ESTABELECIMENTO IN VITRO DE AROEIRA-VERMELHA EM DIFERENTES CONCENTRAÇÕES DE BENZILAMINOPURINA E ACIDO NAFTALENO ACÉTICO 1
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1 ESTABELECIMENTO IN VITRO DE AROEIRA-VERMELHA EM DIFERENTES CONCENTRAÇÕES DE BENZILAMINOPURINA E ACIDO NAFTALENO ACÉTICO 1 DE SOUZA, Letiele Bruck 2 ; LUCHO, Simone Ribeiro 2 ; GINDRI, Amanda Leitão 3 ; BERTÊ, Rosiana 2 ; PARANHOS, Juçara Terezinha 4 ; BURIOL, Galileo Adeli 5 1 Trabalho de pesquisa do PPG Agrobiologia UFSM, Santa Maria RS. 2 Mestranda do PPG Agrobiologia UFSM, Santa Maria - RS. 3 Mestre em Ciências Farmacêutica UFSM, Santa Maria RS. 4 Profª. Drª. PPG Agrobiologia UFSM, Santa Maria RS. 5 Prof. Dr. PPG Agrobiologia UFSM e do Curso de Engenharia Ambiental UNIFRA, Santa Maria RS. litibio@gmail.com, simonibelmonte@gmail.com, amandagindri@terra.com.br, rosianaberte@hotmail.com, jtparanhos@gmail.com, galileoburiol@yahoo.com.br RESUMO A aroeira-vermelha (Schinus terebentifolius Raddi) é uma espécie pioneira, nativa do Brasil. Atualmente, é a espécie florestal que vem destacando-se, pelo consumo de seus frutos, e ainda, pelas potencialidades medicinais e fitoquímicas, que têm auxiliado no tratamento de diversos males. O objetivo do trabalho foi comparar os efeitos de diferentes concentrações de reguladores de crescimento na indução de brotos e raízes de aroeira. Segmentos nodais foram retirados de plantas jovens de S. terebinthifolius e os explantes inoculados em tubos de ensaio contendo meio de cultura MS completo acrescido das seguintes concentrações de (BAP): 0,0 0,6 ; 1,2 ; 2,4 e de (ANA): 0,0 ; 0,06 ; 0,12 ; 0,24.Os segmentos nodais que apresentaram maior índice de brotação foram aqueles submetidos ao T1, e a indução de raízes não foi observada em nenhum dos tratamentos o que pode ter ocorrido pelo alto nível de oxidação e contaminação no experimento. Palavras-chave: Micropropagação; Fitorreguladores; Schinus terebentifolius Raddi. INTRODUÇAO A aroeira-vermelha (Schinus terebentifolius Raddi) é uma espécie da família Anacardiaceae, pioneira, nativa do Brasil. É uma espécie que ocorre desde o Ceará até a Argentina e o Paraguai, sendo encontrada em formações vegetais de caatinga, cerrado e floresta pluvial (AMORIN, 2003). É uma árvore caducifólia, cujo porte varia correspondentemente com a região onde é encontrada (ANDRADE et al., 2000). Atualmente, é a espécie florestal que vem destacando-se, pelo consumo de seus frutos, pimenta rosa, tanto para o mercado internacional como para o nacional, que os 1
2 utilizam como condimento alimentar (LENZI & ORTH, 2004). Possui ainda potencialidades medicinais e fitoquímicas, sendo que seus metabólitos secundários têm auxiliado no tratamento de diversos males, como adstringente, antidiarréica, antiinflamatória, depurativa, diurética e febrífuga (GUERRA et al., 2000). Pelo uso intensivo, a aroeira encontra-se na lista oficial de espécies da flora brasileira ameaçadas de extinção, na categoria vulnerável, e nesse contexto, as técnicas de micropropagação são importantes ferramentas, na área agronômica, para preservação de plantas, pois conserva e possibilita multiplicar determinada planta com combinações gênicas superiores (FERNANDES et al., 2008). Este trabalho teve como objetivo testar diferentes concentrações de fitorreguladores, na indução de brotos e raízes, por meio de explantes oriundos de sementes germinadas e propagadas in vitro e assim estabelecer um protocolo de micropropagação, que possibilite a multiplicação in vitro da espécies em estudo. MATERIAL E MÉTODOS O trabalho foi desenvolvido no Laboratório de Cultura de Tecidos Vegetais do Departamento de Biologia do Centro de Ciências Naturais e Exatas - CCNE da Universidade Federal de Santa Maria UFSM. Segmentos nodais de diferentes posições foram retirados de plantas jovens de Schinus terebinthifolius Raddi com um ano de idade, obtidas a partir da germinação das sementes in vitro e aclimatadas em casa de vegetação. Os explantes foram excisados em tamanho variando entre 5 a 10 mm, os mesmos foram lavados em água corrente por 10 minutos e após em câmara de fluxo laminar foram imersos em álcool 70% (30seg), posteriormente em hipoclorito 1% (10min), após a desinfestação os mesmos foram lavados com água destilada e autoclavada por 5 minutos. Os explantes foram inoculados em tubos de ensaio com 100 ml de capacidade contendo 30ml de meio de cultura MS (Murashige & Skoog, 1962) completo acrescido de 1,0 g.l -1 de carvão ativado, solidificado com 6,0 gl -1 de Ágar, suplementado com vitaminas e 30,0 g.l -1 de sacarose e concentrações distintas de 6-benzilaminoporunia (BAP): 0,0 T1; 0,6 T2; 1,2 T3; 2,4 T4 e de Ácido naftalenoacético (ANA): 0,0 T1; 0,06 T2; 0,12 T3; 0,24 T4. O ph foi ajustado para 5,8 e o meio de cultura autoclavado a 121ºC, sob pressão de 1,5 atm, por 15 minutos. Cada tratamento constou de 4 repetições com 36 tubos por parcela, contendo um expelante por parcela. Após a inoculação, os expantes foram mantido em sala de crescimento no escuro por 7 dias e, após transferidas para sala de crescimento, com temperatura de 25±1 C sob fotoperíodo de 16/8 horas de luz/escuro e irradiância de 25 mol.m -2.s -1 fornecida por lâmpadas fluorescente brancas. 2
3 Taxas (%) Após os 7 dias de inoculação foram avaliados semanalmente a porcentagem de brotações, ocorrência ou não de enraizamento e a presença de calos. Sendo os resultados expressos em porcentagem de plântulas normais, ou seja, os dados não foram analisados estatisticamente, servindo apenas para caracterização inicial da micropropagação da aroeira-vermelha. RESULTADOS E DISCUSSÃO Na primeira semana, após a inoculação dos explantes, verificou-se a formação inicial de calos e o aparecimento de brotos (Tabela 01). Foi observado a partir do décimo quinto dia alto nível de oxidação fenólica, que dificultou e impediu o desenvolvimento dos explantes. O mesmo foi observado por Das et al. (1996) no cultivo de cajueiro, que a partir do ocorreu o escurecimento e a morte dos explantes. Segundo Paiva & Aloufa (2009) a oxidação fenólica é um dos problemas que dificultam o estabelecimento inicial do cultivo in vitro para algumas espécies, ocorrendo à liberação de compostos fenólicos devido a injúria causada nos tecidos durante a excisão dos explantes. Além da oxidação fenólica os tratamentos apresentaram elevado índice contaminação como pode ser observado na figura 1. O alto nível de contaminação pode ter ocorrido no momento da inoculação dos explantes ao meio, como também durante a vedação dos frascos. Uma grande probabilidade da alta taxa de contaminação deve-se ao fato do experimento ter sido realizado por um grupo de pessoas ao mesmo tempo Tratamentos oxidação contaminação FIGURA1: Índice de oxidação e contaminação no desenvolvimento de Schinus terebinthifolius in vitro. 3
4 Os segmentos nodais que apresentaram maior índice de brotação, foram aqueles submetidos ao T1 (Tabela 1), ou seja, sem a presença de BAP e ANA, ao contrário dos resultados obtidos por Andrade et al. (2000), que ao trabalharem com aroeira do sertão alcançaram as maiores taxas de regeneração com altas concentrações de BAP e ANA. A partir do décimo quinto dia não foram mais observados aparecimento de broto como também os existentes começaram a necrosar, segundo Santos et. al. (2001) a necrose nos explantes pode levar a perda parcial ou total da cultura. Em relação à ocorrência de raiz, as mesmas não foram observadas, mas não se pode afirmar que o uso dos fitorreguladores foi à causa da inibição e sim pelo alto nível de oxidação e contaminação no experimento. Tabela 1: Variação no número de brotos e calos durante os trinta dias de experimento. Brotos (%) Calos (%) Trat. 1 46,1 1,4 Trat. 2 29,9 0 Trat. 3 20,1 0 Trat. 4 2,8 0 CONCLUSÃO Para o estabelecimento in vitro de Schinus terebinthifolius Raddi sugere-se a repetição do experimento, incluindo todos os cuidados assépticos, desde o preparo do meio de cultura MS completo, na excisão dos explantes como também no momento da inoculação dos mesmos, para que assim seja possível afirmar que o uso de fitorreguladores na micropropagação da aroeira-vermelha seja favorável ou não ao desenvolvimento da cultura, e com isso estabelecer-se um protocolo de micropropagação in vitro da aroeiravermelha. REFERÊNCIAS: AMORIM, M.M.R. Tratamento da vaginose bacteriana com gel vaginal de aroeira (Schinus terebinthifolius Raddi): ensaio clinico randomizado. Revista Brasileira de Ginecologia, v.25, n.2, p , ANDRADE, M.W. et al. Micropropagação da aroeira (Myracrodruon urundeuva Fr.All). Ciência Agrotecnica, v.24, n.1, p ,
5 DAS, S.; JHA, T. B.; JHA, S. In vitro propagation of cashewnut. Plant Cell Reports, v.15, n.6, p.615-9, FERNANDES, K. H. P.; MORI, E. S.; SILVA, M. R. ; PINTO, C. da S. Propagação Vegetativa De Aroeira-Pimenteira (Schinus terebinthifolius Raddi). Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal - SP, v. 30, n. 3, p , Setembro GUERRA, M. J. M.; BARREIRO, M. L.; RODRIGUEZ, Z. M.; RUBALCADA, Y. Actividad antimicrobiana de un extracto fluido al 80% de Schinus terebinthifolius Raddi. Revista Cubana, Havana, v. 5, n. 1, p. 5-23, LENZI, M.; ORTH, A.I. Characterization of the functional reproductive system of the pinkpepper (Schinus terebinthifolius Raddi). Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, v.26, n.2, p , MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v.15, n.3, p , PAIVA, A.M.S.; ALOUFA, M.A.I. Estabelecimento in vitro de aroeira-da-praia (Schinus terebinthifolius Raddi) em diferentes concentrações de 6-benzilaminopurina (BAP). Revista Brasileira de plantas medicinais, Botucatu, SP. V.11, nº3, pág SANTOS, R. B.; PAIVA, R.; PAIVA, P. D. O.; SANTANA, J. R. F. Problemas no cultivo in vitro: cultura de tecidos. Paiva e Paiva, UFLA, Lavras, M.G. 9:
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