barmah 10 (0/10) Fiévre fluviale du japon 10 (0/10) Anticorps antinucléaire 10 (0/10) Facteur rhumatoïde 10 (0/10) Virus de la riviére Ross 10 (0/10) Virus du Nil occidental 5 (2/5) Total 63 (2/63) Date issued : PE30-06-Fr-1 French RÉACTIVITÉ CROISÉE Un panel de 63 échantillons provenant de patients atteints de maladies confirmées autres que la dengue a été testé afin d établir la spécificité analytique du test Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Ces échantillons ont été prélevés sur des patients atteints de maladies pouvant produire une réaction croisée. Chacun des échantillons inclus dans l étude a été caractérisé en fonction du diagnostic pathologique avant de procéder à l analyse avec le test Panbio Dengue IgG Indirect ELISA. Consulter le tableau 4 pour connaître les résultats

21 Prohibida su venta o distribución en Estados Unidos de América Panbio Dengue IgG Indirect ELISA Cat. No. 01PE30 Español

22 Español USO PREVISTO El ensayo ELISA indirecto de anticuerpos IgG contra el dengue se utiliza para la detección cualitativa de anticuerpos IgG contra los serotipos del antígeno del dengue (1, 2, 3 y 4) en suero, como ayuda para el diagnóstico en laboratorios clínicos de pacientes con síntomas clínicos y exposición en el pasado indicativos de fiebre del dengue. INTRODUCCIÓN El grupo de arbovirus del dengue se transmite por medio de mosquitos, principalmente los de las especies Aedes aegypti y Aedes albopictus. La infección por dengue, asociada a una enfermedad febril, se caracteriza por la aparición súbita de fiebre, cefalea intensa, mialgia, artralgia y exantema. Algunas complicaciones graves de la infección por dengue son la fiebre hemorrágica del dengue y el síndrome de choque por dengue. La infección secundaria por un serotipo del dengue diferente conlleva un aumento de la prevalencia de estas complicaciones. La detección del anticuerpo específico de la clase IgG contra los cuatro serotipos del dengue mediante ELISA es una herramienta valiosa para el diagnóstico de exposiciones previas al dengue. La presencia de niveles aumentados de IgG en muestras de suero emparejadas es indicativa de infección activa por dengue. Tradicionalmente se han usado los títulos de la prueba de inhibición de hemaglutinación (IH) para clasificar las infecciones como primoinfección o infección secundaria. La definición actual se basa en un análisis de muestras de suero emparejadas con una diferencia de al menos 7 días, aunque se considera que las muestras con infección aguda con un título en la prueba IH 1:2 560 proceden de pacientes con infección secundaria por flavivirus 1. PRINCIPIO Cuando están presentes, los anticuerpos séricos se unen a una combinación de los antígenos del dengue ligados a la superficie de poliestireno de las tiras de prueba de los micropocillos. El suero restante se elimina mediante lavado y se agregan anticuerpos anti-igg humana conjugados con peroxidasa. Los micropocillos se lavan y se agrega un sistema de sustrato incoloro de tetrametilbencidina y peróxido de hidrógeno (cromógeno de TMB). La enzima hidroliza el sustrato y el cromógeno se vuelve de color azul. Después de detener la reacción con ácido, la TMB se vuelve de color amarillo. Los cambios de color indican la presencia de anticuerpos IgG contra el dengue en la muestra de la prueba. MATERIALES SUMINISTRADOS 1. Micropocillos recubiertos de antígenos del dengue (serotipos 1, 2, 3, 4): (12 x 8 pocillos). Listo para usar. Los micropocillos sin usar deben volver a sellarse inmediatamente y guardarse en presencia de secante. Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 2. Tampón de lavado (20x): un frasco de 60 ml de solución salina tamponada con fosfato (ph 7,2-7,6) concentrada 20x con Tween 20 y conservante (Proclin al 0,1%). A temperaturas bajas puede producirse cristalización. Para corregirla, incube a una temperatura de 37 C hasta que desaparezca. Mezcle bien. Diluya una parte del tampón de lavado concentrado con 19 partes de agua destilada. El tampón diluido puede almacenarse durante una semana entre 2 y 25 C. 3. Diluyente para muestra: dos frascos de 50 ml (rosa). Listo para usar. Solución salina tamponada con Tris (ph 7,2-7,6) con conservantes (Proclin al 0,1%) y aditivos. Estable entre 2 y 8 C

23 hasta su caducidad. 4. Anticuerpos anti-igg humana conjugados con HRP: un frasco de 15 ml (verde). Listo para usar. Anticuerpos caprinos anti-igg humana conjugados con peroxidasa de rábano con conservante (Proclin al 0,1%) y estabilizadores de proteína. Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 5. Cromógeno TMB (TMB): un frasco de 15 ml. Listo para usar. Una mezcla de 3,3,5,5'-b-tetrametilbencidina y peróxido de hidrógeno en un tampón de citrato-ácido cítrico (ph 3,5-3,8). Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 6. Control positivo: un vial de tapón rojo con 200 μl de suero humano (contiene acida sódica al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 7. Calibrador: un vial de tapón amarillo con 400 μl de suero humano (contiene acida sódica al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 8. Control negativo: un vial de tapón verde con 200 μl de suero humano (contiene acida sódica al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8 C hasta su caducidad. 9. Solución de parada: un frasco de tapón rojo con 15 ml. Listo para usar. Ácido fosfórico 1M. Estable entre 2 y 25 C hasta su caducidad. Proclin 300 es una marca registrada de Rohm and Haas Company. MATERIALES ADICIONALES NECESARIOS NO SUMINISTRADOS 1. Micropipetas de precisión ajustables con puntas de pipeta desechables (capacidad µl) 2. Agua desionizada 3. Sistema de lavado de microplacas 4. Lector de microplacas con un filtro de 450 nm 5. Cronómetro 6. Probeta graduada 7. Matraz 8. Tubos de ensayo o placa de microtitulación para las diluciones del suero PRECAUCIONES PARA USO DIAGNÓSTICO IN VITRO 1. Todas las muestras de origen humano utilizadas en la preparación de los controles han dado resultados negativos en las pruebas para los virus 1 y 2 de la inmunodeficiencia humana (VIH 1 y 2), el virus de la hepatitis C (VHC) y el antígeno de superficie de la hepatitis B. Sin embargo, ningún método ofrece una garantía completa y todos los controles y pocillos recubiertos de antígenos humanos deben manipularse como material potencialmente infeccioso. Los Centers for Disease Control and Prevention y los National Institutes of Health recomiendan manipular los agentes potencialmente infecciosos en laboratorios de contención biológica de nivel Esta prueba solo debe realizarse con suero. No se ha establecido el uso de sangre completa, plasma u otras matrices de muestras. 3. No se deben utilizar sueros ictéricos o lipidémicos o sueros que presenten hemólisis o crecimiento microbiano. 4. No inactive los sueros con calor. 5. Todos los reactivos deben estar estabilizados a temperatura Español

24 Español ambiente (entre 20 y 25 C) antes de comenzar el ensayo. Los cambios de temperatura afectan al ensayo. No saque los micropocillos de la bolsa cerrada hasta que hayan alcanzado la temperatura ambiente (entre 20 y 25 C). 6. Dispense los reactivos directamente de los frascos utilizando puntas de pipeta limpias. Al transferirlos pueden contaminarse. 7. Los micropocillos sin usar deben volver a sellarse inmediatamente y guardarse en presencia de un secante. Si no se lleva a cabo este paso pueden obtenerse resultados erróneos. 8. Sistema de sustrato: (a) Dado que la TMB se puede contaminar con iones metálicos, no permita que el sistema de sustrato entre en contacto con superficies metálicas. (b) Evite una exposición prolongada a la luz directa. (c) Algunos detergentes pueden interferir con el rendimiento de la TMB. (d) La TMB puede presentar un tenue color azulado, lo que no afecta a la actividad del sustrato ni a los resultados del ensayo. que no se transfiera acida sódica de otros reactivos. 11. La información de riesgo de los componentes conforme a las correspondientes Directivas de la Comunidad Europea (CE) es la siguiente: Componentes Naturaleza del riesgo Tampón de lavado concentrado 20x Irritante R36/38, R43 Cromógeno TMB Irritante R36/37/38 Solución de parada Irritante R36/38 Diluyente para muestra Anticuerpos anti-igg humana conjugados con HRP para ensayo indirecto de IgG contra el dengue Micropocillos recubiertos de antígenos para ensayo indirecto de IgG contra el dengue Irritante R36/38, R43 Irritante R36/38, R43 No se considera peligroso Irritante Xi 9. Algunos componentes del kit contienen acida sódica, que puede reaccionar con las tuberías de plomo o cobre y formar compuestos de acidas metálicas altamente explosivos. Al desechar estos reactivos por las tuberías, hágalo vertiendo una gran cantidad de agua con el fin de evitar que la acida se acumule en las cañerías. 10. La acida sódica inhibe la actividad del conjugado. Para agregar el conjugado deben utilizarse puntas de pipeta limpias, de forma Control positivo para ensayo indirecto de IgG contra el dengue Calibrador para ensayo indirecto de IgG contra el dengue Nocivo Control negativo para ensayo indirecto de IgG contra el dengue Nocivo R22, R32, R43 Nocivo R22, R32, R43 Nocivo R22, R32, R43 Nocivo Xn PARA MÁS INFORMACIÓN DE SEGURIDAD, CONSULTE LA HOJA DE DATOS DE SEGURIDAD DISPONIBLE EN STANDARD DIAGNOSTICS, INC