Fatores de crescimento envolvidos no desenvolvimento de folículos pré-antrais



Documentos relacionados
Controle endócrino e local da foliculogênese em bovinos 1 Endocrine and local control of folliculogenesis in cattle

EFEITO DO TIPO DE SISTEMAS DE CULTIVO NO DESENVOLVIMENTO IN VITRO DE FOLÍCULOS PRÉ-ANTRAIS CAPRINOS ISOLADOS

Ciclo Sexual ou Estral dos Animais Domésticos Prof. Dr. Wellerson Rodrigo Scarano Departamento de Morfologia Instituto de Biociências de Botucatu

Rev Bras Reprod Anim, Belo Horizonte, v.31, n.2, p , abr./jun Disponível em

FOLICULOGÊNESE EM BOVINOS

Quais hormônios regulam a ovogênese?

Rev. Bras. Reprod. Anim., Belo Horizonte, v.34, n.1, p.3-20, jan./mar Disponível em

HISTOLOGIA. Folículos ovarianos

CARACTERIZAÇÃO ESTRUTURAL DO HORMÔNIO FOLÍCULO ESTIMULANTE E SEU PAPEL NA FISIOLOGIA DE CÉLULAS OVARIANAS

Mas por que só pode entrar um espermatozóide no óvulo???

O que é gametogênese?

Aspectos Fisiológicos do LH na Foliculogênese

Fatores reguladores da foliculogênese em mamíferos Regulatory factors of folliculogenesis in mammalian

Disciplina de Fisiologia Veterinária. GH e PROLACTINA. Prof. Fabio Otero Ascoli

FISIOLOGIA DO EIXO HIPOTÁLAMO - HIPÓFISE OVÁRIO. Rosy Ane de Jesus Pereira Araujo Barros

Rev. Bras. Reprod. Anim., Belo Horizonte, v.34, n.2, p.69-78, abr./jun Disponível em

Sistema Reprodutor e Tecnologia da Reprodução Medicamente Assistida

Desenvolvimento folicular inicial em bovinos Initial follicular development in cattle

Onde surge uma célula, existia uma célula prévia, exatamente como os animais só surgem de animais e as plantas de plantas. Rudolf Virchow, 1958

Carla Bianchini Ponchirolli INFLUÊNCIA DOS FATORES DE CRESCIMENTO NO DESENVOLVIMENTO FOLICULAR

Sistema Reprodutor e Tecnologia da Reprodução Medicamente Assistida

Necessidade de alerta à gravidez tardia

UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA FACULDADE DE MEDICINA VETERINÁRIA E ZOOTECNIA CAMPUS DE BOTUCATU

Classificação: valores

GAMETOGÊNESE MASCULINA: ESPERMATOGÊNESE ESPERMATOGÊNESE

HORMÔNIOS SEXUAIS SISTEMA ENDÓCRINO FISIOLOGIA HUMANA

SERVIÇO PÚBLICO FEDERAL MINISTÉRIO DA EDUCAÇÃO FUNDAÇÃO UNIVERSIDADE FEDERAL DE RONDÔNIA CAMPUS ROLIM DE MOURA CURSO DE MEDICINA VETERINÁRIA

FOLICULOGÊNESE: DA MIGRAÇÃO DAS CÉLULAS GERMINATIVAS PRIMORDIAIS À APLICAÇÃO DE TECNOLOGIAS REPRODUTIVAS EM MAMÍFEROS

EXPRESSÃO GÊNICA DOS FATORES DE CRESCIMENTO FIBROBLÁSTICO 7 E 10 (FGF-7 E FGF-10) AO LONGO DO DESENVOLVIMENTO FOLICULAR OVARIANO BOVINO

SISTEMA REPRODUTOR FEMININO. Professor: João Paulo

UNIVERSIDADE FEDERAL DO VALE DO SÃO FRANCISCO CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIA ANIMAL. Jamile Maiara da Silva Santos

EMBRIOLOGIA HUMANA. -Disciplina: Genética e Embriologia. -Profª: Ana Cristina Confortin -2014/1

Exercícios de Reprodução Comparada

42º Congresso Bras. de Medicina Veterinária e 1º Congresso Sul-Brasileiro da ANCLIVEPA - 31/10 a 02/11 de Curitiba - PR 1

ANNA CLARA ACCIOLY FERREIRA

A função básica do ciclo celular das células somáticas é duplicar todo o conteúdo de DNA...

BIOLOGIA - 1 o ANO MÓDULO 42 APARELHO REPRODUTOR FEMININO

O corpo humano está organizado desde o mais simples até o mais complexo, ou seja, do átomo microscópico ao complexo organismo humano macroscópico.

Aspectos da Sincronização de Estro em Bovinos de Acordo com a Fase do Ciclo Estral

Avanços, aplicações, limitações e perspectivas da tecnologia do ovário artificial de ruminantes

Importância dos fatores de crescimento locais na regulação da foliculogênese ovariana em mamíferos

Prohairin Novo Peptídeo Biomimético para Estímulo do Crescimento Capilar

Rev. Bras. Reprod. Anim., Belo Horizonte, v.35, n.4, p , out./dez Disponível em

Hormônios hipofisários e seu papel na foliculogênese Pituitary hormones and their role in folliculogenesis

GAMETOGÊNESE. especializadas chamadas de GAMETAS. As células responsáveis pela formação desses gametas são chamadas de GÔNIAS

A.P. Almeida 1,3, J.J.H. Celestino 1, M.V.A. Saraiva 1, J.R.V. Silva 2, J.R. Figueiredo 1. Resumo

OVÁRIOS. Fonte de gametas e hormônios

EXPRESSÃO DOS FATORES DE CRESCIMENTO FIBROBLÁSTICO 17 E 18 (FGF-17 E FGF-18) EM FOLÍCULOS ANTRAIS BOVINOS

Acta Scientiae Veterinariae ISSN: Universidade Federal do Rio Grande do Sul Brasil

endometriose Dr. Iúri Donati Telles de Souza

Regulação da foliculogênese e determinação da taxa de ovulação em ruminantes

SISTEMA REPRODUTOR. Sistema reprodutor feminino

Inovação e Tecnologia

GAMETOGÊNESES & SISTEMAS REPRODUTORES HUMANOS PROF. CARLOS FREDERICO

XII CURSO NOVOS ENFOQUES NA PRODUÇÃO E REPRODUÇÃO DE BOVINOS LEITE

Dinâmica folicular em éguas: aspectos intrafoliculares Follicular dynamics in mares: role of intrafollicular factors

FERTILIDADE DE CAPRINOS MOCHOS. Prof. Adelmo Ferreira de Santana Caprinocultura e Ovinocultura

Embriologia humana: primeira semana de desenvolvimento embrionário

7ª série / 8º ano 2º bimestre U. E. 10

EFEITO DOS MEIOS BÁSICOS DE CULTIVO, IGF-1 E GH, NO DESENVOLVIMENTO IN VITRO DE FOLÍCULOS PRÉ-ANTRAIS BOVINOS INCLUSOS EM TECIDO OVARIANO

Replicação Quais as funções do DNA?

UNIVERSIDADE ESTADUAL DO CEARÁ PRÓ-REITORIA DE PÓS-GRADUAÇÃO E PESQUISA FACULDADE DE VETERINÁRIA PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS VETERINÁRIAS

GAMETOGÊNESE DIFERENCIAÇÃO DOS GAMETAS. Profª Msc. Tatiane da Silva Poló

FISIOLOGIA DO SISTEMA REPRODUTOR FEMININO

Punção Folicular, Denudação e Classificação Oocitária

SISTEMA ENDÓCRINO - 1 Figuras desta aula são do livro de Silverthorn

P R O G R A M A D E E N S I N O. Carga horária total: 60 Teórica: 45 Prática: 15 Estágio:

Professor Fernando Stuchi

Hipófise (ou glândula Pituitária)

RESENHA: Novas perspectivas na luta contra a dependência química provocada pela cocaína.

FOLICULOGÊNESE EM OVELHAS: FATORES DE ESTÍMULO E INIBIÇÃO DO CRESCIMENTO FOLICULAR

REPRODUÇÃO GERAL NOS MAMÍFEROS DOMÉSTICOS Ismar Araújo de Moraes Fisiologia Veterinária

Bom trabalho! FICHA DE TRABALHO BIOLOGIA 12ºANO. Grupo I ESCOLA SECUNDÁRIA DOM MANUEL MARTINS 2007/08. Tigres vs. Alunos (Descubra as diferenças!

FECUNDAÇÃO E BLOQUEIO DA POLISPERMIA

Bases Moleculares da Obesidade e Diabetes. IGF- I System. Carlos Cas(lho de Barros

NUPEEC. Núcleo de Pesquisa, Ensino e Extensão em Pecuária

UTILIZAÇÃO DO POTENCIAL DE OÓCITOS IMATUROS INCLUSOS EM FOLÍCULOS PRÉ-ANTRAIS NA REPRODUÇÃO DE MAMÍFEROS


Fisiologia Endócrina do Sistema Reprodutivo

ANATOMIA E FISIOLOGIA DO SISTEMA REPRODUTOR FEMININO. Curso Inicial & Integração Novos Representantes

Ciclo Menstrual. Uma das queixas mais comuns, na clínica ginecológica, são as irregularidades do ciclo menstrual. 400 a 500 óvulos durante a sua vida.

Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto - Universidade de São Paulo

A neurohipófise tem comunicação

Raniê Ralph GO. 24 de Setembro de Professor Sobral. Ciclo Menstrual

AVANÇOS NO ISOLAMENTO E SISTEMAS DE CULTIVO DE FOLÍCULOS PRÉ-ANTRAIS

Associação Entre Capsaicina e Isoflavonas é Eficaz na Alopecia

Histologia e Embriologia do Sistema Genital Feminino

PUBERDADE. Fase fisiológica com duração de 2 a 5 anos, durante a qual ocorre a maturação sexual

Todos sabemos a importância de uma boa noite de sono. O que nem todos sabem é que alternância entre o dormir e estar acordado resulta da ação

Estimulação Ovariana. Agonistas. Dr. Eduardo Pandolfi Passos

Unidade 1 - REPRODUÇÃO E MANIPULAÇÃO DA FERTILIDADE

FATORES HOMÓLOGOS AOS FATORES DE CRESCIMENTO FIBROBLÁSTICOS SÃO EXPRESSOS EM FOLÍCULOS ANTRAIS E CORPOS LÚTEOS BOVINOS ISABELA BAZZO DA COSTA

Efeito da concentração de ácido 3-indol-acético na ativação e crescimento in vitro de folículos pré-antrais ovinos

( Com relação às alterações hormonais que ocorrem no ciclo menstrual, é correto afirmar que

EXERCÄCIOS DE HISTOLOGIA. 1- (PUC-2006) Associe o tipo de tecido animal Å sua correlaçéo:

EFEITO DE DIFERENTES CONCENTRAÇÕES DE HORMÔNIO FOLÍCULO-ESTIMULANTE RECOMBINANTE SOBRE O DESENVOLVIMENTO

Excreção. Manutenção do equilíbrio de sal, água e remoção de excretas nitrogenadas.

Transcrição:

Fatores de crescimento envolvidos no desenvolvimento de folículos pré-antrais Viviane Bento da Silva Carmem Estefânia Serra Neto Zúccari Eliane Vianna Costa e Silva RESUMO O ovário dos mamíferos é constituído por milhares de folículos pré-antrais, entretanto cerca de 90% deles nunca atingem a maturidade, sendo seu uso uma alternativa para os programas de reprodução assistida como a produção in vitro de embriões. Porém, um dos fatores limitantes ao emprego de folículos pré-antrais como doadores de ovócitos é a escassez de informações sobre os fatores que regulam as diferentes etapas da foliculogênese. Apesar do desenvolvimento de folículos antrais ter sido amplamente descrito, informações concernentes à fisiologia dos folículos préantrais envolvendo os fatores que promovem a ativação dos folículos primordiais e o mecanismo responsável pelo crescimento de folículos primários e secundários, é pouco conhecido. Acreditase que o desenvolvimento destes folículos independe das gonadotrofinas, mas é influenciado por fatores intraovarianos, como kit ligand (KL) ou fator de células tronco (SCF), fator de crescimento e diferenciação-9 (GDF-9), proteínas morfogenéticas ósseas (BMP-15), fator de crescimento semelhante à insulina-1 (IGF-1), fator de crescimento fibroblástico (FGF), fator de crescimento de queratinócitos (KGF), fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF), fator de crescimento epidermal (EGF), peptídeo intestinal vasoativo (VIP) e ativina, dentre outros. Desta forma, a presente revisão aborda os mecanismos de controle da fase pré-antral, com foco nos fatores de crescimento envolvidos no desenvolvimento in vitro de folículos pré-antrais. Palavras-chave: Fatores intraovarianos. Folículo primordial. Foliculogênese. Growth factors involved in the development of preantral follicles ABSTRACT The mammalian ovary consists of thousands of preantral follicles, but approximately 90% of these never reach maturity, being its use an alternative for the programs of assisted reproduction as in vitro production of embryos. But a major factor limiting the use of preantral follicles as an oocyte donor in these programs is the lack of information about the factors that regulate the different stages of folliculogenesis. Despite the development of antral follicles has been widely described, information concerning the physiology of preantral follicles, factors that promote the activation of primordial follicles and the mechanism responsible for the growth of primary and secondary follicles, is little known. However, it is believed that the development of these follicles is not dependent on gonadotrophins but it is influenced by intraovarian factors Viviane Bento da Silva é Mestranda do Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal. FAMEZ/UFMS. Avenida Senador Felinto Müller, 2443, Bairro Ipiranga. Campo Grande/MS, Brasil. CEP 79070-900. Caixa Postal 549. E-mail: biobento@yahoo.com.br Carmem Estefânia Serra Neto Zúccari e Eliane Vianna Costa e Silva são Profas. Dras. do Programa de Pós- Graduação em Ciência Animal. FAMEZ/UFMS. E-mails: zuccari@nin.ufms.br; licsilva@nin.ufms.br Veterinária em Foco Veterinária Canoas em Foco, v.8 v.8, n.2, jan./jun. p.121-131 2011 jan./jun. 2011 121

such as kit ligand (KL) or stem cell factor (SCF), growth differentiation factor-9 (GDF-9), bone morphogenetic protein (BMP-15), growth factor-1 insulin-like (IGF-1), fibroblast growth factor (FGF), growth factor keratinocyte (KGF), endothelial growth factor (VEGF), epidermal growth factor (EGF), vasoactive intestinal peptide (VIP) and activin. In this sense, this review highlights the mechanisms controlling the preantral, with main focus on growth factors involved in the in vitro development of preantral follicles. Keywords: Intraovarian factors. Primordial follicle. Folliculogenesis. INTRODUÇÃO O tecido ovariano apresenta uma pequena quantidade de folículos antrais. Dessa forma, seu aproveitamento em programas de reprodução assistida limita o número de gametas femininos disponíveis, assim como a disseminação do material genético de reprodutoras superiores (CUSHMAN et al., 2002). Uma alternativa é a utilização dos folículos pré-antrais presentes aos milhares nos ovários, os quais podem ser recuperados e criopreservados ou cultivados (TELFER, 1996). Portanto, torna-se necessário o estudo da foliculogênese a fim de se compreenderem os mecanismos e fatores envolvidos in vivo nesse processo, para seu emprego no desenvolvimento destes folículos in vitro. A foliculogênese inicia-se com a ativação dos folículos primordiais, processo no qual saem do estádio de quiescência para iniciarem seu crescimento. Porém, os mecanismos que controlam esse processo e a continuidade do crescimento folicular ainda são pouco conhecidos. Sabe-se que em mamíferos o crescimento folicular contínuo é controlado tanto por hormônios gonadotróficos e somatotróficos, como por fatores de crescimento que agem de forma autócrina ou parácrina (MARTINS et al., 2008). Nesse contexto, a identificação e a compreensão das diferentes substâncias envolvidas na promoção do crescimento de folículos pré-antrais são aspectos importantes para subsidiar o desenvolvimento de um sistema de cultivo eficiente que desencadeie este processo in vitro (DEMEESTERE et al., 2005). Com o objetivo de facilitar a compreensão da foliculogênese, serão abordados aspectos relacionados à ação de fatores de crescimento envolvidos na sua ativação e maturação. DESENVOLVIMENTO A foliculogênese compreende o processo de formação, crescimento e maturação folicular, iniciando com o folículo primordial e culminando com o estádio de folículo pré-ovulatório (SAUMANDE, 1981). O ovócito, por sua vez, não é um mero receptor de ações parácrinas oriundas das células vizinhas na fase pré-antral e durante a foliculogênese. Ele participa ativamente na indução da proliferação e diferenciação das células da granulosa (GILCHRIST et al., 2004). Para tanto, a comunicação intercelular é proporcionada por processos citoplasmáticos trans-zonais (TZP) e pela secreção de mediadores parácrinos. 122

Os TZPs são extensões das células da granulosa que penetram através da zona pelúcida e atingem a membrana do ovócito, onde junções do tipo gap permitem o transporte bidirecional de moléculas reguladoras (ALBERTINI et al., 2001). Já a comunicação parácrina entre ovócito e células da granulosa, embora também bidirecional, é mediada por vários fatores de crescimento, produzidos por ambos os tipos celulares, como kit ligand (KL) ou fator de células tronco (SCF), fator de crescimento e diferenciação-9 (GDF-9), proteínas morfogenéticas ósseas (BMP-15), fator de crescimento semelhante à insulina-1 (IGF-1), fator de crescimento fibroblástico (FGF), fator de crescimento de queratinócitos (KGF), fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF), fator de crescimento epidermal (EGF), peptídeo intestinal vasoativo (VIP) e ativina, dentre outros (FIGUEIREDO et al., 2002). Fatores que afetam o crescimento de folículos pré-antrais in vitro Kit ligand (KL) ou fator de células tronco (SCF) O KL é derivado das células da granulosa e seu receptor c-kit é expresso pelo ovócito e células da teca (MAYERHOFER et al., 1997), um excelente exemplo de como as interações parácrinas entre ovócito e células somáticas controlam muitos aspectos da formação e desenvolvimento folicular. Trabalhos realizados com ovários de diferentes espécies mostram que o KL e o c-kit são importantes para a migração, proliferação e sobrevivência de células germinativas primordiais (ZAMA et al., 2005), crescimento e sobrevivência do ovócito (JIN et al., 2005), proliferação das células da granulosa (OTSUKA; SHIMASAKI, 2002), manutenção da competência meiótica (ISMAIL et al., 1997), recrutamento de células da teca e regulação da esteroidogênese (HUTT et al., 2006). Em estudo com caprinos, Silva et al. (2006a) relataram a presença da proteína e do RNAm para o KL, expressos nas células da granulosa, em todos os estádios de desenvolvimento folicular, bem como no corpo lúteo, superfície do epitélio ovariano e tecido medular. A importância da interação c-kit/kl para as fases iniciais da foliculogênese pré-antral foi demonstrada por estudos em que a neutralização do receptor c-kit, por imunização ou mutação inativadora do gene, interrompeu o desenvolvimento folicular (KISSEL et al., 2000). Fator de crescimento e diferenciação-9 (GDF-9) O GDF-9 é uma proteína homodimérica, secretada pelo ovócito, pertencente à família dos fatores de transformação do crescimento TGF-β (CHANG et al., 2002). Em ratas promove o crescimento de folículos primários e a proliferação de células da teca (NILSSON; SKINNER, 2002), enquanto em humanos estimula a manutenção da viabilidade folicular, a proliferação de células da granulosa e a sobrevivência e progressão dos folículos ao estádio secundário, após 7 dias de cultivo (HREISSON et al., 2002). 123

Wang e Roy (2004) demonstraram que 10 ng/ml de GDF-9 influenciam a expressão do KL e estimulam o crescimento de folículos primordiais, sendo que em altas doses (200 ng/ml) aumentam a proporção de folículos secundários de hamster. Já em camundongos a deleção do gene GDF-9 causou infertilidade, com foliculogênese bloqueada no estádio primário (DONG et al., 1996). O RNAm para o GDF-9 tem sido localizado em ovócito de bovino, ovino (BODENSTEINER et al., 1999) e caprino (SILVA et al., 2004b). A sua expressão em ovócitos de folículos primordiais de ovelhas e cabras levantou a hipótese de que o GDF-9 é essencial para a ativação de folículos primordiais e seu subsequente desenvolvimento. Proteína morfogenética óssea-15 (BMP-15) Estudos in vitro têm demonstrado que a BMP-15 promove a proliferação das células da granulosa e estimula o desenvolvimento de folículos primordiais e primários em roedores, ou seja, é um importante regulador da mitose das células da granulosa e do desenvolvimento folicular inicial (FORTUNE, 2003). As vias de sinalização do KL, BMP-15 e GDF-9 interagem e se modulam reciprocamente. Enquanto a BPM-15 estimula a expressão do KL, este inibe a expressão da BMP-15, enquanto o GDF-9 parece inibir a expressão do KL nas células da granulosa (JOYCE et al., 2000). O bloqueio da sinalização c-kit/kl, em sistema de cocultivo de células da granulosa e ovócitos, suprimiu a proliferação das células da granulosa induzida pela BMP-15, sugerindo que a BMP-15, via ativação do KL, induz a produção de mitógenos ovocitários, dentre eles o GDF-9 (OTSUKA; SHIMASAKI, 2002). Sendo assim, propôs-se a hipótese de que o desenvolvimento folicular pré-antral seria iniciado pela interação do KL com a BMP-15, enquanto que o GDF-9 seria secretado posteriormente por ovócitos inteiramente crescidos para promover proliferação das células da granulosa e modular a ação do KL (SHIMASAKI et al., 2003). Fator de crescimento semelhante à insulina-1 (IGF-1) Em ovários de suínos e roedores o IGF-1 tem sido localizado nas células da granulosa de folículos antrais saudáveis (ZHOU et al., 1996), estando seu receptor presente em células da granulosa de folículos primários, secundários e antrais (MONGET et al., 1989). O IGF-1, adicionado durante o cultivo in vitro de folículos pré-antrais, estimulou o crescimento folicular em humanos (LOUHIO et al., 2000) e bovinos (GUTIERREZ et al., 2000). Em ovinos estimula a proliferação das células da granulosa de pequenos folículos (1-3 mm), mas não de folículos grandes (> 5 mm), por outro lado, estimula a secreção de progesterona pelas células da granulosa apenas de folículos grandes (MONGET; BONDY, 2000). 124

Em ratos, o IGF-1 aumentou significativamente o diâmetro folicular e o conteúdo de DNA. A análise desses folículos, pela microscopia eletrônica de transmissão, mostrou que as microvilosidades entre ovócito e células da granulosa, como as junções gap entre células foliculares aumentaram quando os mesmos foram cultivados na presença de IGF-1, sugerindo que este fator de crescimento promove a manutenção da integridade funcional dos folículos (ZHAO et al., 2001). Fator de crescimento fibroblástico (FGF) O FGF influencia o desenvolvimento folicular sendo o FGF-2 (FGF básico) o mais investigado. O FGF-2 é importante na regulação de várias funções como mitose (ROBERTS; ELLIS, 1999), esteroidogênese (VERNON; SPICER, 1994) e diferenciação das células da granulosa (ANDERSON; LEE, 1993). Van Wezel et al. (1995), trabalhando com ovário bovino, localizaram o FGF-2 nos ovócitos de folículos primordiais e primários, em células da granulosa e da teca de folículos pré-antrais em crescimento e antrais. Os receptores para FGF-2 estão localizados, principalmente, na camada das células da granulosa (WANDJI et al., 1992). Em bovinos, após 6 dias de cultivo in vitro, o FGF-2 (50 ng/ml) promoveu o aumento da multiplicação das células da granulosa e do diâmetro folicular (WANDJI et al., 1996). Em caprinos, Matos et al. (2006) relataram que 50 ng/ml de FGF-2, durante 5 dias de cultivo, preservaram a viabilidade folicular e o aumento significativo dos diâmetros ovocitário e folicular. Fator de crescimento de queratinócitos (KGF) O KGF é produzido pelas células mesenquimais, faz parte da família dos FGF, conhecido como FGF-7, estimula a mitose das células epiteliais (FINCH et al., 1989) e atua por meio de seus receptores do tipo FGFR-2. Estudos têm documentado que o KGF é produzido pelas células da teca de folículos antrais e influencia o crescimento das células da granulosa (PARROT; SKINNER, 1998). Outros trabalhos demonstraram que este fator também estimula o desenvolvimento folicular, pois, quando os ovários de ratas de 4 dias de idade foram cultivados na presença de 50 ng/ml, houve um aumento na transição dos folículos primordiais para primários (SKINNER, 2005). Fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF) O VEGF é um dos responsáveis pela angiogênese folicular, pois atua estimulando a mitose de células endoteliais e aumenta a permeabilidade vascular (REDMER; REYNOLDS, 1996). 125

As gonadotrofinas, em ratas, estimulam a produção de VEGF pelas células da granulosa (KOOS, 1995), enquanto em humanos esse fator é sintetizado pelas células da teca e granulosa (YAMAMOTO et al., 1997), sendo expressos nelas seus receptores Flk-1 e Flk-1/KDR. SO-YOUNG et al. (2006) demonstraram que o cultivo in vitro durante 24 horas, em 50 ng/ml de VEGF, antes da criopreservação das células da granulosa de ratas, reduziu os danos pela inibição da apoptose. A administração de 500 ng/ml, diretamente nos ovários de ratas, aumentou significativamente, após 48 horas, a proporção de folículos primários e secundários pequenos (DANFORTH et al., 2001). Já em bovinos, o VEGF (10 ng/ml) estimula a transição de folículos primários para secundários, após 10 dias de cultivo (YANG; FORTUNE, 2007). Fator de crescimento epidermal (EGF) A proteína EGF tem sido encontrada no ovócito e células da granulosa de folículos nos estádios iniciais e avançados de desenvolvimento (suíno SINGH et al., 1995; caprino SILVA et al., 2006b), enquanto o receptor EGF (EGF-R) está localizado na membrana celular das células da granulosa, teca e intersticiais e, no ovócito, em todos os estádios de desenvolvimento folicular (CARPENTER, 1999). Estudos mostraram que o EGF estimula a proliferação das células da granulosa de folículos pré-antrais, a transição de folículos suínos do estádio primário para secundário (MORBECK et al., 1993), o aumento do diâmetro de folículos préantrais de bovinos (GUTIERREZ et al., 2000) e promove a ativação de folículos primordiais ovinos e a manutenção da viabilidade por até 6 dias em cultivo (ANDRADE et al., 2005). O EGF (10 ng/ml) adicionado ao meio de cultivo de folículos pré-antrais suínos inibiu a apoptose das células da granulosa e levou a um aumento da formação do antro (MAO et al., 2004). Quando usado em caprinos o EGF (50 ng/ml) preservou a viabilidade ovocitária (ZHOU; ZHANG, 2005) e, numa concentração mais elevada (100 ng/ml), teve efeito benéfico sobre o crescimento de ovócitos de folículos primários (SILVA et al., 2004a). Peptídeo intestinal vasoativo (VIP) O VIP é considerado um neuropeptídeo que já foi identificado em fibras nervosas de folículos ovarianos de roedores (AHMED et al., 1986) e bovinos (HULSHOF et al, 1994). Estudos têm demonstrado que o VIP está envolvido na regulação da esteroidogênese (ZHONG; KASSON, 1994), promove o acúmulo de AMPc (HEINDEL et al., 1996), a maturação ovocitária (APA et al., 1997) e a sobrevivência das células da granulosa por inibição da apoptose (LEE et al., 1999). 126

Ativina O papel da ativina no desenvolvimento de folículos pré-antrais é confirmado por seu efeito estimulante do crescimento folicular e proliferação das células da granulosa, ação esta dependente de sua concentração (THOMAS et al., 2003). A ativina age sinergicamente com o FSH no desenvolvimento folicular. Em ovinos, também se demonstrou que a ativina promove o crescimento de folículos pré-antrais até alcançarem o estádio de formação do antro (THOMAS et al., 2003). Trabalhos de Silva et al. (2006a) indicaram que a ativina-a é capaz de promover a manutenção da viabilidade folicular e estimular o crescimento de folículos inclusos em tecido ovariano de caprinos, bem como de folículos primários isolados. CONCLUSÃO A ativação e o crescimento de folículos pré-antrais é um processo dependente de diversos fatores, que podem agir sobre o ovócito, ou nas células da granulosa e da teca. A atividade destes fatores pode ser isolada ou combinada, e até mesmo modular o efeito de hormônios, o que demonstra que o crescimento folicular é regulado por uma complexa interação entre diversas substâncias intra e extraovarianas. Sendo assim, é imprescindível o desenvolvimento de novas pesquisas, na tentativa de elucidar os mecanismos envolvidos na foliculogênese ovariana, principalmente de espécies domésticas, visando disponibilizar ovócitos viáveis e maturos para utilização nas diferentes biotécnicas de multiplicação animal. REFERÊNCIAS AHMED, C.E.; DEES, W.L.; OJEDA, S.R. The immature rat ovary is innervated by vasoactive intestinal peptide (VIP)-containing fibers and responds to VIP with steroid secretion. Endocrinology, v.118, p.1682-1689, 1986. ALBERTINI, D.F. et al. Cellular basis for paracrine regulation of ovarian follicle development. Reproduction, v.121, p.647-53, 2001. ANDERSON E; LEE G.Y. The participation of growth factors in simulating the quiescent, proliferative, and differentiative stages of rat granulosa cells grown in a serum-free medium. Tissue Cell, v.25, p.49-72, 1993. ANDRADE, E.R. et al. Interactions of indole acetic acid with EGF and FSH in the culture of ovine preantral follicles. Theriogenology, v.64, p.1104-1113, 2005. APA, R. et al. Effect of pituitary adenylate cyclase-activating peptide on meiotic maturation in follicle-enclosed, cumulus-enclosed, and denuded rat oocytes. Biol. Reprod., v.57, p.1074-1079, 1997. BODENSTEINER, K.J. et al. Molecular cloning of de ovine growth/differentiation factor-9 gene and expression of growth differentiation factor-9 in ovine and bovine ovaries. Biol. Reprod., v.60, p.381-386, 1999. 127

CARPENTER, G. Employment of the epidermal growth factor receptor in growth factorindependent signaling pathways. J. Cell Biol., v.146, p.697-702, 1999. CHANG, H.; BROWN, C.W.; MATZUK, M.M. Genetic analysis of the mammalian TGF-ß superfamily. Endocr. Rev., v.23, p.787-823, 2002. CUSHMAN, R.A.; WAHL, C.M.; FORTUNE, J.E.; Bovine ovarian cortical pieces grafted to chick embryonic membranes: a model for studies on the activation of primordial follicles. Hum. Reprod., v.17, p.48 54, 2002. DANFORTH, D.R. et al. Vascular endothelial growth factor stimulates preantral follicle growth in the rat ovary. Biol. Reprod., v.68, p.1736-1741, 2001. DEMEESTERE, I. et al. Impact of various endocrine and paracrine factors on in vitro culture of preantral follicles in rodents. Reproduction, v.130, p.147-156, 2005. DONG, J. et al. Growth differentiation factor-9 is required during early ovarian folliculogenesis. Nature, v.383, p.531-535, 1996. FIGUEIREDO JR; RODRIGUES, A.P.R.; AMORIM, C.A. Manipulação de oócitos inclusos em folículos pré-antrais- MOIFOPA. In: Gonçalves, P.B.D.; Figueiredo, JR; Freitas V.J.F. Biotécnicas aplicadas à reprodução animal. São Paulo: Varela, v1, p.227-260, 2002. FINCH, P.W. et al. Human KGF is FGF-related with properties of a paracrine effector of epithelial cell growth. Science, v.245, p.752-755, 1989. FORTUNE, J.E. The early stages of follicular development, p. activation of primordial follicles and growth of preantral follicles. Anim. Reprod. Sci., v.78, p.135-163, 2003. GILCHRIST, R.B.; RITTER, L.J.; ARMSTRONG, D.T. Oocyte-somatic cell interactions during follicle development in mammals. Anim. Reprod. Sci., v.82-83, p.431-446, 2004. GUTIERREZ, C.G. et al. Growth and antrum formation of bovine preantral follicles in long-term culture in vitro. Biol Reprod, v.62, p.1322-1328, 2000. HEINDEL, J.J. et al. Novel hypothalamic peptide, pituitary adenylate cyclase-activating peptide, regulates the function of rat granulosa cells in vitro. Biol. Reprod., v.54, p.523-530, 1996. HREISSON, J.G. et al. Growth differentiation factor-9 promotes the growth, development and survival of human ovarian follicles in organ culture. J. Clin. Endocrinol. Metab., v.87, p.316-321, 2002. HULSHOF, S.C.J. et al. Isolation and Characterization of preantral follicles from foetal bovine ovaries. Vet Quart, v.2, n.16, p.78-80, 1994. HUTT, K.; McLAUGHLIN, E.A.; HOLLAND, M.K. KL and KIT have diverse role during mammalian oogenesis. Mol. Hum. Reprod., v.12, p. 61-69, 2006. ISMAIL, R,S.; DUBE, M.; VANDERHYDEN, B.C. Hormonally regulated expression and alternative splicing of kit ligand may regulate kit-induced inhibition of meiosis in rat oocytes. Dev. Biol., v.184, p.333-342, 1997. JIN, X. et al. Anti-apoptotic action of stem cell factor on oocytes in primordial follicles and its signal transduction. Mol. Reprod. Dev., v.70, p.82-90, 2005. JOYCE, I.M. et al. Comparison of recombinant growth factor-9 and oocyte regulation of Kit ligand messenger ribonucleic acid expression in mouse ovarian follicles. Biol. Reprod., v.63, p.1669-1675, 2000. 128

KISSEL, H. et al. Point mutation in kit receptor tyrosine kinase reveals essential roles for kit signaling in spermatogenesis and oogenesis without affecting other kit responses. Embo J., v.19, p.1312-1326, 2000. KOOS, R.D. Increased expression of vascular endothelial growth/permeability factor in the rat ovary following an ovulatory gonadotropin stimulus, p. potential roles in follicle rupture. Biol. Reprod., v.52, p.1426-1435, 1995. LEE, J. et al. Gonadotropin stimulation of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP) messenger ribonucleic acid in the rat ovary and the role of PACAP as a follicle survival factor. Endocrinology, v.140, p.818-826, 1999. LOUHIO, H. et al. The effects of insulin, and insulin-like growth factors I and II on human ovarian follicles in long-term culture. Mol. Hum. Reprod., v.6, p.694-698, 2000. MAO, J. et al. Effect of EGF and IGF-1 on porcine preantral follicular growth, antrum formation, and stimulation of granulosa cell proliferation and suppression of apoptosis in vitro. J. Anim. Sci., v.82, p.1967-1975, 2004. MARTINS, F. S. et al. Fatores reguladores da foliculogênese em mamíferos. Rev. Bras. Repro. Anim. v.32, n.1, p.36-49, 2008. MATOS, M.H.T. et al. Efeito do fator de crescimento fibroblástico-2 sobre o cultivo in vitro de folículos pré-antrais caprinos. Acta Sci. Vet., v.34, p.265, 2006. MAYERHOFER, A. et al. A role for neurotransmitters in early follicular development: induction of functional follicle-stimulating hormone receptors in newly formed follicles of the rat ovary. Endocrinology. v.138, p.3320 3329, 1997. MONGET, P.; BONDY, C. Importance of the IGF system in early folliculogenesis. Mol. Cel. Endoc., v.163, p.89-93, 2000. MONGET, P.; MONNIAUX, D.; DURAND, P. Localization, characterization and quantification of insulin-like growth factor-i-binding sites in the ewe ovary. Endocrinology, v.125, p.2486-2493, 1989. MORBECK, D.E.; FLOWERS, W.L.; BRITT, J.H. Response of porcine granulosa cells isolated from primary and secondary follicles to FSH, 8-bromo-cAMP and EGF in vitro. J. Reprod. Fertil., v.99, p.577-584, 1993. NILSSON, E.E.; SKINNER, M.K. Growth and differentiation factor-9 stimulates progression of early primary but not primordial rat ovarian follicle development. Biol. Reprod., v.67, p.1018-1024, 2002. OTSUKA, F.; SHIMASAKI, S. A negative feedback system between oocyte bone morphogenetic protein 15 and granulosa cell kit ligand, p. its role in regulating granulose cell mitosis. Proc. Natl. Acad. Sci., v.99, p.8060-8065, 2002. PARROT, J.A.; SKINNER, M.K. Thecal cell-granulosa cell interactions involve a positive feedback loop among keratinocyte growth factor, hepatocyte growth factor, and kit ligand during ovarian follicular development. Endocrinology, v.139, p.2240-2245, 1998. REDMER, D.; REYNOLDS, L. Angiogenesis in the ovary. Biol. Reprod., v.1, p.182 192, 1996. ROBERTS, R.D.; ELLIS, R.C.L.; Mitogenic effects of fibroblast growth factors on chicken granulosa and theca cells in vitro. Biol. Reprod., v.61, p.1387-92, 1999. SAUMANDE, J. Ovogenèse et folliculogenèse. Rec. Méd. Vét., v.157, p.29-38. 1981. 129

SHIMASAKI, S. et al. The role of bone morphogenetic proteins in ovarian function. Reproduction, v.61, p.323-337, 2003. SILVA, J.R.V. et al. The activin-follistatin system and in vitro early follicle development in goats. J. Endocrinol., v.189, p.113-125, 2006a. SILVA, J.R.V.; VAN DEN HURK, R.; FIGUEIREDO, J.R. Expression of mrna and protein localization of epidermal growth factor and its receptor in goat ovaries. Zygote, v.14, p.107-117, 2006b. SILVA, J.R.V. et al. Influences of FSH and EGF on primordial follicles during in vitro culture of caprine ovarian cortical tissue. Theriogenology, v.61, p.1691-1704, 2004a. SILVA, J.R.V. et al. Expression of Growth Differentiation Factor 9 (GDF9), Bone Morphogenetic Protein 15 (BMP15) and BMP Receptors in the ovaries of goats. Mol. Reprod. Dev., v.70, p.11-19, 2004b. SINGH, B. et al. Gene expression and peptide localization for epidermal growth factor receptor and its ligands in porcine luteal cells. Mol. Cell Endocrinol., v.113, p.137-143, 1995. SKINNER, M.K. Regulation of primordial follicle assembly and development. Hum. Reprod. Update, v.11, p.461-471, 2005. SO-YOUNG, S. et al. Protective effect of vascular endothelial growth factor (VEGF) in frozen-thawed granulosa cells is mediated by inhibition of apoptosis. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol., v.125, p.233-238, 2006. TELFER, E.E. The development of methods for isolation and culture of preantral follicles from bovine and porcine ovaries. Theriogenology, v.45, p.101-110, 1996. THOMAS, F. H.; ARMSTRONG, D. G.; TELFER, E. E. Activin promotes oocyte development in ovine preantral follicles in vitro. Reprod. Biol. Endocrinol. v.1, p.76, 2003. VAN WEZEL, I.L. et al. Immunohistochemical localization of basic fibroblast growth factor in bovine ovarian follicles. Mol. Cell Endocrinol., v.115, p.133-140, 1995. VERNON, R.K.; SPICER, L.J. Effects of basic fibroblast growth factor and heparin on follicle-stimulating hormone-induced steroidogenesis by bovine granulosa cells. J. Anim. Sci., v.72, p.2696-702, 1994. WANDJI, S.; FORTIER, M.A.; SIRARD, M. Differential response to gonodotrophins and prostaglandin E 2 in ovarian tissue during prenatal and postnatal development in cattle. Biol. Reprod., v.46, p.1034-1041, 1992. WANDJI, S.A.; EPPIG, J.J.; FORTUNE, J.E. FSH and growth factor affect the growth and endocrine function in vitro of granulosa cells of bovine preantral follicles. Theriogenology, 45, p.817-832, 1996. WANG, J.; ROY, S.K. Growth differentiation factor-9 and stem cell factor promote primordial follicle formation in the hamster, p. modulation by follicle-stimulating hormone. Biol. Reprod., v.70, p.577 585, 2004. YAMAMOTO, S. et al. Expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) during folliculogenesis and corpus luteum formation in the human ovary. Gynecol. Endocrinol., v.11, p.371 381, 1997. 130

YANG, M.Y.; FORTUNE, J.E. Vascular endothelial growth factor stimulates the primary to secondary follicle transition in bovine follicles in vitro. Mol. Reprod. Dev., v.74, p.1095-1104, 2007. ZAMA, A.M.; HUDSON, F.P.; BEDELL, M.A. Analysis of hypomorphic KitlSl mutants suggests different requirements for KITL in proliferation and migration of mouse primordial germ cells. Biol. Reprod., v.73, p.639-647, 2005. ZHAO, J. et al. Effect of activin A on in vitro development of rat preantral follicles and localization of activin A and activin receptor II. Biol. Reprod., v.65, p.967-977, 2001. ZHONG, Y.; KASSON, B.G. Pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide stimulates steroidogenesis and adenosine 3, 5-monophosphate accumulation in cultured rat granulosa cells. Endocrinology, v.135, p.207-213, 1994. ZHOU, H.; ZHANG, Y. Effect of growth factors on in vitro development of caprine preantral follicle oocytes. Anim. Reprod. Sci., v.90, p.265-272, 2005. ZHOU, J. et al. Selective expression of insulin-like growth factor system components during porcine ovary follicular selection. Endocrinology, v.137, p.4893-4901, 1996. Recebido em: set. 2010 Aceito em: jan. 2011 131