Revista Brasileira de Geografia Física

Transcrição

1 Revista Brasileira de Geografia Física, vol.08, n.04 (2015) Revista Brasileira de Geografia Física ISSN: Homepage: Análise da assembléia fitolítica em solo superficial e serrapilheira em dois fragmentos de cerrado em área urbana de Campo Mourão Paraná Mayara dos Reis Monteiro 1 ; Mauro Parolin 2 ; Marcelo Galeazzi Caxambu 3 1 Pós-graduação em Geografia Universidade Estadual de Maringá, autor correspondente: mayarareismonteiro@gmail.comn 2 Universidade Estadual do Paraná campus Campo Mourão, mauroparolin@gmail.com 3 Universidade Tecnológica Federal do Paraná, campus Campo Mourão, mgcaxambu@yahoo.com Artigo recebido em 04/09/2015 e aceito em 29/12/2015. R E S U M O Fitólitos são corpos micrométricos de opala que se acumulam entre os tecidos das plantas. Originados por processos de biomineralização são a forma que os vegetais encontraram para retirar do sistema a Sílica, a qual pode ser nociva à eles. Esses pequenos corpos são utilizados como ferramentas paleoambientais, o que ajuda a criar um demonstrativo climático e vegetacional das eras pretéritas. As áreas selecionadas para o presente estudo estão localizadas no limite austral do Cerrado brasileiro, que se encontra no município de Campo Mourão, Paraná. As duas áreas se diferem no nível de proteção aos efeitos antrópicos, sendo que uma é a Estação Ecológica do Cerrado e a outra o lote 7H. O lote 7H apresenta maior concentração de fitólitos, composto em sua grande parte por Arecaeae e Poaceae. Na Estação Ecológica do Cerrado, caracterizada como Cerradão, a concentração de fitólitos é mais baixa e apresenta menor concentração de fitólitos típicos de Poaceae. A análise de ph apresenta valores mais ácidos na Estação e menores no 7H. É possível observar a compatibilidade dos fitólitos preservados no solo e a vegetação de cobertura atual e através desses dados, pode-se distinguir o Cerrado (7H - short cell) do Cerradão (Estação - Tree e Block). Palavras-chave: Alteração Antrópica, Unidade de conservação, Estação Ecológica do Cerrado, Fitólito, Poaceae, Arecaceae. Analysis of phytoliths assembly in topsoil and litter in two Cerrado fragments in urban area of Campo Mourão - Paraná A B S T R A C T Phytoliths are micrometric opal that accumulate between tissues of plants. Originated for biomineralization processes in vegetables, the phitoliths are form to remove the silica system, because it can harmful. These small bodies are used as paleoenvironmental tools, that helps for create a climate and vegetation demonstrative of past eras. The areas selected for this study are located in the southern limit of the Brazilian Cerrado, which is no municipality of Campo Mourao, Parana. The two areas differ in the level of protection to anthropogenic effects, the being is an Ecological Station of Cerrado and another, Lote 7H. The Lote 7H presents greater concentration phytoliths with largely Arecaeae and Poaceae. The Cerrado Ecological Station, characterized Cerradão your phytoliths and concentration the lower and has less phytoliths concentration typical of Poaceae. The ph analysis shows values more acids in the station and minor not 7H. It is possible to observe one of phytoliths compatibility preserved not ea ground cover vegetation and current use these data through may distinguish the Cerrado (7H - short cell) of Cerradão (Station - Tree Block). Key-words: Antropogenic change, Protected area, Estação Ecológica do Cerrado, Phitolith, Poaceae, Arecaceae. 1256

2 Introdução A gênese da presença de vegetação de Cerrado no estado do Paraná é palco de discussões. O professor Reinhard Maack ( ) cogitava a hipótese de que a presença de enclaves de campos nas floretas do Brasil seriam consequência de climas mais secos e frios que vigoraram no Quaternário. As áreas de Cerrado no Estado do Paraná indicadas por Maack (1968) correspondem aos municípios de Campo Mourão, Sabáudia, Sengés e Jaguariaíva. No caso de Campo Mourão, Maack calculou uma área aproximada de 102 km 2. Desde os estudos desse pesquisador até o presente momento, o Cerrado de Campo Mourão foi brutalmente alterado, primeiramente pela pressão da colonização e posteriormente pela pressão imobiliária (Stevaux e Parolin, 2010). Da área estimada originalmente, restaram apenas 0,7% concentrados em pequenas manchas no entorno e interior do sítio urbano, dessas manchas, há apenas uma área declarada de utilidade pública em meados da década de 1980 com m 2 e legalmente preservada pelo Decreto Municipal nº. 596/93 (Estação Ecológica do Cerrado de Campo Mourão administrada pela Universidade Estadual do Paraná/Campus de Campo Mourão - EECCM). Ressalte-se a existência de outra área de tamanho equivalente próxima à Estação Ecológica do Cerrado que foi declarada de preservação permanente em 2003 (Lei 1769/03), denominada de Lote 7H, porém ainda não desapropriada. Considerando que o entendimento das mudanças ambientais pretéritas é importante para o estabelecimento de modelos ambientais de caráter preditivo, e, considerando as dificuldades em se estabelecer indicadores (proxy) que possam responder satisfatoriamente às mudanças ambientais pelas quais a região de Campo Mourão certamente passou. O presente estudo mostra um ensaio realizado com fitólitos (biomineralizações de opala), extraídos da serapilheira e solo superficial (5 e 10 cm), na EECCM e Lote 7H. Enfoca-se que a análise fitolítica embasada no atual conhecimento, não permite a identificação dos vegetais em nível específico, se fazendo necessária a averiguação e compreensão dos fitólitos como um grupo (assembleia fitolítica), por vezes auxiliado pela identificação de famílias e subfamílias, e.g. Arecaceae e Poaceae, famílias com presença marcante na tipologia analisada. Vale informar que as publicações sobre o emprego dos fitólitos em estudos paleoambientais tem aumentado muito nas últimas décadas (Luz et al., 2015). Diante de resultados positivos usando esse bioindicador, o presente ensaio mostra a viabilidade de seu uso para futuros estudos em solo com presença de vegetação de Cerrado, trazendo os primeiros esboços de uma calibração, entre vegetação de Cerrado e preservação de fitólitos. Fitólitos Piperno (2006) conceitua fitólitos como corpos micrométricos de opala precipitados nos tecidos ao longo da vida de um vegetal. Segundo Madella e Alexandre et al. (1997), ao retirar água e nutrientes do solo as plantas absorvem o ácido silícico Si(OH4). Os íons de Si são então induzidos a precipitar e cristalizar em células moldes criadas pelo organismo vegetal. Esse processo é conhecido por Osterrieth (2008) como biomineralização e pode ocorrer em diversas partes das plantas. Tal fato ocorre, pois os fitólitos podem desempenhar diferentes funções dentro do organismo vegetal, como: a) dar suporte mecânico às células; b) conferir força aos órgãos e estruturas das plantas, proteção contra herbívoros e parasitas; c) neutralizar ânions e cátions prejudiciais (Coe, 2009). Sendo assim, cada espécie vegetal e cada estrutura da planta produz uma forma diferenciada de silicofitólito, seu fitólito característico, podendo por vezes ocorrer o que Madella e Alexandre et al. (1997) denominam de multiplicidade (quando uma mesma espécie produz mais que uma morfologia) e redundância (quando uma mesma morfologia é produzida por mais de uma espécie) evidenciando a importância da análise fitolítica ser feita considerando-se à assembleia. Os fitólitos têm sido referenciados como um dos registros fósseis terrestres mais duráveis, uma importante ferramenta de interpretação nos estudos paleoambientais e arqueológicos. Salienta-se, no entanto, que a maioria dos estudos fitolíticos não procuram estabelecer a presença pontual das espécies botânicas, mas se houve mudança na conjuntura dos morfotipos representativos encontrados em sedimento. Desta maneira entende-se que um único fitólito não permite caracterizar um táxon, mas uma assembléia fitolítica permite caracterizar uma formação vegetal. Para Bremond et al. (2005) uma assembléia fitolítica é função da biomassa, da produção de fitólitos e de sua dissolução seletiva na serrapilheira e no solo, tafonomia. Muitos trabalhos se desenvolveram tendo em vista as características favoráveis dos fitólitos para aplicação em reconstruções paleoambientais. Palmer et al. (1976) enfatizam a importância do uso de fitólitos e cutículas para complementar 1257

3 os estudos polínicos, visto a durabilidade de tais registros (p.ex. Bremond et al, 2008); Barboni e Bremond, 2009; Cordova, 2013). Tal qual dito por Palmer et al. (1976), o continente africano é berço de vários trabalhos com fitólitos, onde por exemplo, teve origem os índices de adaptação à aridez (Iph) e índice climático (Ic), discutidos nesse trabalho. Ressaltase ainda a ampla bibliografia para o continente africano quanto à reconstruções paleoambientais a partir da análise fitolítica. No Brasil, ainda são poucos os estudos paleoambientais subsidiados pela análise fitolítica como demonstrado por Luz et al (2015). Salienta-se, no entanto, que alguns destes trabalhos, não obstante das análises paeloambientais, mas servindo de apoio para estas, visam à caracterização da assembleia fitolítica em distintas tipologias vegetais e diferentes solos (um dos objetivos do presente estudo) nestes destacam-se os levantamentos em áreas de Cerrado e Cerradões realizado por Lepsch e Andrade Paula (2006) que descreveram e quantificaram os fitólitos em latossolos e gleissolos sob vegetação de Cerrado. Incrementando os estudos de assembleia fitolítica moderna Costa et al (2010) identificaram a ocorrência de corpos silicosos em horizontes superficiais de solos oriundos de diferentes ecossistemas. Os autores evidenciaram que em latossolos não há diferença quanto à quantidade de fitólitos em relação aos biomas (Cerrado, Mata Atlantica e Caatinga), mas há quanto ao material de origem do solo, sendo que em solos oriundo do quartzito a abundancia de fitólitos é maior. Posteriormente, nesta mesma linha de pensamento, visando ampliar as coleções de referencia de fitólitos, bem como analisar a produção deste proxy em duas fitofisionomias distintas (Campo e Floresta Ombrófila Mista), Raitz (2012) observou diferenças quanto a composição e preservação de fitólitos capazes de discernir os dois tipos vegetacionais. Material e métodos Caracterização da área de coleta Os locais de coleta encontram-se no município de Campo Mourão Paraná (Figura 1), conhecido por se tratar de um ecótono, caracterizado pelas por três tipologias vegetacionais: Floresta Ombrófila Mista, Floresta Estacional Semi-Decidual e Cerrado. As duas áreas remanescentes de Cerrado estudadas, Lote 7h e Estação Ecológica do Cerrado, estão localizadas na porção leste da cidade de Campo Mourão (Figura 1). Figura 1. Localização da área estudada e imagem de satélite com destaque para o Lote 7H e Estação Ecológica do Cerrado em meio ao sítio urbano de Campo Mourão/Paraná. Fonte da imagem de satélite: Google Earth. Lote 7H O Ponto 1 Lote 7H (Figuras 2 e 3), com área aproximada de m 2, caracteriza-se pela vegetação de Cerrado (composição florística Tabela 1), formada pelo predomínio de gramíneas, com raras espécies arbustivas e arbóreas, dentre as quais se destacam as 1258

4 palmeiras. Butia paraguayensis (Barb. Rodr.) L. H. Bailey, Setaria vulpiseta (Lam.) Roem. & Schult, Urochloa brizantha (Hochst ex A. Rich) Stapf, e Cocholospermum regium (Mart. Ex Schrank) Pilg., são as espécies predominantes na composição florística da área. A vegetação no Ponto 2 Lote 7H é composta em sua maioria por espécies arbóreas e arbustivas entremeadas por gramíneas, tipo Cerradão. As espécies dominantes na área são Caryocar brasiliense Cambess, Vochysia tucanorum Mart., Duguetia furfuracea (A.St.- Hil.) Saff., Jacaranda decurrens Chamisso. Figura 2. Imagem de satélite com destaque para o Lote 7H em Campo Mourão, Paraná. Fonte: Google Earth. Figura 3. Vista parcial do Lote 7H em Campo Mourão, Paraná. Tabela 1. Espécies coletadas na Estação Ecológica do Cerrado pela Equipe do Herbário HCF e catalogadas no mesmo. Data da coleta Família Espécie Autor Nº de Tombo 08/III/2006 Amaranthaceae Froelichia procera (Seub.) T.M. Pedersen /IV/2005 Anacardiaceae Schinus weinmannifolius Engl /VII/2003 Annonaceae Duguetia furfuracea (A.St.-Hil.) Saff /III/2006 Apiaceae Eryngium eurycephalum Malme /XI/2004 Apocynaceae Mandevilla pohliana (Stadelm.) A.H.Gentry /IX/2004 Asteraceae Aspilia montevidensis (Spreng.) Kuntze /IV/2005 Asteraceae Austroeupatorium (Kunth.) R.M. King & H inulaefolium Robinson 08/III/2006 Asteraceae Baccharis sessiliflora Vahl /III/2006 Asteraceae Chromolaena pedunculosa (Hook. & Arn.) R.M. King 3576 & H. Robinson 11/IV/2005 Asteraceae Chrysolaena platensis (Spreng.) H.Rob /V/2006 Asteraceae Hieracium urvillei Sch. Bip /X/2004 Asteraceae Ichthyothere rufa Gardner /III/2006 Asteraceae Lessingianthus niederleinii (Hieron.) H. Rob /IX/2004 Asteraceae Mikania hirsutissima DC /III/2006 Asteraceae Orthopappus angustifolius (Sw.) Gleason /IV/2005 Asteraceae Pterocaulon rugosum (Vahl) Malme /III/2006 Asteraceae Verbesina sordescens DC

5 08/III/2006 Asteraceae Vernonanthura oligolepis (Sch. Bip. ex Baker) H Robinson 06/XI/2004 Bignoniaceae Fridericia samydoides (Cham.) L.G.Lohmann /X/2004 Bignoniaceae Jacaranda mutabilis Hassl /IX/2004 Bixaceae Cochlospermum regium (Mart. ex Schrank) Pilg /IX/2004 Bromeliaceae Dyckia tuberosa (Vell.) Beer /X/2004 Convolvulaceae Ipomoea delphinioides Choisy /X/2004 Convolvulaceae Merremia hassleriana (Chodat & Hassl.) Hassl /IX/2011 Cucurbitaceae Cayaponia espelina (Silva Manso) Cogn /X/2006 Cucurbitaceae Ceratosanthes hilariana Cogn /IX/2011 Euphorbiaceae Astraea cincta (Müll.Arg.) Caruzo & 9716 Cordeiro 17/III/2006 Euphorbiaceae Croton aberrans Müll. Arg /III/2006 Euphorbiaceae Croton serratifolius Baill /XI/2004 Euphorbiaceae Dalechampia trichophila Pax. & K. Hoffmann /XI/2005 Euphorbiaceae Euphorbia papillosa A.St.-Hil /XI/2004 Euphorbiaceae Microstachys hispida (Mart.) Govaerts /III/2006 Fabaceae Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip /IV/2005 Fabaceae Crotalaria balansae Micheli /VI/2005 Fabaceae Desmanthus tatuhyensis Hoehne /III/2006 Fabaceae Eriosema campestre Benth /III/2006 Fabaceae Eriosema longifolium Benth /IX/2011 Fabaceae Indigofera bongardiana (Kuntze) Burkart /VIII/2011 Fabaceae Indigofera campestris Bong. ex Benth /II/2005 Fabaceae Mimosa debilis Humb. & Bonpl. ex Willd /III/2006 Fabaceae Mimosa xanthocentra Mart /VI/2005 Fabaceae Rhynchosia melanocarpa Grear /VI/2005 Fabaceae Senna rugosa (G.Don) H.S.Irwin & 2564 Barneby 08/III/2006 Fabaceae Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw /III/2006 Fabaceae Stylosanthes montevidensis Vogel /III/2006 Fabaceae Zornia reticulata Smith /IX/2004 Flacourtiaceae Casearia sylvestris Sw /X/2004 Gesneriaceae Sinningia lutea Buzatto & R.Singer /X/2004 Hypericaceae Hypericum brasiliense Choisy /IX/2011 Iridaceae Trimezia spathata (Klatt) Baker /XI/2004 Malpighiaceae Byrsonima intermedia A.Juss /III/2006 Malpighiaceae Galphimia australis Chodat /IV/2005 Malpighiaceae Janusia guaranitica (A.St.-Hil.) A.Juss /III/2005 Malpighiaceae Peixotoa reticulata Griseb /IV/2005 Malpighiaceae Peixotoa reticulata Griseb /IX/2011 Malpighiaceae Tetrapterys salicifolia (A.Juss.) Nied /X/2004 Malvaceae Waltheria communis A.St.-Hil /XI/2004 Melastomataceae Leandra lacunosa Cogn /X/2004 Menispermaceae Cissampelos ovalifolia DC /III/2006 Moraceae Dorstenia brasiliensis Lam /X/2006 Myrtaceae Campomanesia (Cambess.) O. Berg adamantium 06/XI/2004 Myrtaceae Campomanesia sessiliflora (O.Berg.) Mattos /XI/2004 Myrtaceae Myrcia splendens (Sw.) DC /II/2005 Myrtaceae Psidium grandifolium Mart. & DC /IX/2011 Oxalidaceae Oxalis conorrhiza Jacq /III/2006 Poaceae Andropogon bicornis L /III/2006 Poaceae Axonopus pressus (Nees ex Steud.) Parodi /III/2006 Poaceae Brachiaria brizantha (Hochst. ex A. Rich) Stapf /III/2006 Poaceae Ichnanthus pallens (Sw.) Munro ex Benth /X/2011 Poaceae Leptocoryphium lanatum (Kunth) Nees /III/2006 Poaceae Panicum olyroides Kunth /III/2006 Poaceae Panicum sellowii Nees

6 08/III/2006 Poaceae Setaria vulpiseta (Lam.) Roem. & Schult /III/2006 Polypodiaceae Serpocaulon latipes (Longsd. & Fisch.) A.R Sm. 21/III/2005 Rosaceae Rubus brasiliensis Mart /III/2006 Rubiaceae Declieuxia dusenii Standl /XI/2004 Rubiaceae Manettia cordifolia Mart /VI/2005 Sapotaceae Pouteria torta (Mart.) Radlk /IX/2004 Solanaceae Petunia variabilis R. E. Fries /III/2005 Verbenaceae Lippia origanoides Kunth /IX/2004 Verbenaceae Verbena thymoides Cham /IX/2004 Vochysiaceae Vochysia tucanorum Mart Estação Ecológica do Cerrado (E.E.C.) A Estação Ecológica do Cerrado (Figura 4) trata-se de uma quadra de vegetação (composição florística Tabela 2) preservada em meio à área urbana do município de Campo Mourão, por esse motivo está sujeita a ação antrópica. Pela ausência da queima, elemento fundamental para manutenção da vegetação no bioma Cerrado, fato discutido por Parolin et al. (2013), a área encontra-se em processo de sucessão vegetal, apresentando inúmeros elementos da Floresta Estacional Semi-decidual. Figura 4. Imagem de satélite da Estação Ecológica do Cerrado, em Campo Mourão, Paraná.Fonte: Google Earth. No Ponto 1 E.E.C. (Figura 5) há predominância das espécies Tabernaemontana catharinensis A.DC., Stryphnodendron adstringens (Mart.) Coville, Campomanesia xanthocarpa (Mart.) O.Berg, e Qualea grandiflora Mart., evidenciando transição entre Floresta Estacional Semidecidual e Cerrado. Situação semelhante é apresentada no Ponto 3 E.E.C., local em que as espécies que mais se destacam na composição florísticas são Vochsyia tucanorum Mart., Passiflora alata Curtis, Leandra lacunosa Cogn., Stryphnodendron adstringens (Mart.) Coville, e tomentosum Mart. Aspidosperma Figura 5. Local de coleta P1 Estação Ecológica do Cerrado em Campo Mourão, Paraná. Nele pode ser observada em primeiro plano tronco de Anadenanthara falcata (Benth.) Speg., bem como, a presença de lianas, indicativo de alteração/sucessão na área em questão. O Ponto 2 E.E.C. (Figura 6) é caracterizado pela presença de gramíneas e palmeiras, formando uma clareira na Estação Ecológica do Cerrado. As duas espécies predominantes na área são Allagoptera campestris (Mart.) Kuntze, Setaria vulpiseta (Lam.) Roem. & Schult. Figura 6. Local de coleta Ponto 2-Estação Ecológica do Cerrado, em Campo Mourão, Paraná. 1261

7 Tabela 2. Espécies coletadas na Estação Ecológica do Cerrado pela Equipe do Herbário HCF e catalogadas no mesmo. Data da coleta Família Espécie Autor Nº de Tombo 12/IX/2005 Amaryllidaceae Hippeastrum glaucescens (Mart.) Herb /IX/2007 Anacardiaceae Anacardium humile A.St. Hil /IX/2003 Anacardiaceae Lithrea molleoides (Vell.) Engl /XII/2004 Annonaceae Annona coriacea Mart /XII/2003 Annonaceae Duguetia furfuracea (A.St.-Hil.) Saff /X/2004 Apocynaceae Aspidosperma Mart tomentosum 12/X/2004 Apocynaceae Forsteronia glabrescens Mull. Arg /V/2005 Apocynaceae Oxypetalum Mart appendiculatum 19/IX/2004 Apocynaceae Tabernaemontana A.DC catharinensis 15/XII/2004 Arecaceae Allagoptera campestris (Mart.) Kuntze /VI/2004 Asteraceae Baccharis vulneraria Baker /III/2005 Asteraceae Grazielia serrata (Spreng) R.M King & H. Robinson 18/VI/2004 Asteraceae Lepidaploa chamissonis (Less.) H Robinson 15/III/2005 Asteraceae Lessingianthus niederleinii (Hieron.) H. Rob /III/2005 Asteraceae Lessingianthus pumillus (Vell.) H. Rob /III/2005 Asteraceae Lessingianthus /VIII/2004 Asteraceae Mikania hirsutissima DC /VI/2004 Asteraceae Moquiniastrum (Less.) G. Sancho 1148 paniculatum 24/VIII/2004 Asteraceae Moquiniastrum (Less.) G. Sancho 1368 paniculatum 18/VI/2004 Asteraceae Tilesia baccata (L.f.) Pruski /IX/2004 Bignoniaceae Cuspidaria convoluta (Vell.) A.H. Gentry /VII/2004 Bignoniaceae Jacaranda mutabilis Hassl /IX/2004 Bignoniaceae Jacaranda puberula Cham /IV/2005 Bignoniaceae Pyrostegia venusta (Ker Grawl) Miers /IX/2003 Celastraceae Peritassa campestris (Cambess.) A. C. 351 Sm. 29/V/2005 Convolvulaceae Ipomoea cairica (L.) Sweet /X/2004 Cucurbitaceae Cayaponia espelina (Silva Manso) 1461 Cogn. 02/X/2004 Cucurbitaceae Ceratosanthes hilariana Cogn /V/2004 Cyperaceae Rhynchospora exaltata Kunth /X/2004 Erythroxylaceae Erythroxylum cuneifolium (Mart.) O.E. Shulz /IX/2003 Erythroxylaceae Erythroxylum deciduum A.St.-Hil /V/2005 Erythroxylaceae Erythroxylum suberosum A.St.-Hil /X/2004 Euphorbiaceae Croton didrichsenii G.L. Webster /IX/2004 Euphorbiaceae Croton serratifolius Baill /III/2005 Euphorbiaceae Dalechampia micromeria Baillon /XI/2004 Euphorbiaceae Dalechampia trichophila Pax. & K Hoffmann 12/X/2004 Euphorbiaceae Manihot pruinosa Pohl /IX/2003 Fabaceae Anadenanthera peregrina (L.) Speg /X/2004 Fabaceae Andira humilis Mart. ex Benth

8 07/III/2005 Fabaceae Bauhinia holophylla (Bong.) Steud /XI/2004 Fabaceae Crotalaria balansae Micheli /IX/2003 Fabaceae Galactia boavista (Vell.) Burkart /X/2004 Fabaceae Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit /III/2005 Fabaceae Machaerium opacum Vogel /V/2005 Fabaceae Rhynchosia melanocarpa Grear /IV/2005 Fabaceae Senna rugosa (G.Don) H.S.Irwin 2030 & Barneby 15/XII/2004 Fabaceae Stryphnodendron (Mart.) Coville 1683 adstringens 24/VIII/2004 Flacourtiaceae Casearia sylvestris Sw /XI/2004 Gesneriaceae Sinningia lutea Buzatto & 1782 R.Singer 20/XI/2004 Hypericaceae Hypericum brasiliense Choisy /VIII/2004 Lacistemataceae Lacistema hasslerianum Chodat /IX/2004 Lamiaceae Aegiphila verticillata Vell /X/2004 Lamiaceae Salvia aliciae E.P.Santos /VI/2004 Lauraceae Ocotea corymbosa (Meisn.) Mez /V/2005 Lauraceae Ocotea lancifolia (Schott) Mez /V/2005 Lauraceae Ocotea silvestris Vattimo-Gil /VI/2004 Loganiaceae Strychnos rubiginosa A.DC /V/2005 Malpighiaceae Banisteriopsis cf. malifolia (Nees & Mart.) 2251 B.Gates 20/XI/2004 Malpighiaceae Byrsonima intermedia A.Juss /VI/2004 Malpighiaceae Peixotoa reticulata Griseb /VIII/2004 Malvaceae Luehea candicans Mart. & Zucc /XI/2004 Malvaceae Peltaea polymorpha (A.St.-Hil.) 2016 Krapov. & Cristóbal 04/VII/2003 Melastomataceae Leandra lacunosa Cogn /IX/2004 Melastomataceae Miconia cinerascens Miq /X/2004 Moraceae Brosimum gaudichaudii Trécul /VIII/2004 Myrtaceae Campomanesia (Cambess.) O adamantium Berg. 11/IX/2004 Myrtaceae Campomanesia (Mart.) O.Berg xanthocarpa 25/IX/2004 Myrtaceae Eugenia myrcianthes Nied /IX/2004 Myrtaceae Eugenia pitanga (O.Berg) Nied /X/2004 Myrtaceae Myrcia guianensis (Aubl.) DC /V/2005 Passifloraceae Passiflora alata Curtis /VIII/2004 Passifloraceae Passiflora miersii Mast /V/2005 Poaceae Setaria vulpiseta (Lam.) Roem. & 2246 Schult. 11/IX/2004 Rosaceae Prunus myrtifolia (L.) Urb /IX/2004 Rosaceae Rubus brasiliensis Mart /VI/2004 Rubiaceae Coccocypselum (Ruiz & Pav.) Pers lanceolatum 02/X/2004 Rubiaceae Galium hypocarpicum (L.) Endl. ex 1445 Griseb. 18/VI/2004 Rubiaceae Manettia cordifolia Mart /IX/2003 Sapindaceae Matayba elaeagnoides Radlk /V/2005 Sapindaceae Serjania laruotteana Cambess /VI/2004 Sapotaceae Chrysophyllum marginatum (Hook. & Arn.) Radlk

9 02/X/2004 Smilacaceae Smilax campestris Griseb /VI/2004 Symplocaceae Symplocos tetrandra Mart. ex Miq /XI/2004 Verbenaceae Lantana camara L /IX/2003 Verbenaceae Lippia lupulina Cham /XII/2004 Vochysiaceae Qualea grandiflora Mart /III/2005 Vochysiaceae Vochysia tucanorum Mart Protocolos laboratoriais A coleta dos dados foi realizada retirando-se o material em parcelas de 50x50cm (gabarito em madeira), em três etapas: a) coleta da serapilheira; b) solo superficial 1, localizado abaixo da serapilheira, 0-5cm; c) solo superficial 2, localizado abaixo do solo superficial 1, 5-10cm (Figura 7). Figura 7. Método de coleta de serapilheira e solos superficiais. A. fixação do gabarito em madeira (50x50 cm) para coleta da serapilheira e solo; B. Coleta de 5cm do solo (solo superficial 1); C. Coleta de solo entre 5-10 cm (solo superficial 2). A extração dos fitólitos deu-se por tratamento químico segundo adaptação da metodologia de Santos (2011): a) secou-se as amostras em estufa (40ºC/12h); b) peneirou-se o material em peneiras de 0,25mm; c) separou-se 10g do material peneirado em um cadinho de porcelana, deixando-se o material em mufla a 500ºC/5h para a remoção da matéria orgânica; d) com o material em um Becker adicionou-se 100ml de ácido clorídrico (HCl) deixando em chapa aquecedora 50ºC/20min; e) lavou- se o material com água destilada a cada 5min para eliminação da argila e neutralização do ph; f) secou-se o material em estufa à 110ºC; g) adicionou-se cloreto de zinco (densidade 2,5g/cm 3 ) ao material seco e agitou-se com bastão de vidro; h) centrifugou- se o material por 3min recuperando o sobrenadante; i) lavou-se o material sobrenadante com água destilada e centrifugação até que as amostras não estejam mais oleosas; j) prepararou-se lâminas fixas com 50µl da amostra, sendo fechadas com Entellan. Foram separadas 20g do material coletado para análise de dimensões de partículas através de seis peneiras (2mm, 1mm, 0,5mm, 0,250mm, 0,125mm, 0,075mm) e 5g para análise de ph realizada pelo Laboratório de Agroquímica e Meio-Ambiente da Universidade Estadual de Maringá. A identificação botânica na área de estudo foi operada pelo Herbário HCF da Universidade Tecnológica Federal do Paraná/Campus de Campo Mourão. A contagem dos fitólitos foi feita contando-se três transectos em três laminas (x400), a identificação teve como base a coleção de referência do Lepafe e trabalhos sobre fitólitos 1264

10 atuais (Piperno, 2006; Madella et al., 2010; Raitz et al., 2012; Rasbold et al., 2010; Monteiro et al., 2012; Pereira et al., 2013), e a separação das formas segundo as subfamílias de Poaceae (Piperno, 2006). Procurou-se seguir as orientações sobre nomenclatura elencadas no Código Internacional de Fitólitos (Madella et al 2010) nesse sentido, para evitar problemas de tradução todos os morfotipos tiveram sua grafia em inglês. Os dados obtidos foram tabelados e utilizados para composição do gráfico de morfologias e calculo da matriz de correlação através do software BioEstat. Resultados e discussão Lote 7H A concentração fitolítica foi de: a) ponto fitólitos em solo superficial 1, 645 em solo superficial 2 e 1314 em serapilheira; b) ponto em solo superficial 1, 211 em solo superficial 2, e 76 em serapilheira (Figura 8). Embora os dois pontos analisados estejam próximos são distintos quanto à cobertura vegetal e assembleia fitolítica. O ponto 1, área aberta com predomínio de vegetação graminóide, apresenta alta diversidade e densidade de fitólitos short cell como Bilobate, Saddle, Rondel, bem como Elongate (Figura 10). Com exceção da morfologia Block, a qual não aparece na serapilheira, as assembleias dos três estratos analisados (serapilheira, solo 1 e solo 2) apresentam similaridade. A assembleia da serapilheira do ponto 1 demarca uma vegetação C4 caracterizada pela presença dos fitólitos tipo Cross (99 grãos) e Bilobate Panicoideae (747 grãos) produzidos pelas subfamília de Poaceae, Panicoideae (Piperno, 2006). O ponto 2 Lote 7H, área atualmente ocupada por vegetação tipo Cerradão, apresenta uma discrepância entre a assembleia fitolítica presente em serapilheira e solos 1 e 2. Na serapilheira há um predomínio da morfologia de fitólito Tree (Piperno, 2006) que representa 31% da assembleia com 24 fitólitos. A menor densidade de fitólitos em serapilheira comparada à solo 1 e solo 2, aliada ao predomínio do morfotipo tree corroboram estudos realizados por Webb e Longstaffe (2000) que indicam espécies arbóreas e arbustivas como baixas produtoras de fitólitos. Estação Ecológica Do Cerrado Os resultados indicaram uma grande diversidade fitolítica como pode ser observado na figura 24. As quantidades de fitólitos visualizados para cada ponto foi de: a) ponto fitólitos em solo superficial 1, 111 em solo superficial 2 e 98 em serapilheira; b) ponto em solo superficial 1, 163 em solo superficial 2, e 92 em serapilheira; c) ponto 3 87 em solo superficial 1, 66 em solo superficial 2, e 90 em serapilheira (Figura 9). Tais concentrações sugerem uma maior produção/ deposição de fitólitos no ponto dois, corroborando a ideia de que Poaceae e Arecaceae são as maiores produtoras de fitólitos, tendo de 1-5% de seu peso seco constituído por essas estruturas (Webb e Longstaffe, 2000). As quantidades de fitólitos e morfologias foram correspondentes entre solo superficial e serapilheira, está última, entretanto, apresenta nos 3 pontos analisados maior diversidade fitolítica. No ponto 1 foram encontrados, em serapilheira e solo superficial 1, maiores proporções da morfologia Bilobado Bambusoideae, o que aliado a alta diversidade de Long cell (Bulliform, Elongate,Trapeziform, Cilindric) sugerem uma vegetação fechada com predomínio de plantas arbóreas, e Poaceae da subfamília Bambusoideae (Figura 30). Para Schmidt (2008) plantas da subfamília Bambusoideae (Poaceae) são comumente encontradas em interior de florestas, onde tem-se a existência de clareiras ou alteração da vegetação original, são plantas megatérmicas de ambiente úmido. Em contraposição a assembleia fitolítica encontrada em serapilheira e em solo superficial 1, no solo superficial 2 houve predomínio da morfologia Bilobate (35%), característica da subfamília Panicoideae (Twiss et al, 1969). Panicoideae são Poaceae com ciclo fotossintético C4, características de regiões quentes e de vegetação aberta, sugerindo que a assembleia fitolítica encontrada no solo superficial 2 seja representativa de uma paleovegetação existente no local(twiss et al, 1969). O ponto 2 apresentou predominância da morfologia Globular echinate, característica da família Arecaceae. Rasbold et al. (2011), apresenta este morfotipo como característico de Butia paraguayensis (Barb. Rodr.) C.H.Bailey, espécie típica do Cerrado de Campo Mourão. A baixa diversidade de Long cell no solo superficial 2 e seu aparecimento no solo superficial 1 e serapilheira indica, ainda, que a vegetação da área, embora com predomínio da família Arecaceae, outrora fora composta por uma menor quantidade de espécies arbustivas. No ponto 3 as morfologias encontradas apresentam-se semelhantes ao ponto 1. Passando de uma área mais aberta no solo superficial 2, com predomínio de Bulliform cuneiform e Elongate tais formas não apresentam valores 1265

11 taxonômicos em subfamília, mas são característicos de gramíneas (Barboni, 1999), para áreas mais florestais no ponto superficial 1 e serapilheira, caracterizados pela diversidade de Long cell. Figura 8. Morfologia de fitólitos encontrados no lote 7H em Campo Mourão. Figura 9. Morfologia de fitólitos encontrados na Estação Ecológica do Cerrado em Campo Mourão. Figura 10. Morfologias fitolíticas encontradas em serapilheira, solo superficial 1 e 2 no Lote 7H: B- Bilobate; Bc- Bilobate Chusqueia; C- Cross; S- Saddle; R- Rondel; Cs- Cone shape; T-Tree; Ee- Elongate echinate; Tp- Trapeziform polylobate. Escala gráfica: 12,5µm. 1266

12 Figura 11. Morfologias fitolíticas encontradas em serapilheira, solo superficial 1 e 2 na Estação Ecológicado Cerrado: B- Bilobate; S- Saddle; Ge- Globular echinate; Cst- Cilindric sulcate tracheid; T- Tree; Cs- Cone shape; Ee- Elongate echinate. Escala gráfica: 12,5µm. Considerações entre Lote 7H e Estação Ecológica do Cerrado. As distinções entre a vegetação Cerrado e Cerradão apresentadas na vegetação atual das áreas analisadas pode ser evidenciada pela concentração de fitólitos e a porcentagem de fitólitos de Poaceae em cada ponto (Figura 12). A maior concentração de fitólitos é encontrada nos pontos do lote 7H, no qual o levantamento florístico e caracterização da composição vegetacional marca uma área de Cerrado stricto sensu, composta em sua maioria por Arecaceae e Poaceae. Com exceção do Ponto 2 Serrapilheira, mais de 50% da assembleia dos pontos analisados no Lote 7H é representativa de espécies da família Poaceae, alta produtora de fitólitos, tal fato reflete na quantidade de fitólitos encontrados por estrato amostrado. Ao contrário do Lote 7h, nos pontos amostrados na Estação Ecológica do Cerrado, onde a vegetação consiste em um Cerradão, a concentração de fitólitos é mais baixa (< 200 fitólitos) e com ela a porcentagem de fitólitos de Poaceae, a qual ultrapassa os 50% apenas em três estratos, Ponto 1 Solo 1, Ponto 2 Serrapilheira, Ponto 2 Solo

13 Figura 12. Concentração de fitólitos e porcentagem de fitólitos de Poaceae e de outras famílias botânicas nos pontos amostrados no Lote 7H e Estação Ecológica do Cerrado. Não houveram correlações entre fitólitos de (R 2 0,0003) e Estação Ecológica do Cerrado Poaceae e Outras Família Botânicas no Lote 7h (0,1253). Figura 13. Correlação entre fitólitos de Poaceae e Outra Famílias Botânicas no Lote 7H. 1268

14 Figura 14. Correlação entre fitólitos de Poaceae e Outra Famílias Botânicas na Estação Ecológica do Cerrado. superficiais 1 e serapilheira. Entretanto, não foi possível evidenciar correlação entre fitólitos de Poaceae e Outras Famílias, inferindo que nem sempre quando se aumenta a densidade arbórea à concentração de gramínea diminui. Quanto às morfologias representativas das Análises físico-químicas As análises de ph nos solos estudados (Tabela 1) evidenciam a preservação dos fitólitos mesmo em meios ácidos. Segundo Lepsh et al. (2006) a solubilidade da opala biogênica é função principalmente da sua superfície específica (aumentando grandemente a partir de 30 m/g, e esta solubilidade é cerca de 10 vezes maior do que a sílica gel), independente do ph (quando o mesmo é menor que 6.0). A menor concentração de partículas encontra-se retidas nas peneiras 1 e 2 e 3 (2mm, 1mm 2 e 0,5mm) correspondentes à areia média. A maior concentração, por sua vez, está disposta nas peneiras 4 (0,250mm) na Estação Ecológica do Cerrado Solo 1 e 2 Ponto 1 e no Lote 7h Ponto 1 Solo 1 e Ponto 2 Solo 1 e 2; e 5 (0,125mm) no Lote 7h Ponto 1 Solo 1 e Estação Ecológica do Cerrado Ponto 2 Solo 1 e 2 e Ponto 3 Solo 1 e 2. Conclusão A análise dos pontos superficiais amostrados demonstram a preservação fitólítica em solo e sua compatibilidade com a vegetação atual, neste prisma a porcentagem de fitólitos de Poaceae e de Outras Famílias Botânicas evidenciam a densidade de cobertura arbórea na área estudada, permitido a distinção, por exemplo, entre Cerrado e Cerradão, evidenciando também, que em um mesmo local como os pontos 2 e 3 da Estação Ecologica do Cerrado, a vegetação passou de mais aberta no solo superficial 2 para mais densa e arbórea nos solos formações vegetacionais, pode-se inferir que tipologias dominadas por vegetação graminoide, tal qual o Cerrado, apresentará um predomíneo de fitólitos short cell, enquanto tipos vegetacionais com maior representatividade de espécies herbáceo-arbustivas (Cerradão) terão uma assembleia fitolítica dominada pelos morfotipos Tree e Block. A análise de ph apresenta valores mais ácidos na Estação que no 7H, o que não influenciou a concentração de fitólitos, os quais é possível observar a compatibilidade daqueles preservados no solo com a vegetação de cobertura atual, e através desses dados, pode-se distinguir o Cerrado (7H - short cell) do Cerradão (Estação - Tree e Block). Agradecimentos Os autores agradecem ao CNPq processo nº / pelo auxílio financeiro, o primeiro autor agradece ao CNPq pela bolsa de mestrado, o segundo autor agradece a Fundação Araucária do Paraná pela Bolsa de Produtividade. 1269

15 Tabela 3 - Distribuição das partículas de solo por dimensões e ph. Local Ponto Solo Peneiras Peneira 1 Peneira 2 Peneira 3 Peneira 4 Peneira 5 Peneira 6 Peneira 7 2 mm 1 mm 0,5 mm 0,250 mm 0,125 mm 0,075 mm Fundo Estação Ecoloógica do Cerrado P1 Solo ,83 3,48 Estação Ecoloógica do Cerrado P1 Solo ,59 3,69 Estação Ecoloógica do Cerrado P2 Solo ,43 3,69 Estação Ecoloógica do Cerrado P2 Solo ,52 3,60 Estação Ecoloógica do Cerrado P3 Solo ,89 3,64 Estação Ecoloógica do Cerrado P3 Solo ,34 3,61 Lote 7H P1 Solo ,69 5,46 Lote 7H P1 Solo ,52 5,35 Lote 7H P2 Solo ,51 5,01 Lote 7H P2 Solo ,32 4,33 H2O ph CaCl2 1270

16 Referências Barboni, D.; Bremond, L Review of Palaeobotany and Palynology Phytoliths of East African grasses: An assessment of their environmental and taxonomic signi fi cance based on fl oristic data. Review of Palaeobotany and Palynology 158, Bremond, L.; Alexandre, A.; Wooller, M. J.; Hély, C.; Williamson, D.; Schäfer, P. A.; Majule, A.; Guiot, J Phytolith indices as proxies of grass subfamilies on East African tropical mountains. Global and Planetary Change 61, Coe, H. H.G Fitólitos como indicadores de mudanças na vegetação xeromórfica da região de Búzios/Cabo frio, RJ, durante o quaternário. 340 f. Tese (Doutorado em Geologia e Geofísica Marinha) Universidade Federal Fluminense UFF, Niterói RJ. Costa, L.M.; Santos, R.F.; Schaefer, C.E.G.R.; Moreau, A.M.S. Moreau, M.S Ocorrência de corpos silicosos em horizontes superficiais de solos de diferentes ecossistemas. Revista Brasileira de Ciência do Solo 34, Cordova, C. E C 3 Poaceae and Restionaceae phytoliths as potential proxies for reconstructing winter rainfall in South Africa. Quaternary International 287, Lepsch, I.F.; Andrade Paula, L.M Fitólitos em solos sob cerradões do Triângulo Mineiro: relações com atributos e silício adsorvido. Caminhos de Geografia 6, 185. Luz, L.D. ; Kalinovski, E. C. Z. ; Parolin, M. ; Souza Filho, E. E O Estágio Atual do Conhecimento sobre Fitólitos no Brasil. Revista Terrae Didatica 11, 52-64, Maack, R., Notas preliminares sobre clima, solos e vegetação do Estado do Paraná Arquivos de Biologia e Tecnologia III, Mofatto, M., Estudo multi/interdisciplinar de reconstrução da vegetação e clima do Parque Estadual da Serra do Mar-Núcleo Curucutu, São Paulo, SP no Quaternário tardio. Dissertação (Mestrado). Piracicaba, Centro de Energia Nuclear na Agricultura, Universidade de São Paulo, Piracicaba. Monteiro, M. R.; Pereira, J. S. R.; Rasbold, G. G.; Parolin, M.; Caxambu, M. G., Morfologia de fitólitos característicos de duas espécies de Arecaceae do Bioma Mata Atlântica: Bactris setosa Mart. e Geonoma schottiana Mart. Rev. Biol. Neotrop. 9, Osterrieth, M., Rol e importancia del estudio de las biomineralizaciones en Biología, Geología y Arqueología. Curso ministrado no 7th Interantional Meeting on Phytolith Research, Mar del Plata. Osterrieth, M.; Madella, M.; Zurro, D.; Alvarez, M.F., Taphonomical aspects of silica phytoliths in the loess sediments of the Argentinean Pampas. Quaternary International 193, Parolin, M.; Caxambu, M.G.; Cardoso, O., A espera do fogo: a lenta agonia do Cerrado de Campo Mourão PR. I Simpósio Nacional De Métodos e Técnicas da Geografia e XXII Semana de Geografia da Uem, pp Pereira, J.S.R.; Parolin, M.; Monteiro, M.R.; Caxambu, M.G.; Rasbold, G.G., Caracterização morfológicas dos fitólitos de Butia microspadix Burret (Arecaceae). Revista de Ciências Ambientais 7, Pereira, J.S.R.; Monteiro, M.R.; Parolin, M.; Caxambu, M.G., Characterization of Phytoliths in Eight Species of Arecaceae in the State of Paraná, Brazil. In: (Coe, H.H.G.; Osterrieth, M.), Synthesis of Some Phytolith Studies in South America (Brazil and Argentina). Nova Science Publishers, New York, pp Piperno, D. R., Phytoliths: a comprehensive guide for archaeologists and paleoecologists. Oxford, AltaMira Press, pp.238. Raitz, E., Coleção de referência de Silicofitólitos da flora do Sudoeste do Paraná: Subsídios para estudos paleoambientais. Dissertação (Mestrado). Francisco Beltrão, Pós- Graduação em Geografia, Universidade Estadual do Oeste do Paraná. Rasbold, G. G.; Parolin, M.; Caxambu, M. G., Avaliação das formas de fitólitos presentes em Cyperus giganteus Vahl (Cyperaceae). V Encontro de Produção Científica e Tecnológica EPCT. Rasbold, G. G.; Monteiro, M. R; Parolin, M ; Caxambu, M. G.; Pessenda, L. C. R., Caracterização dos tipos morfológicos de fitólitos presentes em Butia paraguayensis (Barb. Rodr.) L. H. Bailey (Arecaceae). Iheringia Série Botânica 66, Roderjan, C.V.; Galvão, F.; Kuniyoshi, Y.S.; Hatschbach, G.G.; As unidades fitogeográficas do Estado do Paraná. Ciência e Ambiente 24, Stevaux, J.C.; Parolin, M., Síntese do Período Quaternário do Estado do Paraná. In: (Parolin, M; Volkmer-Ribeiro; Leandrine, J.A.), Abordagem ambiental interdisciplinar em bacias hidrográficas no Estado do Paraná. Editora da Fecilcam, Campo Mourão 1, Suguio, K.; Absy, M.L.; Flexor, J.M.; Ledru, M.P; Martin, L.; Sifeddine, A.; Soubiès, F.; Turcq, 1271

17 B.; Ybert, J.P., The evolution of the continental and coastal environments during the last climatic cicle in Brazil (120 Ky. B.P.to Present). Boletim IG-USP Série Científica 24, Twiss, P.C.; Suess, E.; Smith, R.M., Morphological Classification of Grass Phytoliths. Soil Science Society of America Proceedings 33, Webb, E. A.; Longstaffe, F. J., The oxygen isotopic compositions of silica phytoliths and plant water in grasses: implications for the study of paleoclimate. Geochimica et Cosmochimica Acta 64, Zucol, A. F.; Brea, M.; Scopel, A., First record of fossil wood and phyolith assemblages of the Late Pleistocene in El Palmar National Park (Argentina). Journal of South American Earth Sciences 20,