CHAMADA PÚBLICA I CURSO DE VERÃO AMAZÔNICO

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1 CHAMADA PÚBLICA I CURSO DE VERÃO AMAZÔNICO A FUNDAÇÃO OSWALDO CRUZ RONDÔNIA E O INSTITUTO DE PESQUISA EM PATOLOGIAS TROPICAIS (IPEPATRO) tornam pública a abertura de inscrições e estabelecem normas relativas à participação no I Curso de Verão Amazônico. O curso teórico-prático discutirá assuntos relevantes relacionados à área de pesquisa em saúde no Brasil, com ênfase em métodos e técnicas utilizadas para o estudo, prevenção e controle de doenças tropicais. 1 OBJETIVOS O I Curso de Verão Amazônico visa apresentar as metodologias utilizadas na pesquisa básica, conceituando e contextualizando os diferentes assuntos frente a sua importância para a saúde no Brasil. O curso contará com a participação das equipes da Fiocruz Rondônia, Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM), além do Centro de Estudos de Biomoléculas Aplicadas a Saúde (CeBio) e Laboratório de Bioecologia de Insetos (LaBein) da Universidade Federal de Rondônia. 2 DO CURSO 2.1 ESTRUTURA E LOCAL DO CURSO O Curso de Verão Amazônico será realizado durante uma semana, com carga horária de 40h. As aulas serão ministradas por alunos de pós-graduação do Programa de Pós- Graduação em Biologia Experimental, Programa de Pós-Graduação da Rede Bionorte ou vinculados as Instituições. As atividades teóricas e práticas serão realizadas nas dependências da Fiocruz Rondônia, CEPEM, CEBio e Labein, sendo de responsabilidade dos candidatos os custos com alimentação e transporte. Serão fornecidos material didático e equipamentos de proteção individual a serem utilizados nas aulas práticas. Os alunos devem se apresentar devidamente trajados (calça tipo jeans, tênis ou sapato completamente fechado, jaleco de manga longa). Para o desenvolvimento do curso, o aluno será encaminhado a uma das opções de interesse apontadas no ato de sua inscrição, conforme detalhado em anexo (ANEXO I).

2 1 MICROBIOLOGIA Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Drª. Najla Benevides Matos 2 QUIMIOTERAPIA APLICADA A LEISHMANIOSE Local do curso: Fiocruz Rondônia Pesquisador Responsável: Dr. Roberto Nicolete 3 DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE DOENÇAS INFECCIOSAS Local do curso: Fiocruz Rondônia Pesquisador Responsável: Dr. Ricardo de Godoi Mattos Ferreira 4 ARBOVIROSES Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Dr. Weber Cheli Batista 5 HEPATITES VIRAIS Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Drª. Deusilene Vieira 6 CARACTERIZAÇÃO DE BIOMOLÉCULAS Local do curso: Centro de Estudos de Biomoléculas Aplicadas a Saúde Vagas ofertadas: 15 (quinze). Pesquisador Responsável: Dr. Andreimar Martins Soares 7 NOÇÕES DE CLONAGEM MOLECULAR E EXPRESSÃO DE PROTEÍNAS Local do curso: Fiocruz Rondônia

3 Pesquisador Responsável: Drª. Carla Freire Celedonio Fernandes 8 ENTOMOLOGIA Local do curso: Laboratório de Bioecologia de Insetos LaBein (UNIR) Pesquisador Responsável: Dr. Alexandre de Almeida e Silva 9 CULTURA CELULAR Local do curso: Laboratório de Imunologia e Cultura Celular Pesquisador Responsável: Drª. Juliana Pavan Zuliani 10 QUIMIOTERAPIA APLICADA A MALÁRIA Local do curso: Laboratório de Fisio, Imunopatologia e Quimioterapia de Malária Pesquisador Responsável: Drª. Patrícia Soares de Maria Medeiros 2.2 CERTIFICAÇÃO O recebimento do certificado está facultado à frequência mínima de 80% nas aulas teórico-práticas. 3 DAS INSCRIÇÕES 3.1 PERÍODO DE INSCRIÇÃO O período de inscrições ocorrerá entre os dias 11/08/2014 e 16/08/ DOCUMENTAÇÃO NECESSÁRIA Documentos necessários para inscrição: Histórico escolar atual e carta de intenção confeccionada pelo candidato. Os candidatos deverão preencher devidamente o formulário eletrônico, que estará disponível no sítio a partir do dia 11/08/14 e anexar os documentos solicitados. No ato da inscrição, o interessado deve optar por duas áreas de interesse, indicando primeira e segunda opções.

4 3.3 PAGAMENTO DA TAXA DE INSCRIÇÃO Após divulgação dos candidatos selecionados, estes receberão no endereço eletrônico indicado a confirmação de inscrição. A partir deste momento o candidato deverá realizar o pagamento da taxa de inscrição no valor de R$ 70,00 (setenta reais), a ser efetuado por meio de transferência ou depósito bancário na conta: INSTITUTO DE PATOLOGIAS TROPICAIS IPEPATRO Conta corrente: x Agência: 3181-x Banco do Brasil O pagamento da inscrição somente deverá ser efetuado após a confirmação da inscrição. 3.4 HOMOLOGAÇÃO DA INSCRIÇÃO A vaga será homologada após o envio do comprovante de pagamento, cópia do RG e CPF para o endereço eletrônico ensino@fiocruz.br. O não envio da documentação no prazo determinado implicará automaticamente na suspensão da inscrição. Em caso de desistência da vaga, o inscrito deverá justificar à secretaria acadêmica pelo endereço eletrônico ensino@fiocruz.br até 24 h antes do início do curso. A ausência de justificativa implicará no bloqueio de inscrição em futuras edições dos cursos da Fiocruz Rondônia. Diante do exposto acima, caso haja desistência por parte do aluno, os valores não serão reembolsados em nenhuma hipótese. 4 PÚBLICO ALVO Alunos de graduação vinculados aos cursos de ensino superior nas áreas da Saúde e Ciências Biológicas, que estejam cursando pelo menos o 4º período da graduação. 5 COMISSÃO ORGANIZADORA A comissão organizadora do evento é constituída pelos seguintes membros: Drª. Carla Freire Celedônio Fernandes Msc. Iasmin Ferreira Pimentel Msc. Larissa Deadame de Figueiredo Nicolete

5 Msc. Lilian Motta Cantanhêde Msc. Marcos Barros Luiz Msc. Michele Pereira da Silva Msc. Nidiane Dantas Reis Prado 6 TUTORES A tutoria do Curso será realizada pelos alunos de Pós-Graduação das subunidades laboratoriais, conforme indicação do gestor do laboratório (ANEXO I). CRONOGRAMA AGENDA PERÍODO LOCAL Publicação do edital 29/07/14 Período de inscrição 11/08/14 a 16/08/14 Seleção (Análise do histórico e carta de intenção) 18/08/14 a 20/08/14 Fiocruz Rondônia Divulgação dos candidatos selecionados 21/08/14 Pagamento de inscrição 21/08/14 a 28/08/14 - Divulgação das inscrições homologadas 29/08/14 Segunda chamada 29/08/14 a 02/09/14 Divulgação das inscrições homologadas da segunda chamada 03/09/ Período do curso 08/09/14 a 12/09/14 Fiocruz-RO, CEPEM, CeBio e LaBein INFORMAÇÕES: Fiocruz Rondônia Vice Diretoria de Ensino, Informação e Comunicação. ensino@fiocruz.br Rua da Beira, nº. 7671, BR 364, Km 3,5, Bairro Lagoa CEP: Porto Velho (RO) Telefone: (69)

6 ANEXO I PROGRAMAÇÃO Ao início do curso será realizada a cerimônia de abertura e ao final do curso a cerimônia de encerramento com todos os alunos inscritos, conforme cronograma: DATA HORÁRIO ATIVIDADE INSTRUTOR 08/08/ h 08h50 Entrega de material aos alunos h 09h50 Apresentação do curso Dra Carla Celedonio 10h 12h Aula de biossegurança e vidrarias Felipe Stegun Enceramento: Atividade de 12/09/ h 18h fechamento Coordenação As aulas teóricas e práticas seguirão o cronograma de cada curso, conforme abaixo: 1 MICROBIOLOGIA 08/09/2014 Generalidade bacteriana e Najla Benevides mecanismo de patogenicidade Matos José Ribeiro e Nucia Meio de cultura e principais formas e Cristiane da Silva estruturas bacterianas Lima Isolamento bacteriano Identificação de cocos Grampositivos Antimicrobianos e antibiogramas Enteroparasitas Emergentes Técnica de Identificação de Coccídeos. 12/09/2014 Análise dos resultados 2 QUIMIOTERAPIA APLICADA À LEISHMANIOSE José Ribeiro e Nucia Cristiane da Silva Lima José Ribeiro José Ribeiro e Nucia Cristiane da Silva Lima Flávia Serrano Batista Flávia Serrano Batista Flávia Serrano Batista, José Ribeiro e Najla Benevides Matos 08/09/2014 Introdução a leishmaniose, e metodologias. Contagem de promastigotas em câmara de Neubauer.

7 12/09/2014 Metodologia de coleta de macrófagos de BalB/c. Coletas de macrófagos em camundongos BalB/c. Metodologias de infecção dos macrófagos por Leishmania. infecção dos macrófagos com promastigotas de L. amazonensis. Aplicações de micro e nanopartículas como terapia experimental. Produção e Caracterização de micropartículas biodegradáveis. 3 DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE DOENÇAS INFECCIOSAS 08/09/2014 Aula teórica Apresentação do laboratório; linhas de pesquisa; Uso de PCR para diagnóstico de doenças Lilian Cantanhêde infecciosas. Aula teórica Introdução aos ácidos nucléicos; Métodos de Extração de DNA e RNA. Aula prática Extração de DNA e Lilian Cantanhêde / RNA Aula teórica Tipos de PCR; Eletroforese. Aula prática Síntese de cdna; PCR e eletroforese em Agarose e Poliacrilamida. Lilian Cantanhêde Aula prática RFLP e leitura de gel Lilian Cantanhêde / de poliacrilamida 12/09/ ARBOVIROSES Aula teórica Tipos de Sequenciamento Aula prática Purificação de produto de PCR; Análise de sequências. Lilian Cantanhêde / Lilian Cantanhêde / 08/09/2014 Histórico da Virologia (teórica) Dr. Weber Cheli Diagnóstico Laboratorial de Vírus (teórica) Dr. Weber Cheli Preparação de Meio Leibowitz 15 e manutenção de células C6/36 (prática) Dr. Weber Cheli Dengue e Febre Amarela (arbovírus) (teórica) Inoculação de monocamada de C6/36 com o vírus da dengue (prática) Dr. Weber Cheli Dr. Weber Cheli

8 Reação em Cadeia da Polimerase- PCR (teórica) Dr. Weber Cheli Extração de RNA e RT-PCR (prática) Dr. Weber Cheli 12/09/2014 Eletroforese da RT-PCR (prática) Dr. Weber Cheli 5 HEPATITES VIRAIS 08/09/2014 Introdução às hepatites virais (teórica) Deusilene S. Vieira 12/09/2014 Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (teórica) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (teórica) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (prática) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (prática) Diagnóstico sorológico viral (teórica) Diagnóstico sorológico viral (prática) Encerramento interno e discussão dos resultados 6 CARACTERIZAÇÃO DE BIOMOLÉCULAS Luan Felipo B. Souza Vanessa Rampasso Fabianne Araújo André Vinycius P. Cunha Luan Felipo B. Souza Luan Felipo B. Souza Deusilene S. Vieira 08/09/2014 Aspectos gerais sobre as linhas de pesquisa do CEBio Leandro e Rudson Biologia de serpentes e anuros; Kayena, Cleópatra e Composição do veneno de serpentes Tiago e anuros Extração de veneno de serpente Kayena 12/09/2014 Cromatografia Prática de Cromatografia Eletroforese; Espectrometria de massa Prática de Eletroforese; Prática de Espectrometria de massa Ensaios Biológicos utilizando venenos; Ensaio de hemorragia in vivo Rafaela, Cláudia e Rodrigo Rafaela, Edailson e Kayano Rudson; Roniele e Rodrigo Rudson, Antônio e Roniele Juliana e Jorge

9 7 NOÇÕES DE CLONAGEM MOLECULAR E EXPRESSÃO DE PROTEÍNAS 08/09/2014 Fundamentos de Biologia molecular Nidiane Prado Clonagem Molecular (aula 01) Michelle Morais PCR e Eletroforese (prática) Marcela Silva / Naan Rodrigues Clonagem Molecular (aula 02) Nidiane Prado Digestão e ligação (prática) Marcela Silva / Naan Rodrigues Clonagem Molecular (aula 03) Michele Pereira Transformação em bactérias quimiocompetentes e eletrocompetentes (prática) Michele Pereira e Nidiane Prado 12/09/2014 Expressão de Proteínas Michele Pereira 8 ENTOMOLOGIA 08/09/2014 Introdução a Entomologia Médica (teórico) Frances Trindade Métodos de Coleta de Insetos (teórico) Carla Zanin Prática de Coleta e Epi s (prática) Thaís Criação de Culicídeos: Colônias em Laboratório (teórico) Carla e Glaucilene Técnicas de Criação em Laboratório (prática) Carla e Glaucilene Técnicas de Infecção e Dissecção de Vetores (prática) Frances Estudos Comportamentais de Insetos de Importância Médica (teórico) Thaís e Daiane 12/09/2014 Prospecção (teórico) Frances Trindade 9 CULTURA CELULAR 08/09/2014 Aula teórica: Cultura de células e suas aplicações Aula prática: Preparação de meio de cultura Aula prática: Congelamento Descongelamento de células tumorais Aula prática: Manutenção da cultura Aula prática: Manutenção da cultura

10 12/09/2014 Aula prática: Manipulação experimental Aula prática: Manipulação experimental Aula prática: Separação de células do sangue periférico por gradiente de densidade 10 QUIMIOTERAPIA APLICADA A MALÁRIA 08/09/2014 Analise in vitro de Substâncias Naturais e Sintéticas com possíveis atividades antimaláricas Flávio Augusto Principais técnicas e métodos para cultivo de P. faciparum Flávio Augusto Técnica de descongelamento das cepas de P. falciparum; - Técnica de manutenção do meio de cultivo; - Técnica de congelamento e armazenamento das cepas de Plasmodium falciparum Elci Freitag - Seleção, solubilização e diluição de drogas para teste; - Técnica de contagem de Plasmódio por milímetros cúbicos - mm 3; - Técnica de Sincronização de Plasmódio; - Técnica para realização do teste in Flávio Augusto vitro - Seleção, solubilização e diluição de drogas para teste; - Técnica de contagem de Plasmódio por milímetros cúbicos - mm 3; - Técnica de Sincronização de Plasmódio - Realização do Teste in vitro Elci Freitag Técnica de enzimaimunoensaio ELISA Flávio Augusto Revelação do testes de ELISA Flávio Augusto 12/09/2014 Análise estatística do teste in vitro e interpretação dos resultados Flávio Augusto Porto Velho, 29 de agosto de Dra. Carla Freire Celedonio Fernandes Vice-Diretora de Ensino, Informação e Comunicação Fiocruz Rondônia

11 CHAMADA PÚBLICA I CURSO DE VERÃO AMAZÔNICO A FUNDAÇÃO OSWALDO CRUZ RONDÔNIA E O INSTITUTO DE PESQUISA EM PATOLOGIAS TROPICAIS (IPEPATRO) tornam pública a abertura de inscrições e estabelecem normas relativas à participação no I Curso de Verão Amazônico. O curso teórico-prático discutirá assuntos relevantes relacionados à área de pesquisa em saúde no Brasil, com ênfase em métodos e técnicas utilizadas para o estudo, prevenção e controle de doenças tropicais. 1 OBJETIVOS O I Curso de Verão Amazônico visa apresentar as metodologias utilizadas na pesquisa básica, conceituando e contextualizando os diferentes assuntos frente a sua importância para a saúde no Brasil. O curso contará com a participação das equipes da Fiocruz Rondônia, Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM), além do Centro de Estudos de Biomoléculas Aplicadas a Saúde (CeBio) e Laboratório de Bioecologia de Insetos (LaBein) da Universidade Federal de Rondônia (Unir). 2 DO CURSO 2.1 ESTRUTURA E LOCAL DO CURSO O Curso de Verão Amazônico será realizado durante uma semana, com carga horária de 40h. As aulas serão ministradas por alunos de pós-graduação do Programa de Pós- Graduação em Biologia Experimental, Programa de Pós-Graduação da Rede Bionorte ou vinculados as Instituições. As atividades teóricas e práticas serão realizadas nas dependências da Fiocruz Rondônia, CEPEM, CEBio e Labein, sendo de responsabilidade dos candidatos os custos com alimentação e transporte. Serão fornecidos material didático e equipamentos de proteção individual a serem utilizados nas aulas práticas. Os alunos devem se apresentar devidamente trajados (calça tipo jeans, tênis ou sapato completamente fechado, jaleco de manga longa). Para o desenvolvimento do curso, o aluno será encaminhado a uma das opções de interesse apontadas no ato de sua inscrição, conforme detalhado em anexo (ANEXO I).

12 1 MICROBIOLOGIA Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Drª. Najla Benevides Matos 2 QUIMIOTERAPIA APLICADA A LEISHMANIOSE Local do curso: Fiocruz Rondônia Pesquisador Responsável: Dr. Roberto Nicolete 3 DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE DOENÇAS INFECCIOSAS Local do curso: Fiocruz Rondônia Pesquisador Responsável: Dr. Ricardo de Godoi Mattos Ferreira 4 ARBOVIROSES Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Dr. Weber Cheli Batista 5 HEPATITES VIRAIS Local do curso: Centro de Pesquisa em Medicina Tropical (CEPEM) Pesquisador Responsável: Drª. Deusilene Vieira 6 CARACTERIZAÇÃO DE BIOMOLÉCULAS Local do curso: Centro de Estudos de Biomoléculas Aplicadas a Saúde Vagas ofertadas: 15 (quinze). Pesquisador Responsável: Dr. Andreimar Martins Soares 7 NOÇÕES DE CLONAGEM MOLECULAR E EXPRESSÃO DE PROTEÍNAS Local do curso: Fiocruz Rondônia

13 Pesquisador Responsável: Drª. Carla Freire Celedonio Fernandes 8 ENTOMOLOGIA Local do curso: Laboratório de Bioecologia de Insetos LaBein (UNIR) Pesquisador Responsável: Dr. Alexandre de Almeida e Silva 9 CULTURA CELULAR Local do curso: Laboratório de Imunologia e Cultura Celular Pesquisador Responsável: Drª. Juliana Pavan Zuliani 10 QUIMIOTERAPIA APLICADA A MALÁRIA Local do curso: Laboratório de Fisio, Imunopatologia e Quimioterapia de Malária Pesquisador Responsável: Drª. Patrícia Soares de Maria Medeiros 2.2 CERTIFICAÇÃO O recebimento do certificado está facultado à frequência mínima de 80% nas aulas teórico-práticas. 3 DAS INSCRIÇÕES 3.1 PERÍODO DE INSCRIÇÃO O período de inscrições ocorrerá entre os dias 11/08/2014 e 16/08/ DOCUMENTAÇÃO NECESSÁRIA Documentos necessários para inscrição: Histórico escolar atual e carta de intenção confeccionada pelo candidato. Os candidatos deverão preencher devidamente o formulário eletrônico, que estará disponível no sítio a partir do dia 11/08/14 e anexar os documentos solicitados. No ato da inscrição, o interessado deve optar por duas áreas de interesse, indicando primeira e segunda opções.

14 3.3 PAGAMENTO DA TAXA DE INSCRIÇÃO Após divulgação dos candidatos selecionados, estes receberão no endereço eletrônico indicado a confirmação de inscrição. A partir deste momento o candidato deverá realizar o pagamento da taxa de inscrição no valor de R$ 70,00 (setenta reais), a ser efetuado por meio de transferência ou depósito bancário na conta: INSTITUTO DE PATOLOGIAS TROPICAIS IPEPATRO Conta corrente: x Agência: 3181-x Banco do Brasil O pagamento da inscrição somente deverá ser efetuado após a confirmação da inscrição. 3.4 HOMOLOGAÇÃO DA INSCRIÇÃO A vaga será homologada após o envio do comprovante de pagamento, cópia do RG e CPF para o endereço eletrônico ensino@fiocruz.br. O não envio da documentação no prazo determinado implicará automaticamente na suspensão da inscrição. Em caso de desistência da vaga, o inscrito deverá justificar à secretaria acadêmica pelo endereço eletrônico ensino@fiocruz.br até 24h antes do início do curso. A ausência de justificativa implicará no bloqueio de inscrição em futuras edições dos cursos da Fiocruz Rondônia. Diante do exposto acima, caso haja desistência por parte do aluno, os valores não serão reembolsados em nenhuma hipótese. 4 PÚBLICO ALVO Alunos de graduação vinculados aos cursos de ensino superior nas áreas da Saúde e Ciências Biológicas, que estejam cursando pelo menos o 4º período da graduação. 5 COMISSÃO ORGANIZADORA A comissão organizadora do evento é constituída pelos seguintes membros: Drª. Carla Freire Celedônio Fernandes Msc. Iasmin Ferreira Pimentel Msc. Larissa Deadame de Figueiredo Nicolete

15 Msc. Lilian Motta Cantanhêde Msc. Marcos Barros Luiz Msc. Michele Pereira da Silva Msc. Nidiane Dantas Reis Prado 6 TUTORES A tutoria do Curso será realizada pelos alunos de Pós-Graduação das subunidades laboratoriais, conforme indicação do gestor do laboratório (ANEXO I). CRONOGRAMA AGENDA PERÍODO LOCAL Publicação do edital 29/07/14 Período de inscrição 11/08/14 a 16/08/14 Seleção (Análise do histórico e carta de intenção) 18/08/14 a 20/08/14 Fiocruz Rondônia Divulgação dos candidatos selecionados 21/08/14 Pagamento de inscrição 21/08/14 a 28/08/14 - Divulgação das inscrições homologadas 29/08/14 Segunda chamada 29/08/14 a 02/09/14 Divulgação das inscrições homologadas da segunda chamada 03/09/ Período do curso 08/09/14 a 12/09/14 Fiocruz-RO, CEPEM, CeBio e LaBein INFORMAÇÕES: Fiocruz Rondônia Vice Diretoria de Ensino, Informação e Comunicação. ensino@fiocruz.br Rua da Beira, nº. 7671, BR 364, Km 3,5, Bairro Lagoa CEP: Porto Velho (RO) Telefone: (69)

16 ANEXO I PROGRAMAÇÃO Ao início do curso será realizada a cerimônia de abertura e ao final do curso a cerimônia de encerramento com todos os alunos inscritos, conforme cronograma: DATA HORÁRIO ATIVIDADE INSTRUTOR 08h 08h50min Entrega de material aos alunos /09/ h 09h50min Apresentação do curso Dra Carla Celedonio 10h 12h Aula de biossegurança e vidrarias Felipe Stegun Encerramento: Atividade de 12/09/ h 18h fechamento Coordenação As aulas teóricas e práticas seguirão o cronograma de cada curso, conforme abaixo: 1 MICROBIOLOGIA 08/09/2014 Generalidade bacteriana e Najla Benevides mecanismo de patogenicidade Matos José Ribeiro e Nucia Meio de cultura e principais formas e Cristiane da Silva estruturas bacterianas Lima Isolamento bacteriano Identificação de cocos Grampositivos Antimicrobianos e antibiogramas Enteroparasitas Emergentes Técnica de Identificação de Coccídeos. 12/09/2014 Análise dos resultados 2 QUIMIOTERAPIA APLICADA À LEISHMANIOSE José Ribeiro e Nucia Cristiane da Silva Lima José Ribeiro José Ribeiro e Nucia Cristiane da Silva Lima Flávia Serrano Batista Flávia Serrano Batista Flávia Serrano Batista, José Ribeiro e Najla Benevides Matos 08/09/2014 Introdução a leishmaniose, e metodologias. Contagem de promastigotas em câmara de Neubauer.

17 12/09/2014 Metodologia de coleta de macrófagos de BalB/c. Coletas de macrófagos em camundongos BalB/c. Metodologias de infecção dos macrófagos por Leishmania. Infecção dos macrófagos com promastigotas de L. amazonensis. Aplicações de micro e nanopartículas como terapia experimental. Produção e caracterização de micropartículas biodegradáveis. 3 DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE DOENÇAS INFECCIOSAS 08/09/2014 Aula teórica Apresentação do laboratório; linhas de pesquisa; Uso de PCR para diagnóstico de doenças Lilian Cantanhêde infecciosas. Aula teórica Introdução aos ácidos nucléicos; Métodos de Extração de DNA e RNA. Aula prática Extração de DNA e Lilian Cantanhêde / RNA Aula teórica Tipos de PCR; Eletroforese. Aula prática Síntese de cdna; PCR e eletroforese em Agarose e Poliacrilamida. Lilian Cantanhêde Aula prática RFLP e leitura de gel Lilian Cantanhêde / de poliacrilamida 12/09/ ARBOVIROSES Aula teórica Tipos de Sequenciamento Aula prática Purificação de produto de PCR; Análise de sequências. Lilian Cantanhêde / Lilian Cantanhêde / 08/09/2014 Histórico da Virologia (teórica) Dr. Weber Cheli Diagnóstico Laboratorial de Vírus (teórica) Dr. Weber Cheli Preparação de Meio Leibowitz 15 e manutenção de células C6/36 (prática) Dr. Weber Cheli Dengue e Febre Amarela (arbovírus) (teórica) Inoculação de monocamada de C6/36 com o vírus da dengue (prática) Dr. Weber Cheli Dr. Weber Cheli

18 Reação em Cadeia da Polimerase- PCR (teórica) Dr. Weber Cheli Extração de RNA e RT-PCR (prática) Dr. Weber Cheli 12/09/2014 Eletroforese da RT-PCR (prática) Dr. Weber Cheli 5 HEPATITES VIRAIS 08/09/2014 Introdução às hepatites virais (teórica) Deusilene S. Vieira 12/09/2014 Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (teórica) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (teórica) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (prática) Técnicas moleculares aplicadas no diagnóstico viral (prática) Diagnóstico sorológico viral (teórica) Diagnóstico sorológico viral (prática) Encerramento interno e discussão dos resultados 6 CARACTERIZAÇÃO DE BIOMOLÉCULAS Luan Felipo B. Souza Vanessa Rampasso Fabianne Araújo André Vinycius P. Cunha Luan Felipo B. Souza Luan Felipo B. Souza Deusilene S. Vieira 08/09/2014 Aspectos gerais sobre as linhas de pesquisa do CEBio Leandro e Rudson Biologia de serpentes e anuros; Kayena, Cleópatra e Composição do veneno de serpentes Tiago e anuros Extração de veneno de serpente Kayena 12/09/2014 Cromatografia Prática de Cromatografia Eletroforese; Espectrometria de massa Prática de Eletroforese; Prática de Espectrometria de massa Ensaios Biológicos utilizando venenos; Ensaio de hemorragia in vivo Rafaela, Cláudia e Rodrigo Rafaela, Edailson e Kayano Rudson; Roniele e Rodrigo Rudson, Antônio e Roniele Juliana e Jorge

19 7 NOÇÕES DE CLONAGEM MOLECULAR E EXPRESSÃO DE PROTEÍNAS 08/09/2014 Fundamentos de Biologia molecular Nidiane Prado Clonagem Molecular (aula 01) Michelle Morais PCR e Eletroforese (prática) Marcela Silva / Naan Rodrigues Clonagem Molecular (aula 02) Nidiane Prado Digestão e ligação (prática) Marcela Silva / Naan Rodrigues Clonagem Molecular (aula 03) Michele Pereira Transformação em bactérias quimiocompetentes e eletrocompetentes (prática) Michele Pereira e Nidiane Prado 12/09/2014 Expressão de Proteínas Michele Pereira 8 ENTOMOLOGIA 08/09/2014 Introdução a Entomologia Médica (teórico) Frances Trindade Métodos de Coleta de Insetos (teórico) Carla Zanin Prática de Coleta e Epi s (prática) Thaís Criação de Culicídeos: Colônias em Laboratório (teórico) Carla e Glaucilene Técnicas de Criação em Laboratório (prática) Carla e Glaucilene Técnicas de Infecção e Dissecção de Vetores (prática) Frances Estudos Comportamentais de Insetos de Importância Médica (teórico) Thaís e Daiane 12/09/2014 Prospecção (teórico) Frances Trindade 9 CULTURA CELULAR 08/09/2014 Aula teórica: Cultura de células e suas aplicações Aula prática: Preparação de meio de cultura Aula prática: Congelamento Descongelamento de células tumorais Aula prática: Manutenção da cultura Aula prática: Manutenção da cultura

20 12/09/2014 Aula prática: Manipulação experimental Aula prática: Manipulação experimental Aula prática: Separação de células do sangue periférico por gradiente de densidade 10 QUIMIOTERAPIA APLICADA A MALÁRIA 08/09/2014 Análise in vitro de Substâncias Naturais e Sintéticas com possíveis atividades antimaláricas Flávio Augusto Principais técnicas e métodos para cultivo de P. falciparum Flávio Augusto Técnica de descongelamento das cepas de P. falciparum; - Técnica de manutenção do meio de cultivo; - Técnica de congelamento e armazenamento das cepas de Plasmodium falciparum Elci Freitag - Seleção, solubilização e diluição de drogas para teste; - Técnica de contagem de Plasmódio por milímetros cúbicos - mm 3; - Técnica de Sincronização de Plasmódio; - Técnica para realização do teste in Flávio Augusto vitro - Seleção, solubilização e diluição de drogas para teste; - Técnica de contagem de Plasmódio por milímetros cúbicos - mm 3; - Técnica de Sincronização de Plasmódio - Realização do Teste in vitro Elci Freitag Técnica de enzimaimunoensaio ELISA Flávio Augusto Revelação do teste de ELISA Flávio Augusto 12/09/2014 Análise estatística do teste in vitro e interpretação dos resultados Flávio Augusto Porto Velho, 29 de agosto de Dra. Carla Freire Celedonio Fernandes Vice-Diretora de Ensino, Informação e Comunicação Fiocruz Rondônia